A strain producing ${\alpha}$-galactosidase and ${\beta}$-glucosidase was isolated from Kimchi. The isolated strain was identified as Weissella cibaria by 16S rDNA analysis and designated as Weissella cibaria K-M1-4. The enzyme activity of ${\alpha}$-galactosidase and ${\beta}$-glucosidase reached the maximum in the soy medium at $37^{\circ}C$ for 24 hr. The enzymes were purified by ethanol fractionation, DEAE sepharose fast flow, and sephacryl S-100HR column chromatography. ${\alpha}$-Galactosidase specific activity was shown by 576 Units/mg protein and the yield was 3.5% of the total activity of crude extracts. ${\beta}$-glucosidase specific activity was shown by 480 Units/mg protein and the yield was 2.9% of the total activity of crude extracts. The optimum temperature for ${\alpha}$-galactosidase was $60^{\circ}C$ and 43% of its original activity remained when it was treated at $80^{\circ}C$ for 30 min. For ${\alpha}$-galactosidase shows the optimum pH of 8.0 and is fairly stable between pH5.0 and pH9.0. The enzyme activity was increased in the presence of $Fe^{2+}$ and $Cu^{2+}$. The value of Km and Vmax for the enzyme were 0.98 mM and $1.81{\mu}$mole/min, respectively. The ${\beta}$-glucosidase has the optimum temperature of $50^{\circ}C$ and 46% of its original activity remained when it was treated at $80^{\circ}C$ for 30min. Its optimum pH of 7.0 and is fairly stable between pH5.0 and pH9.0. The enzyme activity was increased in the presence of $Fe^{2+},\;Co^{2+}$ and $Cu^{2+}$. The value of Km and Vmax for the enzyme were 1.24 mM and $6.81{\mu}$mole/min, respectively.
An ${\alpha}$-D-galactosidase (${\alpha}$-D-galactoside galactohydrolase, EC 3. 2. 1. 22) from sunflower seed was purified by affinity chromatography using N-$\varepsilon$-aminocaproyl-${\alpha}$-D-galactopyranosylamine coupled to sepharose and its properties were examined. The specific activity of the purified enzyme, tested with p-nitrophenyl-${\alpha}$-D-galactopyranoside as substrate, was 291.66 units/mg protein, representing an 115-folds purification of the original crude extract. The final preparation obtained from by Sephadex G-25 chromatography showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was determined to be 42,000 by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The purified galactosidase showed maximum activity at pH 4.5 and 55$^{\circ}C$, and was stable in the pH and temperature ranges of 4.0 to 5.0 and 30 to 55$^{\circ}C$, respectively. The enzyme activity was inhibited by Ag$\^$2+/, Hg$\^$2+/ and Co$\^$2+/. The enzyme activity was not affected considerably by treatment with other metal compounds. The enzyme liberated galactose from melibiose, raffinose, copra galactomannan, guar gum and locust bean gum by TLC, and also the hydrolysis rate of substrate was compared by HPLC.
Park, Seong-Sik;Kim, Woong-Han;Kim, Kyung-Hwan;Lee, Chang-Ha;Choi, Sun-Young;Lee, Cheul;Oh, Sam-Sae;Kim, Kwan-Chang;Kim, Yong-Jin
Journal of Chest Surgery
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v.41
no.1
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pp.12-24
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2008
Background: It is currently thought that tissue valve degeneration is related to an animal's immune response, which is mainly due to cell surface ${\alpha}$-Gal epitopes. Cell surface ${\alpha}$-Gal epitopes are known to be degraded by the enzyme called green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase. It is also well known that ${\alpha}$-Gal epitopes are immunologically stained by Griffonia Simplicifolia isolectin type B4. We know that many commercially available tissue valves are made of aortic valves and pericardial tissue of pig. So, we investigated whether ${\alpha}$-Gal epitopes of the aortic valve and pericardial tissue of a pig can be removed by green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase, and we did so by comparing immunologic staining of the tissues before and after the enzyme treatment. Material and method: After treating fresh porcine aortic valve and pericardial tissue with green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase at concentrations of 0.5 unit/mL, 1.0 unit/mL, 2.0 unit/mL, respectively, under the condition of pH 6.5, temperature. $4^{\circ}C$ and 24 hours of incubation, each sample was stained with Griffonia Simplicifolia isolectin type B4 immunpfluorescent labeling. We then examined whether the ${\alpha}$-Gal epitopes were reduced or abolished in each consecutive. concentration of green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase by comparing the degree of the Griffonia Simplicifolia isolectin B4 staining in each sample. Result: In the pig aortic valve tissue, a 1.0 unit/mL concentration of green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase at pH 6.5, $4^{\circ}C$ and reaction for 24 hours was enough for complete removal of ${\alpha}$-Gal epitopes from the cell sur face on the immunostaining with Griffonia Simplicifolia isolectin B4. On the other hand, more ${\alpha}$-Gal epitopes were present in the pig pericardial tissue on Griffonia Simplicifolia isolectin B4 staining before the enzyme treatment, and 1.0 unit/mL of galactosidase was not sufficient for complete removal of ${\alpha}$-Gal from the tissue. 2.0 units/mL of green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase was needed to completely remove the ${\alpha}$-Gal epitopes from the pericardial tissue on immunostaining. Conclusion: The ${\alpha}$-Gal epitopes of the pig's aortic valve and pericardial tissue were successfully stained with Griffonia Simplicifolia isolectin B4. We could remove nearly all the ${\alpha}$-Gal epitopes using green coffee bean ${\alpha}$-Galactosidase at the concentration of 1.0 unit/mL in the aortic valve. Of pig, and 2.0 unit/mL was need to nearly completely remove all the ${\alpha}$-Gal epitopes in the pericardial tissue of pig under the condition of pH 6.5, $4^{\circ}C$ and 24 hours of reaction time. In the near future, removal of ${\alpha}$-Gal epitapes in the pig's aortic valve and pericardial tissue will become a powerful tool for the improvement of the tissue valve durability. It needs to be determined if ${\alpha}$-galactosidase treated pig tissue is immune to human anti-Gal antibody or anit-Gal mooclonal antibodies.
Simila, Janika;Gernig, Anita;Murray, Patrick;Fernandes, Sara;Tuohy, Maria G.
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.12
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pp.1653-1663
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2010
The first gene (${\alpha}$-gal1) encoding an extracellular ${\alpha}$-Dgalactosidase from the thermophilic fungus Talaromyces emersonii was cloned and characterized. The ${\alpha}$-gal1 gene consisted of an open reading frame of 1,792 base pairs interrupted by six introns that encoded a mature protein of 452 amino acids, including a 24 amino acid secretory signal sequence. The translated protein had highest identity with other fungal ${\alpha}$-galactosidases belonging to glycosyl hydrolase family 27. The ${\alpha}$-gal1 gene was overexpressed as a secretory protein with an N-terminal histidine tag in the methylotrophic yeast Pichia pastoris. Recombinant ${\alpha}$-Gal1 was secreted into the culture medium as a monomeric glycoprotein with a maximal yield of 10.75 mg/l and purified to homogeneity using Hisbinding nickel-agarose affinity chromatography. The purified enzyme was maximally active at $70^{\circ}C$, pH 4.5, and lost no activity over 10 days at $50^{\circ}C$. ${\alpha}$-Gal1 followed Michaelis-Menten kinetics ($V_{max}\;of\;240.3{\mu}M/min/mg,\;K_m\;of\;0.294 mM$) and was inhibited competitively by galactose ($K_m{^{obs}}$ of 0.57 mM, $K_i$ of 2.77 mM). The recombinant T. emersonii ${\alpha}$-galactosidase displayed broad substrate preference, being active on both oligo- and polymeric substrates, yet had strict specificity for the ${\alpha}$-galactosidic linkage. Owing to its substrate preference and noteworthy stability, ${\alpha}$-Gal1 is of particular interest for possible biotechnological applications involving the processing of plant materials.
An Antarctic bacterial isolate displaying extracellular ${\alpha}$-galactosidic activity was named Paenibacillus sp. LX-20 based on 16S rRNA gene sequence analysis. Optimal activity for the LX-20 ${\alpha}$-galactosidase occurred at pH 6.0-6.5 and $45^{\circ}C$. The enzyme immobilized on the smart polymer Eudragit L-100 retained 70% of its original activity after incubation for 30 min at $50^{\circ}C$, while the free enzyme retained 58% of activity. The enzyme had relatively high specificity for ${\alpha}$-D-galactosides such as p-nitrophenyl-${\alpha}$-galactopyranoside, melibiose, raffinose and stachyose, and was resistant to some proteases such as trypsin, pancreatin and pronase. Enzyme activity was almost completely inhibited by $Ag^+$, $Hg^{2+}$, $Cu^{2+}$, and sodium dodecyl sulfate, but activity was not affected by ${\beta}$-mercaptoethanol or EDTA. LX-20 ${\alpha}$-galactosidase may be potentially useful as an additive for soybean processing in the feed industry.
The inhibitor had the inhibitory activities against hydrolysis of PNPG, sucrose and ONPG by $\alpha$-Dglucosidase, $\alpha$ - and $\beta$ -galactosidase, but it did not inhibit amylases and other carbohydrases. Kinetic studies exhibited that the inhibitory substance non-competitively inhibited the enzyme reaction with a Ki value of 118 $\mu$g/m$\ell$, and enzyme-inhibitor complex was formed slowly.
The ${\alpha}$-galactosidase-coding gene agaAJB13 was cloned from Sphingomonas sp. JB13 showing 16S rDNA (1,343 bp) identities of ${\leq}97.2%$ with other identified Sphingomonas strains. agaAJB13 (2,217 bp; 64.9% GC content) encodes a 738-residue polypeptide (AgaAJB13) with a calculated mass of 82.3 kDa. AgaAJB13 showed the highest identity of 61.4% with the putative glycosyl hydrolase family 36 ${\alpha}$-galactosidase from Granulicella mallensis MP5ACTX8 (EFI56085). AgaAJB13 also showed <37% identities with reported protease-resistant or Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidases. A sequence analysis revealed different catalytic motifs between reported Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidases (KXD and RXXXD) and AgaAJB13 (KWD and SDXXDXXXR). Recombinant AgaAJB13 (rAgaAJB13) was expressed in Escherichia coli BL21 (DE3). The purified rAgaAJB13 was characterized using p-nitrophenyl-${\alpha}$-D-galactopyranoside as the substrate and showed an apparent optimum at pH 5.0 and $60^{\circ}C$ and strong resistance to trypsin and proteinase K digestion. Compared with reported proteaseresistant ${\alpha}$-galactosidases showing thermolability at $50^{\circ}C$ or $60^{\circ}C$ and specific activities of <71 U/mg with or without protease treatments, rAgaAJB13 exhibited a better thermal stability (half-life of >60 min at $60^{\circ}C$) and higher specific activities (225.0-256.5 U/mg). These sequence and enzymatic properties suggest AgaAJB13 is the first identified and characterized Sphingomonas ${\alpha}$-galactosidase, and shows novel protease resistance with a potential value for basic research and industrial applications.
Park, Jae-Yong;Jeong, Seon-Ju;Lee, Ae-Ran;Park, Ji-Yeong;Jeong, Woo-Ju;Kim, Jeong-Hwan
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.17
no.12
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pp.2081-2084
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2007
A 2.5 kb aga gene encoding ${\alpha}$-galactosidase (${\alpha}$-Gal) from Leuconostoc mesenteroides SY1 was cloned into pSJE, an E. coli-Leuconostoc shuttle vector. The recombinant plasmid, pSJEaga, was introduced into Leuconostoc citreum KCTC3526 (ATCC49370) by electroporation. Transcription level of aga was the highest in cells grown on raffinose (1%, w/v) followed by cells grown on galactose, melibiose, fructose, glucose, and sucrose. Western blot using antibodies against ${\alpha}$-Gal showed similar results to slot-blot results and enzyme activity measurements. All the results indicated that the aga was successfully expressed in L. citreum and its transcription was under the carbon catabolite repression (CCR).
The intestinal microflora of humans is an extraordinarily complex mixture of microorganisms, the majority of which are anaerobic bacteria. Amongst them, most prevalent bacteria are Bacteroides, Eubacterium, Peptococcus, Bifidobacteria. We isolated a Bacteroides fragilis strain from a Korean adult and examined various glycosidase activities of this strain. The activities of $N-acetyl-{\beta}-glucosaminidase,\;{\alpha}-fucosidase$, ${\beta}-glucuronidase$, chitobiase and PNPCase were stronger in Bacteroides fragilis Roid 8 than in other intestinal anaerobic bacteria. $N-acetyl-{\beta}-glucosaminidase$ was strongest, followed by ${\alpha}-fucosidase$, ${\beta}-glucuronidase$ and PNPCase. The activities of ${\beta}-galactosidase$, ${\beta}-xylosidase,\;{\alpha}-arabinofuranosidase$ were not present or very low. The activities of ${\alpha}-glucosidase$, ${\beta}-glucosidase$ and ${\alpha}-galactosidase$ were present but at a lower level than in Bifidobacterium. The effect of the carbon sources on the production of $N-acetyl-{\beta}-glucosaminidase$, ${\alpha}-fucosidase$, ${\beta}-glucuronidase$ and PNPCase of Bacteroides fragilis Roid 8 was investigated. :.actose and glucose lowered the production of the varous glycosidase enzymes studied in this work. In addition, we investigated the optimum temperature and pH of each glycosidase from Bacteroides fragilis Roid-8 using crude enzyme preparations.
Journal of The Korean Society of Inherited Metabolic disease
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v.6
no.1
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pp.32-39
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2006
Galactosialidosis is a lysosomal storage disease associated with a combined deficiency of ${\beta}$-galactosidase and ${\alpha}$-neuraminidase, secondary to a defect of another lysosomal protective protein. It is a neurodegenerative disorder clinically characterized by psychomotor deterioration, cerebellar ataxia, coarse facies, generalized bony deformity and organomegaly. Three phenotypic subtype are recognized: early infantile, late infantile and juvenile/adult type. We report a 13 months old boy with a late infantile galactosialidosis. He was presented with progressive mental regression and motor disturbance and observed cherry red spot, hearing loss, moderate dysostosis multiplex and vacuolated lymphocytes in peripheral blood. He showed only ${\beta}$-galactosidase deficiency in the lymphocytes and was initially diagnosed as $GM_1$-gangliosidosis type 1. However, further studies revealed the possible defect of ${\alpha}$-neuraminidase suggesting that he was a case of galactosialidosis which was mimicking $GM_1$-gangliosidosis type 1.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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