톡소이드는 독성은 제거되고 항원성은 유지시킨 독소 단백질로써, 다양한 병원체의 감염 및 질병 예방을 위해 지속적으로 연구 되었다. 그러나, 톡소이드의 활성 감소 및 이와 함께 사용하는 어쥬번트의 부작용 등이 지속적으로 보고되면서, 면역성은 강화하고 어쥬번트의 사용은 줄일 수 있는 톡소이드 항원 전달 시스템이 필요하게 되었다. 따라서, 이러한 단점을 개선하고자 최근 새로운 백신과 약물 전달수송을 위해 다양한 분야에서 활용하고 있는 마이크로/나노 운반체를 톡소이드 항원에 도입하고 있다. 이와 같은 마이크로/나노 운반체는 미생물 자체를 이용하거나 미생물을 통해 생산해 낼 수도 있으며, 더 나아가 다양한 소재의 폴리머를 이용하여 제작할 수 있다. 본 총설에서는 톡소이드 항원 전달을 위한 마이크로/나노 운반체를 미생물 유래의 ghost cells (GCs), 그람 음성 세균이 분비하는 outer membrane vesicles (OMVs) 및 고분자 폴리머로 구성된 nanoparticles (NPs)으로 분류하였다. 마지막으로 각 운반체에 대한 톡소이드 항원의 전달 방식 및 이를 적용하였을 때 일어나는 면역반응에 대하여 서술하였으며, 이를 통해 향후 톡소이드의 효율 및 부작용이 개선되기를 기대한다.
One of the practical limitations with the use of liposomes for delivery of the pharmaceutical substances such antigens is that liposomes are relatively unstable in storage. In order to extend the stability of liposome in storage without affecting their functional activity, solution-type liposomes were dehydrated to form a structurally intact dry liposomes. Comparative immunological evaluation was carried out for both dry and solution-type liposomes containing gag-V3 chimera, consequently it was found that dry liposomes elicited both humoral and cellular response as efficiently as solution-type liposemes did against the same gag-V3 antigen. Especially, long-term stability of the liposomes was remarkably enhanced by the dehydration made to loposomes without a significant change in its ability to elicit immune response in vivo. These results indicate that dry pH-sensitive liposome may become an effective delivery and adjuvant system for general vaccine development.
To demonstrate their possibilities as an enhanced vaccine delivery system, protein-loaded Poly lactide glycolide copolymer (PLGA) microspheres were prepared with different physical characteristics. Ethyl acetate (EA) solvent extraction process was employed to prepare microspheres and the effects of process parameters on drug release properties were evaluated. The biodeuadability of microspheres was also evaluated by the pH change and GPC (Gel permeation chromatography). Primary IgG antibody responses in BALB/c mice were compared with protein saline solutions as negative controls and adsorbed alum suspensions as positive controls after single subcutaneous injection for in vivo studies. The microspheres showed a erosion with a highly porous structure and did not keep their spherical shape at 45 days and this result could be confirmed by GPC. In vitro release of proteinous drug showed initial burst effect in all batches of microspheres, followed by gradual release over the next 4 weeks. PLGA microspheres were degraded until 45 days and the secondary structure of OVA was not affected by the preparation method. Enzyme-linked immunosorbent assays demonstrated that the single subcutaneous administrations of OVA-loaded PLGA microspheres induced enhanced serum IgG antibody response in comparison to negative and positive controls. These results demonstrated that microspheres providing the controlled release of antigens might be useful in advanced vaccine formulations for the parenteral carrier system.
Progress in the development of DNA vaccines and their delivery strategies has been made since their initial concept as a next generation vaccine. Since DNA vaccine includes non-infectious DNA parts of pathogens, it can't cause disease yet it closely mimic the natural process of infection and immune responses. Despite their early promising results of controlling infectious diseases and cancer in small animal models, DNA vaccines failed to display a level of immunogenicity required for combating these diseases in humans, possibly due to their lower protein expression levels. However, increasing evidence has shown that DNA vaccines are clinically well-tolerated and safe. Furthermore, one notable advantage of DNA vaccines includes convenient utilities of plasmid DNAs coding for antigens. For instance, any emerging pathogens could be prevented easily and timely by allowing the simple exchange of antigen-encoding genes. In this review, newly developed DNA vaccine strategies, including electroporation, which has emerged as a potent method for DNA delivery, targeting infectious diseases and cancer will be discussed with a focus on any on-going DNA vaccine trials or progress made pre-clinically and in clinics.
Kim, Ji-Seon;Lee, Young-Sung;Lee, Jung-Gil;Park, Jeong-Sook;Lee, Jong-Kil;Chung, Youn-Bok;Han, Kun
Journal of Pharmaceutical Investigation
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제41권3호
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pp.185-190
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2011
The purpose of this study was to evaluate the phagocytic uptake of surface modified PLGA microspheres containing ovalbumin (OVA) into dendritic cell. In order to find the most suitable formulation for targeted delivery to antigen presenting cells (APC), OVA was encapsulated by a double emulsion solvent evaporation method with three PLGA microspheres (PLGA 50:50, PLGA 75:25 and PLGA 85:15) and two surface modified microspheres by chitosan and sodium dodecyl sulfate (SDS). Physicochemical properties were evaluated in terms of size, zeta potential, encapsulation efficiency, different scanning calorimeter (DSC), x-ray diffraction, morphology, and OVA release test from microspheres. Phagocytic activity was estimated using dendritic cells and analyzed by fluorescence activated cell sorter (FACS). The result showed that zeta potential of PLGA particles was changed to positive by the chitosan modification. The release profile of chitosan modified PLGA microspheres exhibited sustained release after initial burst. The chitosan modified microspheres had higher phagocytic uptake than the other microspheres. Such physicochemical properties and phagocytic uptake studies lead us to conclude that chitosan modified microspheres is more suitable formulation for the targeted delivery of antigens to APC compared with the other microspheres.
In order to use nervous necrosis virus (NNV) virus-like particles (VLPs) as a delivery tool for heterologous antigens or plasmids, we attempted to produce red-spotted grouper nervous necrosis virus (RGNNV) VLPs displaying a partial region of viral hemorrhagic septicemia virus (VHSV) glycoprotein at the surface and VLPs that are harboring DNA vaccine plasmids within the VLP. A peptide encoding 105 amino acids of VHSV glycoprotein was genetically inserted in the loop region of NNV capsid gene, and VLPs expressing the partial part of VHSV glycoprotein were successfully produced. However, in the transmission electron microscope analysis, the shape and size of the partial VHSV glycoprotein-expressing NNV VLPs were irregular and variable, respectively, indicating that the normal assembly of capsid proteins was inhibited by the relatively long foreign peptide (105 aa) on the loop region. To encapsulate by simultaneous transformation with both NNV capsid gene expressing plasmids and DNA vaccine plasmids (having an eGFP expressing cassette under the CMV promoter), NNV VLPs containing plasmids were produced. The encapsulation of plasmids in the NNV VLPs was demonstrated by PCR and cells exposed to the VLPs encapsulating DNA vaccine plasmids showed fluorescence. These results suggest that the encapsulation of plasmids in NNV VLPs can be done with a simple one-step process, excluding the process of disassembly-reassembly of VLPs, and NNV VLPs can be used as a delivery tool for DNA vaccine vectors.
Leptospirosis is a worldwide zoonotic disease caused by pathogenic Leptospira, a genus of which more than 250 serovars have been identified. Commercial bacterin vaccines are limited in that they lack both cross-protection against heterologous serovars and long-term protection. This study investigated in mice the immunogenicity of an anti-leptospirosis vaccine, using the outer membrane proteins LipL32 and Loa22 as antigens. The immunogenicity of this vaccine formulation was compared with those induced by vaccines based on LipL32 or Loa22 alone. A DNA-encapsulated chitosan nanoparticle was used for in vivo DNA delivery. Using a unique DNA plasmid expressing both lipL32 and loa22 for vaccination, higher antibody responses were induced than when combining plasmids harboring each gene separately. Therefore, this formulation was used to test the immunogenicity when administered by a heterologous prime (DNA)-boost (protein) immunization regimen. The specific antibody responses against LipL32 (total IgG and IgG1) and Loa22 (IgG1) were higher in mice receiving two antigens in combination than in those vaccinated with a single antigen alone. Although no significant difference in splenic CD4+ T cell proliferation was observed among all groups of vaccinated mice, splenocytes from mice vaccinated with two antigens exhibited higher interferon-γ and IL-2 production than when using single antigens alone upon in vitro restimulation. Taken together, the immunogenicity induced by LipL32 and Loa22 antigens in a heterologous primeboost immunization regimen using chitosan as a DNA delivery system induces higher immune response, and may be useful for developing a better vaccine for leptospirosis.
Kim, Hyun-Joo;Cha, Gil Sun;Joo, Ji-Young;Lee, Juyoun;Kim, Sung-Jo;Lee, Jeongae;Park, So Youn;Choi, Jeomil
Journal of Periodontal and Implant Science
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제47권5호
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pp.292-311
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2017
Purpose: Beyond the limited scope of non-specific polyclonal regulatory T cell (Treg)-based immunotherapy, which depends largely on serendipity, the present study explored a target Treg subset appropriate for the delivery of a novel epitope spreader Pep19 antigen as part of a sophisticated form of immunotherapy with defined antigen specificity that induces immune tolerance. Methods: Human polyclonal $CD4^+CD25^+CD127^{lo-}$ Tregs (127-Tregs) and $na\ddot{i}ve$$CD4^+CD25^+CD45RA^+$ Tregs (45RA-Tregs) were isolated and were stimulated with target peptide 19 (Pep19)-pulsed dendritic cells in a tolerogenic milieu followed by ex vivo expansion. Low-dose interleukin-2 (IL-2) and rapamycin were added to selectively exclude the outgrowth of contaminating effector T cells (Teffs). The following parameters were investigated in the expanded antigen-specific Tregs: the distinct expression of the immunosuppressive Treg marker Foxp3, epigenetic stability (demethylation in the Treg-specific demethylated region), the suppression of Teffs, expression of the homing receptors CD62L/CCR7, and CD95L-mediated apoptosis. The expanded Tregs were adoptively transferred into an $NOD/scid/IL-2R{\gamma}^{-/-}$ mouse model of collagen-induced arthritis. Results: Epitope-spreader Pep19 targeting by 45RA-Tregs led to an outstanding in vitro suppressive T cell fate characterized by robust ex vivo expansion, the salient expression of Foxp3, high epigenetic stability, enhanced T cell suppression, modest expression of CD62L/CCR7, and higher resistance to CD95L-mediated apoptosis. After adoptive transfer, the distinct fate of these T cells demonstrated a potent in vivo immunotherapeutic capability, as indicated by the complete elimination of footpad swelling, prolonged survival, minimal histopathological changes, and preferential localization of $CD4^+CD25^+$ Tregs at the articular joints in a mechanistic and orchestrated way. Conclusions: We propose human $na\ddot{i}ve$$CD4^+CD25^+CD45RA^+$ Tregs and the epitope spreader Pep19 as cellular and molecular targets for a novel antigen-specific Treg-based vaccination against collagen-induced arthritis.
The tetradecameric peptide (K47-K60) near the NH$_2$-terminal region of epithelial-cell adhesion molecule (Ep-CAM) was chosen as antigenic site and a polyclonal antibody was generated, which could recognize Ep-CAM from the mouse colon tissue or the colon cancer cell, CT-26, in Western blot analysis. Then, the fluorescein isothiocyanate (FITC), a fluorescence dye, was conjugated with the affinity purified Ep-CAM antibody using thiocyanate and the amino groups of FITC and antibody, respectively. The molar ratio of FITC to antibody was estimated approximately 1.86 to 1.00 by measuring the optical densities at 492 nm and 280 nm. Ep-CAM antibody-FITC conjugate was then used for immunohistochemistry of the CT-26 cells. Judging from the shapes formed by fluorescence, the Ep-CAM antibody could delivered FITC to the surface of cells in which Ep-CAM was expressed. This result implies that Ep-CAM antibody could be also used for the tissue-specific delivery of the photosensitizer to the target protein via antigen-antibody interaction.
A bispecific antibody (BsAb) is an artificial protein containing two kinds of specific antigen binding sites. BsAb can connect target cells to functional cells or molecules, and thus stimulate a directed immune response. Last several decades a wide variety of bsAb formats and production technologies have been developed. BsAbs are constructed either chemically or biologically, exploiting techniques like cell fusion and recombinant DNA technologies. There are over 100 different formats of bsAb so far developed, but they could be classified into the two main categories such as Fc-based (with a Fc region) bsAbs and fragment-based (without a Fc region) bsAbs. BsAb has a broad application prospect in tumor immunotherapy and drug delivery. Here, we present a brief introduction to the structure of antibody, pharmacological mechanisms of antibodies and the trend in the production technologies of therapeutic antibodies. In addition, we address a review on the current status of various bsAb format development and their production technologies together with global situation in the clinical studies of bsAb.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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