In order to identify the bacteria living on the cocoons in Korea, the isolated bacterias' morphological. cultural and physiological characters has been determined through the detailed study. The second aim of this experiment was to protect against the bacteria which damage silk protein during storage. 1. The twelve strains of the bacteria were isolated and identified in the cocoons produced in Korea. The results of the identification are as the following. No 1, No 8; Bacillus subtilis variation No 2, ; Bacillus stearothermophilus No 3, ; Bacillus circulans No 5, No 6; Bacillus thuringiensis No 7, No 11; Bacillus brevis No 12, No l0; Bacillus cereus variation
Escherichia coli recombinants containing the cloned phenol hydroxylase gene of Bacillus stearothermophilus BR219 were shown to produce both indigo and its structural isomer indirubin during culture on LB broth. The ratio of indirubin/indigo was highest under conditions of prolonged culture and reduced culture oxygenation.
The Bacillus stearothermophilus cdd gene encoding cytidine deaminase (cytidine/2'-deoxycytidine aminohydrolase; EC 3.5.4.5) was isolated through shot gun cloning by oomplementation of an E. coli cdd mutation. Primarily 3.0 kbp of the exogenote was cloned into the Pstl site of pBR322 (pJSC101). By subsequent deletion and subcloning from the insert of pJSC101 with cdd$^+$ and tetracycline resistancy, about 1.35 kbp of the EcoRI$_1$/PstI$_2$ fragment containing the cdd gene was isolated as pJSC201. The minicell experiment revealed a molecular mass of 33,000 dalton for polypeptide from the cloned DNA fragment complementing the cdd gene. From the lacZ fusion of 550 bp fragment of the EcoRI$_1$/AuaI as a putative promoter region, the transcription direction of the cdd gene on pJSC201 is from EcoRI towards the PstI sites, When the cdd gene was expressed in B. subtilis ED4O (cdd$^-$, pyr$^-$) by transformation with the E. coli-B. subtilis shuttle vector, the gene expression occured more efficiently than in E. coli and the gene appears to be stably maintained in B. subtitis as well as in E. coli.
The second $\beta$-Xylosidase gene (xylB) from Bacillus stearothermophilus was isolated from the genomic library, cloned into pBR322, and subsequently transferred into Escherichia coli HB101. Six out of 10, 000 transformants were selected from the selective LB medium supplemented with p-nitrophenyl-$\alpha$-L-arabinofuranoside (pNPAf) and ampicillin ($50\mu g$/ml) based on their ability to form a yellow ring around the colony. One of the clones was found to harbor the recombinant plasmid with 5.0 kb foreign DNA, which was identical to the $\alpha$-L-arabinofuranosidase gene (arfI) previously cloned in this lab, while the other five had 3.5 kb of the foreign DNA. Southern blotting experiments confirmed that the 3.5 kb insert DNA was from B. stearothermophilus chromosomal DNA. A zymogram with 4-methylumbelliferyl-$\alpha$-L-arabinofuranoside as the enzyme substrate revealed that the cloned gene product was one of the mutiple $\alpha$-L-arabinofuranosidases produced by B. stearothermophilus. Unlike the arfI gene product, the product of the gene on the insert DNA (xylB) showed an activity not only on pNPAf but also on oNPX suggesting that the cloned gene product could be a bifunctional enzyme having both $\alpha$-L-arabinofuranosidase and $\beta$-xylosidase activities.
The $\alpha$-L-arabinofuranosidase (Arfase) gene of Bacillus stearothermophilus No. 236 was cloned and sequenced. The ORF of the gene, designated arfA, encoded a 507 -residue polypeptide with calculated molecular mass of 57 kDa. The Arfase produced by a recombinant Escherichia coli strain containing the arfA gene was purified to apparent homogeneity and characterized. The molecular mass of the Arfase determined by SDS-PAGE was 60 kDa. However, according to gel filtration, it was estimated to be approximately 190 kDa. These results indicated that the functional form of the Arfase is trimeric. The optimal pH and temperature for the enzyme activity were pH 6.5 and $55^{\circ}C$, respectively. The half-life of the enzyme at $60^{\circ}C$ was about 6 h. Kinetic experiments at $45^{\circ}C$ with pNPM (p-nitrophenyl $\alpha$-L-arabinofuranoside) as a substrate gave the $K_m and V_{max}$ values of 1.19 mM and 26.1 U/ mg, respectively. When the enzyme was combined with Bacillus stearothermophilus No. 236 endoxylanase and $\beta$-xylosidase, it hydrolyzed arabinoxylan into L-arabinose and xylose more efficiently than Arfase alone. This synergistic effect suggested that the complete hydrolysis of xylan with large amounts of arabinose side chains required Arfase as well as endoxylanase and $\beta$-xylosidase.
Cyclodextrin glucanotransferase from B. stearothermophilus KJ16 that can produce both cyclodextrin glucanotransferase and cyclodextrinase was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-cellulose chromatography, Sephadex G-100 chromatography, and FPLC. The molecular weight of the purifice enzyme was about 65,000 dalton by SDS-PAGE. The optimal pH and temperature were 6.0 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme was stable at $50^{\circ}C$ for 1 hr and in the pH range of 5.5 and 8.5. Mercaptoethanol and dithiothreitol inhibited the enzyme activity strongly. The enzyme produced 60% cyclodextrin(CD) from 5% soluble starch with the $^{\alpha}$, $^{\beta}$, $^{\gamma}$-CD ratio of 42:46:12. Amylopectin was the most suitable substrate with 67% conversion to CD.
Growth inhibitory effects of ethanol extracts of green tea and pine needles on Bacillus stearothermophilus isolated from spoiled red bean paste were detected at concentrations higher than 750 ppm, and antimicrobial activity of pine needle extract was slightly higher than that of green tea exract. Growth inhibitory effect of pine needle extract in nutrient broth adjusted to pH 6.0, water-activity 0.92, and $45\;^{\circ}$Brix was observed at 500 ppm. These results indicated growth of B. stearothermophilus could be inhibited by adding pine needle and green tea extracts.
1. Three hundred and thirty three strains of thermoduric bacteria from raw milk, H.T.S.T. sterilized milk and U.H.T. sterilized milk in the market were isolated after heat treatment at $65^{\circ}C$ for 30 minutes. 2. By microscopical and physiological examination, including the tests for proteolysis and lipolysis, the isolates were identified as 125 strains of Bacillus stearothermophilus, 69 strains as Bacillus coagulans, 57 strains as Bacillus subtilis, 76 strains as Bacillus cereus and 3 strains as Lactobacillus thermophilus. 3. The susceptibility of the selected thermoduric strains to heat, the vegetative cells of some strains in skim milk survived the heat treatment at $65^{\circ}C$ for 30 minutes or $85^{\circ}C$ for 20 minutes but not survived at $100^{\circ}C$ for 10 minutes.
Synergic effects among endo-xylanase, $\beta$-xylosidase, and acetyl xylan esterase of Bacillus stearothermophilus in the hydrolysis of xylan were studied by using birchwood, oat spelt, and acetylated xylan as substrates. Synergism between endo-xylanase and $\beta$-xylosidase was observed on all three substrates tested, indicating that $\beta$-xylosidase enhanced the production of xylose by relieving the end-product inhibition upon endo-xylanase conferred by xylooligomers. Endo-xylanase and $\beta$-xylosidase also showed synergism with acetyl xylan esterase in the hydrolysis of birchwood and acetylated xylan, while no synergic effect was detected in oat spelt xylan hydrolysis. Thus, the hydrolysis of xylan containing acetic acid side chains required the action of acetyl xylan esterase, which eliminated the steric hindrance of the side chains, leading to the better hydrolysis by endo-xylanase and $\beta$-xylosidase , and the acetyl xylan esterase activity was also enhanced by endo-xylanase and $\beta$-xylosidase for the latter enzymes provided acetyl xylan esterase with shorter xylan oligomers, the better substrate for the enzyme.
Synergism among endo-xylanase, $\beta$-xylosidase, and $\alpha$-L-arabinofuranosidase from Bacillus stearothermophilus upon xylan hydrolysis was investigated by using birchwood, oat spelt, and arabinoxylan as substrates. Endo-xylanase and $\beta$-xylosidase showed the cooperative action on all three substrates tested, revealing the fact that $\beta$-xylosidase assists endo-xylanase action in xylan hydrolysis by relieving the endproduct inhibition upon endo-xylanase conferred by xylooligomers. $\alpha$-L-Arabinofuranosidase also exhibited synergic effects with endo-xylanase and $\beta$-xylosidase on oat spelt and arabinoxylan, which contained significant amounts of arabinose side chains, whereas no synergism was detected on birchwood xylan which had only trace amounts of the side chain. Thus, the hydrolysis of xylan containing arabinose side chains required $\alpha$-L-arabinofuranosidase as well as endo-xylanase and $\beta$-xylosidase for the better hydrolysis of the substrates, and these enzymes work cooperatively in order to maximize the extent and rate of xylan hydrolysis.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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