Background: Disialoganglioside GD2 is a tumor-associated antigen that is overexpressed on tumor cells of neuroectodermal origin, such as melanoma, small cell lung carcinoma and neuroblastoma. Immunity against GD2 has anti-tumor activities, but GD2 is poorly immunogenic. Anti-idiotypic antibodies that mimic GD2 may induce more effective immune responses than GD2 antigen itself, because they are protein antigens and are known to be able to break immune tolerance. In our previous study, we produced anti-idiotypic antibodies mimicking GD2 (3A4 and 3H9), which induced humoral immunity. However, cellular immunity is essential to eradicate tumor cells in vivo as well as humoral immunity. In the present study, we investigated whether these anti-idiotypic antibodies 3A4 and 3H9 could induce cellular immunes responses. Methods: BALB/C mice were immunized with anti-idiotypic antibody 3A4 or 3H9, or normal mouse IgG as a negative control. Lymphoproliferative responses, cytokine production responses, and delayed-type hypersensitivity reactions were measured in mice immunized with the anti-idiotypic antibodies. Results: Both the anti-idiotypic antibody 3A4 and 3H9 induced GD2-specific lymphoproliferative responses and $IFN-{\gamma}$ production of lymph node lymphocytes in BALB/C mice. Only anti-idiotypic antibody 3H9 induced significant GD2-specific delayed-type hypersensitivity in the mice. Conclusion: These results show that anti-idiotypic antibodies 3A4 and 3H9 have the potentiality of inducing GD2-specific cellular immune responses that cannot be induced by the native antigen GD2 itself.
Antigen delivery systems play critical roles in determining the quality and quantity of Ab responses in vivo. Induction of protective antibodies by B cells is essential in the development of vaccines against infectious pathogens, whereas production of IgE antibodies is prerequisite for investigation of allergic responses, or type 1 hypersensitivity reactions. Virus-like particles (VLPs) are efficient platforms for expression of proteins of interest in highly repetitive manners, which grants strong Ab responses to target antigens. Here, we report that delivery of hen egg lysozyme (HEL), a model allergen, through VLP could provoke strong HEL specific IgE Ab responses in mice. Moreover, acute allergic responses were robustly induced in the mice sensitized with VLPs that express HEL, when challenged with recombinant HEL protein. Our data show that antigen delivery in the context of VLPs could function as a platform for sensitization of mice and for subsequent examination of allergic reactions to molecules of interest.
To enhance therapeutic potential of murine monoclonal antibody, humanization by CDR grafting is usually used to reduce immunogenic mouse residues. Most humanized antibodies still have mouse residues critical for antigen binding, but the mouse residues may evoke immune responses in humans. Previously, we constructed a new humanized version (AKA) of mouse CC49 antibody specific for tumor-associated glycoprotein, TAG-72. In this study, to select a completely human antibody light chain against TAG-72, guided selection strategy using phage display was used. The heavy chain variable region (VH) of AKA was used to guide the selection of a human TAG-72-specific light chain variable region (VL) from a human VL repertoire constructed from human PBL. Most of the selected VLs were identified to be originated from the members of the human germline VK1 family, whereas the VL of AKA is more homologous to the VK4 family. Competition binding assay of the selected Fabs with mouse CC49 suggested that the epitopes of the Fabs overlap with that of CC49. In addition, they showed better antigen-binding affinity compared to parental AKA. The selected human VLs may be used to guide the selection of human VHs to get completely human anti-TAG72 antibody.
The present study was performed to evaluate how cellular and humoral immune responses were perturbed by immunization of mixed periodontal bacterial biofilms. Each group of mice was immunizared with 1) Poqhyromonas gingivalis (P. gingivaliis) grown as a planktonic culture, 2) Fusobacterium nucleatum (F. nucleatum), 3) P. gingivalis grown as a biofilm, or 4) mixed P. gingivalis plus F. nucleatum grown as a biofilm culture, respectively. Immune mouse sera were collected from each mouse. Spleens were harvested to isolate T cells and consequently stimulated with antigen presenting cells and P. gingivalis whole cell antigen to establish P. gingivalis-specific T cell lines. There were no significant differences in the mean anti- gingivalis IgG antibody titers among mouse groups. Immunization of mice with pure P. gingivalis biofilm or mixed P gingivalis plus F. nucleatum biofilm resulted in significant reduction o f antibody avidity and opsonophagocytois function. INF-$\gamma$production by P. gingivalis-specific T cell lines was also substantially recluced in mouse groups immunized with the biofilm. It was concluded that P. gingivalis biofilm perturbs the cellular and humoral immune responses in periodontal disease.
In order to direct the form of the immune response in an antigen-specific manner, we constructed a fusion protein (OVA/IL12) that contained the T cell-dependent antigen, ovalbumin (OVA), covalently linked to murine interleukin-12 (IL-12). The OVA/IL12 protein was produced in a baculovirus expression system and was purified by anti-OVA immunoaffinity chromatography. The purified OVA/ILI2 protein displayed potent IL-12 bioactivity in an IL-12 proliferation assay. BALB/c mice immunized with the OVA/IL12 protein produced increased quantities of anti-OVA IgG2a antibody compared with mice immunized with recombinant OVA alone. Lymph node cells from the immunized mice with the OVA/IL12 protein produced large amounts of IFN-,Y when restimulated in vitro with OVA, while those from mice immunized with the OVA protein produced little or no IFN-.gamma.. In contrast, immunization with a mixture of OVA and free recombinant IL-12 also induced IFN-.gamma. production, which was not OVA-specific. These studies indicate that the OVA/IL12 fusion protein can induce OVA-specific, Th1-dominated immune responses, and that the covalent linkage of OVA and IL-12 confines the effect of IL-12 to OVA-specific cells.
Eun Jin Kim;Jonghyun Bae;Young-Jun Ju;Do-Bin Ju;Donghyun Lee;Seonghyeon Son;Hunseok Choi;Thandavarayan Ramamurthy;Cheol-Heui Yun;Dong Wook Kim
Journal of Microbiology and Biotechnology
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제32권11호
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pp.1396-1405
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2022
Cholera remains a major global public health problem, for which oral cholera vaccines (OCVs) being a valuable strategy. Patients, who have recovered from cholera, develop antibody responses against LPS, cholera toxin (CT), toxin-coregulated pilus (TCP) major subunit A (TcpA) and other antigens; thus, these responses are potentially important contributors to immunity against Vibrio cholerae infection. However, assessments of the efficacy of current OCVs, especially inactivated OCVs, have focused primarily on O-antigen-specific antibody responses, suggesting that more sophisticated strategies are required for inactivated OCVs to induce immune responses against TCP, CT, and other antigens. Previously, we have shown that the toxT-139F allele enables V. cholerae strains to produce CT and TCP under simple laboratory culture conditions. Thus, we hypothesized that V. cholerae strains that express TCP via the toxT-139F allele induce TCP-specific antibody responses. As anticipated, V. cholerae strains that expressed TCP through the toxT-139F allele elicited antibody responses against TCP when the inactivated bacteria were delivered via a mouse model. We have further developed TCP-expressing V. cholerae strains that have been used in inactivated OCVs and shown that they effect an antibody response against TcpA in vivo, suggesting that V. cholerae strains with the toxT-139F allele are excellent candidates for cholera vaccines.
Bone marrow is a hematological and immunological organ that provides multiple immune cells, including B lymphocytes, and thus plays a critical role in the efficacy of vaccine. We previously demonstrated that Bordetella (B.) bronchiseptica antigen has high immunogenicity in spleen cells, a peripheral immune organ. In this study, we investigated the immunogenicity of B. bronchiseptica antigen in bone marrow cells, a central immune organ. B. bronchiseptica antigen increased the cellular activity of bone marrow cells and significantly enhanced the production of nitric oxide, IL-6, and TNF-${\alpha}$. Bone marrow cells primed with B. bronchiseptica antigen in vivo were harvested and stimulated with the same antigen in vitro. The stimulation of B. bronchiseptica antigen significantly increased the cellular activity and proliferation rate of the primed cells. B. bronchiseptica antigen also greatly induced the production of antigen-specific antibody in the primed cells. Taken together, the present study demonstrated that B. bronchiseptica antigen can stimulate bone marrow cells, a central immune organ, and recall the immune response of the primed bone marrow cells.
Lee, In Yong;Lee, Joonhee;Park, Weon Seo;Nam, Eui-Cheol;Shin, Yung Oh;Choe, Jongseon
IMMUNE NETWORK
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제1권1호
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pp.26-31
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2001
Background : Follicular dendritic cells (FDCs) play key roles during T cell-dependent humoral immune responses by allowing antigen-specific B cells to survive, proliferate, and differentiate within the FDC networks of secondary follicles, i.e., germinal centers (GC). Methods: A novel monoclonal antibody, 3C8, was generated by immunizing with an FDC line HK, in order to understand the molecular signals involved in the FDC-B cell interactions in the microenvironment of the GC. Results: The 3C8 antibody did not bind to mononuclear cells, including T cells, B cells, and monocytes. Murine L929 and human skin fibroblasts exhibited no or little reactivity to 3C8. However, 3C8 specifically recognized HK cells by flowcytometry. Furthermore, the antigen recognized by 3C8 was restricted to the GC of the human tonsil. Dendritic networks of the GC were intensely stained by 3C8, but cells outside the GC were not. Conclusion: Our results suggest that the antigen 3C8 may play some unique role on FDCs during the GC reactions.
MOHAMMADI Mohammad Reza;ZEINALI Majid;ARDESTANI Sussan K.;KARIMINIA Amina
Parasites, Hosts and Diseases
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제44권1호
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pp.43-48
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2006
Experimental murine models with high, intermediate and low levels of genetically based susceptibility to Leishmania major infection reproduce almost entire spectrum of clinical manifestations of the human disease. There are increasing non-comparative studies on immune responses against isolated antigens of L. major in different murine strains. The aim of the present study was to find out whether there is an antigen that can induce protective immune response in resistant and susceptible murine strains. To do that, crude antigenic extract of procyclic and metacyclic promastigotes of L. major was prepared and subjected to SDS-PAGE electrophoresis. Western-blotting was used to search for antigen(s) capable of raising high antibody level of IgG2a versus IgG1 in the sera of both infected resistant and susceptible strains. Two novel antigens from metacyclic promastigotes of L. major (140 and 152 kDa) were potentially able to induce specific dominant IgG2a responses in BALB/c and C57BU6 mice. The 2 antigens also reacted with IgG antibody of cutaneous leishmaniasis patients. We confirm that 140 and 152 kDa proteins of L. major promastigotes are inducing IgG production in mice and humans.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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