Objective : Adipose tissue is derived from the embryonic mesoderm and contains a heterogenous stromal cell population. Authors have tried to verify the characteristics of stem cell of adipose derived stromal cells (ADSCs) and to investigate immunohistochemical findings after transplantation of ADSC into rat brain to evaluate survival, migration and differentiation of transplanted stromal cells. Methods : First ADSCs were isolated from human adipose tissue and induced adipose, osseous and neuronal differentiation under appropriate culture condition in vitro and examined phenotypes profile of human ADSCs in undifferentiated states using flow cytometry and immunohistochemical study. Human ADSCs were transplanted into the healthy rat brain to investigate survival, migration and differentiation after 4 weeks. Results : From human adipose tissue, adipose stem cells were harvested and subcultured for several times. The cultured ADSCs were differentiated into adipocytes, osteoctye and neuron-like cell under conditioned media. Flow cytometric analysis of undifferentiated ADSCs revealed that ADSCs were positive for CD29, CD44 and negative for CD34, CD45, CD117 and HLA-DR. Transplanted human ADSCs were found mainly in cortex adjacent to injection site and migrated from injection site at a distance of at least 1 mm along the cortex and corpus callosum. A few transplanted cells have differentiated into neuron and astrocyte. Conclusion : ADSCs were differentiated into multilineage cell lines through transdifferentiation. ADSCs were survived and migrated in xenograft without immunosuppression. Based on this data, ADSCs may be potential source of stem cells for many human disease including neurologic disorder.
Adipose tissue-derived chronic inflammation contributes to development of insulin resistance in obesity, leading to type 2 diabetes and cardiovascular disease. Baicalin, a flavonoid, has antioxidant, anti-inflammatory, antihyperglycemic, anti-adipogenic, and antiobesity effects. However, whether baicalin attenuates adipose tissue-derived development of insulin resistance remains still unclear. This study was to investigate effect of baicalin on the inflammatory changes involved in the development of insulin resistance in adipose tissue. RAW 264.7 cells and differentiated 3T3-L1 adipocytes were pretreated with various concentrations of baicalin in complete media for 1 h and then cultured in the presence or absence of LPS or TNF-${\alpha}$. Our results demonstrated that baicalin remarkably inhibited LPS-induced production of TNF-${\alpha}$, IL-6, and NO by RAW 264.7 cells in a dose-dependent manner. Baicalin also inhibited TNF-${\alpha}$-induced production of IL-6 and $PGE_2$ in differentiated 3T3-L1 cells in a dose-dependent manner, while upregulated TNF-${\alpha}$-suppressed expression of adiponectin and PPAR-${\gamma}$ mRNA and IRS-1 protein. These findings suggest that baicalin may prevent the adipose tissue-derived development of insulin resistance in obesity.
Autologous fat grafts are widely used in soft-tissue augmentation and reconstruction. To reduce the unpredictability of fat grafts and to improve their long-term survival, cell-assisted lipotransfer (CAL) was introduced. In this alternative method, autologous fat is mixed and grafted with stromal vascular fraction cells or adipose-derived stem/stromal cells (ASCs). In regenerative medicine, ASCs exhibit excellent therapeutic potential and are also simple to harvest. Although the efficacy of CAL has been demonstrated in experimental and clinical research, studies on its safety in terms of oncologic risk have reported inconclusive results. In order to establish CAL as a viable stem cell therapeutic approach, it will be necessary to demonstrate its oncologic safety in basic and clinical studies. Doing so could transform the paradigm of clinical strategy and practice for the treatment of a wide variety of diseases.
Background: Adipose tissues were initially introduced as energy storages, but recently they have become famous as an endocrine organ which produces and secretes various kinds of molecules to make physiologic and metabolic changes in human body. It has been studied that these molecules are secreted in abundance as the adipose tissue becomes bigger along with obesity. Furthermore, it has been found that they are mediating systemic inflammation and generation of metabolic diseases such as type 2 diabetes and atherosclerosis. On the basis of these, we studied previous papers which have been researched about the interaction between preadipocytes and macrophages, adipose tissues and lymph nodes, and adipose tissue secreting molecules. Results: Firstly, preadipocytes and macrophages are expressing similar transcriptomes and proteins, and preadipocytes can be converted to mature macrophages which have phagocytic activity. Moreover, the monocytes, which initially located in the bone marrow, are filtrated to the adipose tissue by monocyte chemotatic protein-1 and are matured to macrophages by colony stimulating factor-1. Secondly, adipose tissues and their associated lymph nodes are interacting each other in terms of energy efficiency. Lymph nodes promote lipolysis in adipose tissues, and polyunsaturated fatty acids in adipocytes become energy sources for dendritic cells. Lastly, adipose tissues produce and secrete proinflammatory molecules such as leptin, adiponectin, TNF-${\alpha}$, IL-6, and acute phase proteins, which induce the inflammation and potentially generate metabolic diseases. Conclusion: According to these, we can link adipose tissues to inflammation, but we need to affirm the actual levels and roles of adipose tissue-derived proinflammatory molecules in human body.
Forte, Antonio Jorge;Boczar, Daniel;Sarabia-Estrada, Rachel;Huayllani, Maria T.;Avila, Francisco R.;Torres, Ricardo A.;Guliyeva, Gunel;Aung, Thiha;Quinones-Hinojosa, Alfredo
Archives of Plastic Surgery
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제48권5호
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pp.559-567
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2021
The potential to differentiate into different cell lines, added to the easy and cost-effective method of extraction, makes adipose-derived stem cells (ADSCs) an object of interest in lymphedema treatment. Our study's goal was to conduct a comprehensive systematic review of the use of ADSCs in lymphatic tissue engineering and regeneration. On July 23, 2019, using PubMed/MEDLINE, Cochrane Clinical Answers, Cochrane Central Register of Controlled Trials, and Embase databases, we conducted a systematic review of published literature on the use of ADSCs in lymphatic tissue engineering and regeneration. There were no language or time frame limitations, and the following search strategy was applied: ((Adipose stem cell) OR Adipose-derived stem cell)) AND ((Lymphedema) OR Breast Cancer Lymphedema). Only original research manuscripts were included. Fourteen studies fulfilled the inclusion criteria. Eleven studies were experimental (in vitro or in vivo in animals), and only three were clinical. Publications on the topic demonstrated that ADSCs promote lymphangiogenesis, and its effect could be enhanced by modulation of vascular endothelial growth factor-C, interleukin-7, prospero homeobox protein 1, and transforming growth factor-β1. Pilot clinical studies included 11 patients with breast cancer-related lymphedema, and no significant side effects were present at 12-month follow-up. Literature on the use of ADSCs in lymphatic tissue engineering and regeneration demonstrated promising data. Clinical evidence is still in its infancy, but the scientific community agrees that ADSCs can be useful in regenerative lymphangiogenesis. Data collected in this review indicate that unprecedented advances in lymphedema treatment can be anticipated in the upcoming years.
Lee, Jong Hoon;Lee, Kuk Han;Kim, Min Ho;Kim, Jun Pyo;Lee, Seung Jae;Yoon, Jinah
Archives of Plastic Surgery
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제39권6호
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pp.593-599
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2012
Background This study aimed to investigate the possibility of isolating mesenchymal stem cells (MSCs) from human thigh adipose tissue and the ability of human thigh adipose stem cells (HTASCs) to differentiate into hepatocytes. Methods The adipose-derived stem cells (ADSCs) were isolated from thigh adipose tissue. Growth factors, cytokines, and hormones were added to the collagen coated dishes to induce the undifferentiated HTASCs to differentiate into hepatocyte-like cells. To confirm the experimental results, the expression of hepatocyte-specific markers on undifferentiated and differentiated HTASCs was analyzed using reverse transcription polymerase chain reaction and immunocytochemical staining. Differentiation efficiency was evaluated using functional tests such as periodic acid schiff (PAS) staining and detection of the albumin secretion level using enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). Results The majority of the undifferentiated HTASCs were changed into a more polygonal shape showing tight interactions between the cells. The differentiated HTASCs up-regulated mRNA of hepatocyte markers. Immunocytochemical analysis showed that they were intensely stained with anti-albumin antibody compared with undifferentiated HTASCs. PAS staining showed that HTASCs submitted to the hepatocyte differentiation protocol were able to more specifically store glycogen than undifferentiated HTASCs, displaying a purple color in the cytoplasm of the differentiated HTASCs. ELISA analyses showed that differentiated HTASCs could secrete albumin, which is one of the hepatocyte markers. Conclusions MSCs were islolated from human thigh adipose tissue differentiate to heapatocytes. The source of ADSCs is not only abundant abdominal adipose tissue, but also thigh adipose tissue for cell therapy in liver regeneration and tissue regeneration.
Gomathysankar, Sankaralakshmi;Halim, Ahmad Sukari;Yaacob, Nik Soriani
Archives of Plastic Surgery
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제41권5호
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pp.452-457
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2014
In the field of tissue engineering and reconstruction, the development of efficient biomaterial is in high demand to achieve uncomplicated wound healing. Chronic wounds and excessive scarring are the major complications of tissue repair and, as this inadequate healing continues to increase, novel therapies and treatments for dysfunctional skin repair and reconstruction are important. This paper reviews the various aspects of the complications related to wound healing and focuses on chitosan because of its unique function in accelerating wound healing. The proliferation of keratinocytes is essential for wound closure, and adipose-derived stem cells play a significant role in wound healing. Thus, chitosan in combination with keratinocytes and adipose-derived stem cells may act as a vehicle for delivering cells, which would increase the proliferation of keratinocytes and help complete recovery from injuries.
Ha, Ki-Young;Park, Hojin;Park, Seung-Ha;Lee, Byung-Il;Ji, Yi-Hwa;Kim, Tae-Yeon;Yoon, Eul-Sik
Archives of Plastic Surgery
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제42권6호
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pp.677-685
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2015
Background The survival rate of grafted fat is difficult to predict, and repeated procedures are frequently required. In this study, the effects of the freezing period of harvested adipose tissue and the addition of human adipose tissue-derived stem cells (ASCs) on the process of fat absorption were studied. Methods Adipose tissue was obtained from patients who underwent a lipoaspirated fat graft. The fat tissue was cryopreserved at $-20^{\circ}C$ in a domestic refrigerator. A total of 40 nude mice were used. The mice in the experimental group received three different subcutaneous injections in the back: an injection of fresh fat and ASCs, an injection of fat that had been frozen for one month and ASCs, and an injection of fat that had been frozen for two months and ASCs. The control mice received fat grafts without ASCs. The mice were sacrificed at four or eight weeks after the procedure, and the grafted fat tissues were harvested. The extracted fat was evaluated using photographic analysis, volume measurements, and histological examination. Results In the control group, the fat resorption rates four weeks after transplantation in the grafts of fresh fat, fat that had been frozen for one month, and fat that had been frozen for two months were 21.14%, 22.46%, and 42.56%, respectively. In the experimental group, the corresponding resorption rates were 6.68%, 13.0%, and 33.9%, respectively. Conclusions ASCs can increase the fat graft survival rate. The use of ASCs in fat grafting can reduce the need for repeated fat grafts and provide good long term results.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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