It has been suggested that AUXIN BINDING PROTEIN 1 (ABP1) functions as an apoplastic auxin receptor, and is known to be involved in the post-transcriptional process, and largely independent of the already well-known SKP-cullin-F-box-transport inhibitor response (TIR1) /auxin signaling F-box (AFB) ($SCF^{TIR1/AFB}$) pathway. In the past 10 years, several key components downstream of ABP1 have been reported. After perceiving the auxin signal, ABP1 interacts, directly or indirectly, with plasma membrane (PM)-localized transmembrane proteins, transmembrane kinase (TMK) or SPIKE1 (SPK1), or other unidentified proteins, which transfer the signal into the cell to the Rho of plants (ROP). ROPs interact with their effectors, such as the ROP interactive CRIB motif-containing protein (RIC), to regulate the endocytosis/exocytosis of the auxin efflux carrier PIN-FORMED (PIN) proteins to mediate polar auxin transport across the PM. Additionally, ABP1 is a negative regulator of the traditional $SCF^{TIR1/AFB}$ auxin signaling pathway. However, Gao et al. (2015) very recently reported that ABP1 is not a key component in auxin signaling, and the famous abp1-1 and abp1-5 mutant Arabidopsis lines are being called into question because of possible additional mutantion sites, making it necessary to reevaluate ABP1. In this review, we will provide a brief overview of the history of ABP1 research.
Auxin-binding protein 57 ($ABP_{57}$), a soluble auxin-binding protein, acts as a receptor to activate plasma membrane (PM) $H^+-ATPase$. Here, we report the cloning of abp57 and the biochemical characterization of its protein expressed in E. coli. The analysis of internal amino acid sequences of $ABP_{57}$ purified from rice shoots enabled us to search for the corresponding gene in protein DB of NCBI. Further BLAST analysis showed that rice has four abp57-like genes and maize has at least one homolog. Interestingly, Arabidopsis seems to have no homolog. Recombinant $ABP_{57}$ expressed in E. coli caused the activation of PM $H^+-ATPase$ regardless of the existence of IAA. Scatchard analysis showed that the recombinant protein has relatively low affinity to IAA as compared to natural $ABP_{57}$. These results collectively support the notion that the cloned gene is responsible for $ABP_{57}$.
하천변에 사는 식물들은 침수 저항성을 갖추고 있는데 그중 Ranunculus속이나 Rumex속에 속하는 일부 반수생 식물들에서 볼 수 있는 것처럼, 엽병이 급격한 생장을 일으켜 잎이 수표면에 이르게 함으로써 호흡할 수 있는 조건을 확보하는 현상은 식물체내에 축적된 에틸렌에 의하여 매개되는 현상이다. 침수 조건에서는 식물 조직 내에 에틸렌이 축적되며, 축적된 에틸렌은 옥신 등 다른 식물호르몬에 대한 조직의 감수성을 증가시켜 생장을 촉진한다. 증가된 생장으로 잎이 수표면에 이르게 되면 다시 공기를 접촉하여 호흡할 수 있게 되고, 식물체내에 축적되었던 에틸렌은 대기 중으로 확산하여 나가게 되므로 체내 에틸렌 농도가 감소하여 생장률이 침수 이전 수준으로 되돌아간다. 에틸렌에 의한 옥신의 감수성 증가는 선량 반응 곡선에 비추어 수용체의 친화도 증가가 수반되는 것으로 생각되는데, 아직 옥신 수용체가 밝혀지지 않아 분자생물학적 기작은 연구되어야 할 과제로 남아있다. 최근 옥신 수용체 발견의 가능성이 높아지고 있으며, 따라서 에틸렌에 의한 옥신 수용체의 옥신에 대한 감수성 조절기작을 탐구할 수 있는 길이 열릴 것으로 기대된다.
1. INTRODUCTION : Recognition and binding of organic substrates by biological molecules are of vital importance in biophysics and biophysical chemistry. Most studies of the application focused on the development of biosensors, which detected reaction products generated by the binding between enzymes and substrates. Other types of biosensors in which membrane proteins (e.g., nicotinic acetylcholine receptor, auxin receptor ATPase, maltose bining protein, and glutmate receptor) were utilized as a receptor function were also developed. In the previous study[1], the shifts in membrane potential, caused by the injection of substrates into a permeation cell, were measured using immobilized glucose oxidase membranes. It was suggested that the reaction product was not the origin of the potential shifts, but the changes in the charge density in the membrane due to the binding between the enzyme and the substrates generated the potential shifts. In this study, $\gamma$-globulin was immobilized (entrapped) in a poly($\gamma$-amino acid) network, and the shifts in the membrane potential caused by the injection of some amino acids were investigated.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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