Kwon, Young-Nam;Lee, Joon Ha;Kim, In-Woo;Kim, Sang-Hee;Yun, Eun-Young;Nam, Sung-Hee;Ahn, Mi-Young;Jeong, MiHye;Kang, Dong-Chul;Lee, In Hee;Hwang, Jae Sam
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.23
no.10
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pp.1381-1385
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2013
The centipede Scolopendra subpinipes mutilans is a medicinally important arthropod species. However, its transcriptome is not currently available and transcriptome analysis would be useful in providing insight into a molecular level approach. Hence, we performed de novo RNA sequencing of S. subpinipes mutilans using next-generation sequencing. We generated a novel peptide (scolopendrasin II) based on a SVM algorithm, and biochemically evaluated the in vitro antimicrobial activity of scolopendrasin II against various microbes. Scolopendrasin II showed antibacterial activities against gram-positive and -negative bacterial strains, including the yeast Candida albicans and antibiotic-resistant gram-negative bacteria, as determined by a radial diffusion assay and colony count assay without hemolytic activity. In addition, we confirmed that scolopendrasin II bound to the surface of bacteria through a specific interaction with lipoteichoic acid and a lipopolysaccharide, which was one of the bacterial cell-wall components. In conclusion, our results suggest that scolopendrasin II may be useful for developing peptide antibiotics.
Antibacterial compounds are widely used in the treatment of human and animal diseases. The overuse of antibiotics has led to a rapid rise in the prevalence of drug-resistant bacteria, making the development of new antibacterial compounds essential. This study focused on developing a fast and easy method for identifying marine bacteria that produce antibiotic compounds. Eight randomly selected marine target bacterial species (Agrococcus terreus, Bacillus algicola, Mesoflavibacter zeaxanthinifaciens, Pseudoalteromonas flavipulchra, P. peptidolytica, P. piscicida, P. rubra, and Zunongwangia atlantica) were tested for production of antibacterial compounds against four strains of test bacteria (B. cereus, B. subtilis, Halomonas smyrnensis, and Vibrio alginolyticus). Colony picking was used as the primary screening method. Clear zones were observed around colonies of P. flavipulchra, P. peptidolytica, P. piscicida, and P. rubra tested against B. cereus, B. subtilis, and H. smyrnensis. The efficiency of colony scraping and broth culture methods for antimicrobial compound extraction was also compared using a disk diffusion assay. P. peptidolytica, P. piscicida, and P. rubra showed antagonistic activity against H. smyrnensis, B. cereus, and B. subtilis, respectively, only in the colony scraping method. Our results show that colony picking and colony scraping are effective, quick, and easy methods of screening for antibacterial compound-producing bacteria.
R-plasmid(pSBK203, 2.5Mdal) conferring chloramphenicol resistance was isolated from mutiple antibiotic resistant Staphylococcus aureus D-H-1. Bacillus subtilis BD170 was transformed by this plasmid and restriction enzyme clevage sites of this plasmid were mapped for the cloning of chloramphenicol resistance gene. Taq I partial digested fragment of pSBK203(1.3kb) inserted into Cla I site of pBD9 appears to have both regulatory region for induction and structural gene for chloramphenicol resistance whereas Rsa I fragment (1.3kb, both ends are staggered away 0.1Kb from those of Taq I fragment) inserted into Sca I site of pBR322 showed constitutive expression in E. coli. Hinf I, Taq I, and Bgl II restriction enzyme recognition sites are found in both Rsa I fragment and Taq I fragment. Among these, Bgl II recognition site was associated with chloramphenicol resistance.
A methane-oxidizing bacterium was isolated from rice paddy field soil around Jeollanam-do province, Korea, and characterized. The isolate was gram-negative, orange pigmented and short rod ($1.1-1.2{\times}1.6-1.9{\mu}m$). It was catalase and urease-negative but oxidase-positive. The strain utilized methane and methanol as sole carbon and energy sources. It had an ability to grow with an optimum pH 7.0 and an optimum growth temperature $30^{\circ}C$. The strain was resistant to antibiotic polymyxin B but sensitive to streptomycin, kanamycin, ampicillin, chloramphenicol and rifampicin. The isolate required copper for their growth with concentration range of $2-25{\mu}M$, with an optimum of $10{\mu}M$. Under optimal culture condition, specific cell growth rate and generation time were found to be $0.046hr^{-1}$ and 15.13 hr, respectively. Phylogenetic analysis based on 16S rDNA sequences indicated that the strain formed a tight phylogenetic lineage with Methylomonas koyamae with a value of 99.4% gene sequence homology. So, we named the isolate as Methylomonas sp. SM4. 8.6 mM methanol was accumulated in the reaction mixture containing 70 mM sodium formate and 40 mM $MgCl_2$ (MDH inhibitor) under atmosphere of methane:air (40:60) mixture for 24 hr at $30^{\circ}C$.
Nam, Eun Woo;Lee, Kun Song;Kim, Junyoung;Yoo, Cheon Kwon
Pediatric Infection and Vaccine
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v.23
no.3
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pp.223-228
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2016
Shigella is a common cause of bacterial enteritis worldwide. Shigella sonnei accounts for 90% of Shigella infections and Shigella flexneri is rarely reported in Korea. Although the incidence of Shigella infection has decreased, the incidence of organisms with antibiotic resistance has gradually increased in Korea. An outbreak of extended-spectrum ${\beta}-lactamase$ (ESBL)-producing S. sonnei in children was reported in Korea; however, ESBL-producing S. flexneri has not yet been reported. We report the first two cases of multidrug-resistant CTX-M-14-producing S. flexneri infections in Korean children.
Staphylococcus aureus is one of most prevalent intramammary pathogens and have characteristics which are not easily eradicated. Recently, to understand the sources and transmission of S aureus, many studies have focused on the subtyping of field isolate. This study was preformed to investigate the distribution pattern and characteristics of the isolates using phenotyping and genotyping. Samples were collected from milk of each udder, cow bodies (perianal region, vagina, tail, udder skin, sole) and environment (floor, liner, milker's hands, water, towel, insect) from 6 herds located in Kyung-gi province. Forty five strains of S aureus were isolated from 3 dairy herds (A, B, C) and were typed by hemolytic pattern, antibiotic resistant pattern, enterotoxin typing and PCR-based DNA fingerprinting. Slime productivity was also compared by each subtype to examine potential infectiousness. Of 45 strains, 41 were isolated from milk samples and 4 were isolated from liners. No strains isolated in the bodies and environment. Forty five strains isolated were classified as 18 subtypes by phenotyping and genotyping. There was common subtype between A and B herd, but the subtype of C herd showed different pattern. Among predominant subtypes, 60% of S aureus strain isolated from A and B herd showed subtype I and 50% of S aureus strain isolated from C herd belonged to subtype VI and X II. Neither somatic cell count (SCC) nor slime production was significantly different between predominant and minor subtypes. In summary, the study revealed that liners play more important roles in the mode of transmission than environmental sources. Several subtypes can be found in a herd, only a few subtype, however, was largely associated with the majority of infection.
Park, Sang-koo;Son, Won-geun;Lee, Hu-jang;Kim, Young-hwan;Kang, Ho-jo
Korean Journal of Veterinary Research
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v.44
no.1
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pp.89-98
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2004
This study was carried out to investigate the serotype, and antimicrobial susceptibility and analyze the plasmid profile for the 145 isolates of L. monocytogenes isolated from livestock products and these product processing plants in Gyeongnam, Korea. All of L. monocytogenes strains belonged to serotype 1/2b (57.9%), 1/2a (20.0%), 4b (11.4%), 1/2c, 3b, 4c (each 2.9%) and 4d (0.7%). Serotype 1/2b, 1/2a, 4b from each source were found predominantly. Serotype 1/2b was predominantly higher than other serotype, and there was no significant difference between serotypes isolated from livestock products and product processing plants. 4b was major serotype isolated from raw milk and pork, and serotypes isolated from beef, chickens and slaughterhouse were 1/2b and 1/2a. The susceptibility of 145 strains of L. monocytogenes to 14 antibiotics commonly used in veterinary and human therapy was determined by disk diffusion method. All of L. monocytogenes strains were susceptible to amikacin, ampicillin, cephalothin, chloramphenicol, gentamicin, kanamycin, neomycin and penicillin. L. monocytogenes strains had the highest resistance with colistin (100%), oxytetracycline (44.8%), tetracycline (43.4%) followed by erythromycin (2.8%), spectinomycin (1.4%) and streptomycin (0.7%). Tetracycline resistance, and serotype distribution of the isolates from sample sources were significantly different. Resistance to at least one antibiotic was observed in all of them and 7 different resistant profiles were recorded. The most common resistance pattern were CL-OTC-TC (colistin-oxytetracycline-tetracycline) (42.8%). Among all tested isolates, two different plasmid profiles were observed. Of the 97 examined strains, 14 (14.4%) contained either the 8 and 11 kb plasmid or the 11 kb.
Acinetobacter baumannii is an aerobic, gram-negative and glucose-non-fermenting bacterium, which has emerged as a serious opportunistic pathogen. Many clinical microbiology laboratories use the Vitek 2 system for the routine antimicrobial susceptibility testing process, including testing on A. baumannii isolates. However, in case of amikacin, it is now recommended to perform additional antimicrobial susceptibility testing for A. baumannii strains due to the relatively lower minimum inhibitory concentration (MIC) in the Vitek 2 system compared to conventional reference methods. In our study, we assessed MIC for amikacin susceptibility testing of A. baumannii isolates in the Vitek 2 system, the agar dilution, Etest, and disk diffusion method. We collected 40 gentamicin-resistant, A. baumannii strains (amikacin MIC by Vitek 2:${\leq}2{\mu}g/mL$, 2 isolates; $4{\mu}g/mL$, 34 isolates; $8{\mu}g/mL$, 4 isolates) from a University hospital and compared the Vitek 2 system to other reference methods for testing susceptibility to amikacin. The Vitek 2 system showed major errors in all of the 40 isolates, yielding a low MIC. The results of our study strongly suggested that the Vitek 2 system was not a reliable method to test the MICs of gentamicin; ranging from ${\geq}16{\mu}g/mL$ for amikacin susceptibility. Other tests, such as agar dilution, Etest, or disk diffusion methods, should be paralleled to determine the MIC of amikacin in A. baumannii.
Background: Tetracycline is an antibiotic widely used for the treatment of Helicobacter pylori infection, but its effectiveness is decreasing due to increasing bacterial resistance. The aim of this study was to investigate the occurrence of 16S rRNA mutations associated with resistance or reduced susceptibility to tetracycline ofHelicobacter pylori by real-time PCR (RT-PCR) assays from culture. Materials and Methods: Tetracycline susceptibility and minimal inhibition concentration (MIC) was determined by the Epsilometer test (Etest) method. A LightCycler assay developed to detect these mutations was applied to DNA extracted from culture. The 16S rRNA of these isolates was sequenced and resistance-associated mutations were identified. From 104 isolates of H. pylori examined, 11 showed resistance to tetracycline. Results: LightCycler assay was applied to DNA extracted from 11 tetracycline-susceptible and 11 tetracycline resistance H. pylori isolates. In our study the sequencing of the H. pylori wild types in 16 s rRNA gene were AGA 926-928 with MIC (0.016 to $0.5{\mu}g/ml$), while the sequencing and MIC for resistant were GGA and AGC, (0.75 to $1.5{\mu}g/ml$), respectively. Also we found a novel mutation in 2 strains with $84^{\circ}C$ as their melting temperatures and exhibition of an A939C mutation. Conclusions: We conclude that real-time PCR is an excellent method for determination of H. pylori tetracycline resistance related mutations that could be used directly on biopsy specimens.
Kim, Se Eun;Kim, Ji Woo;Kim, Yeong Ji;Kwon, Deug-Nam;Kim, Jin-Hoi;Kang, Man-Jong
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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v.29
no.4
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pp.564-570
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2016
The Sal-like 1 gene (Sall1) is essential for kidney development, and mutations in this gene result in abnormalities in the kidneys. Mice lacking Sall1 show agenesis or severe dysgenesis of the kidneys. In a recent study, blastocyst complementation was used to develop mice and pigs with exogenic organs. In the present study, transcription activator-like effector nuclease (TALEN)-mediated homologous recombination was used to produce Sall1-knockout porcine fibroblasts for developing knockout pigs. The vector targeting the Sall1 locus included a 5.5-kb 5' arm, 1.8-kb 3' arm, and a neomycin resistance gene as a positive selection marker. The knockout vector and TALEN were introduced into porcine fibroblasts by electroporation. Antibiotic selection was performed over 11 days by using $300{\mu}g/mL$ G418. DNA of cells from G418-resistant colonies was amplified using polymerase chain reaction (PCR) to confirm the presence of fragments corresponding to the 3' and 5' arms of Sall1. Further, mono- and bi-allelic knockout cells were isolated and analyzed using PCR-restriction fragment length polymorphism. The results of our study indicated that TALEN-mediated homologous recombination induced bi-allelic knockout of the endogenous gene.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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