Jang, Ji-Hyun;Lee, Hyeon-Woo;Cho, Kyu Min;Shin, Hee-Woong;Kang, Mo Kwan;Park, Sang Hyuk;Kim, Euiseong
Restorative Dentistry and Endodontics
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제41권4호
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pp.283-295
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2016
Objectives: In this study, we characterized human dental pulp cells (HDPCs) obtained by different culture methods to establish the most suitable methodology for dental tissue engineering and regenerative endodontic applications. Materials and Methods: HDPCs were isolated by the outgrowth method (HDPCs-OG), the enzymatic digestion method (collagenase/dispase/trypsin, HDPCs-ED), or the combination of both methods (HDPCs-Combined). The expression of mesenchymal stem cell markers (CD105, CD90, and CD73) was investigated. In vitro differentiation capacities of HDPCs into adipogenic, osteogenic, and chondrogenic lineages were compared. Differentiation markers were analyzed by quantitative reverse-transcription polymerase chain reaction (RT-PCR) and western blotting. Results: Our data indicated that whole HDPCs-ED, HPDCs-OG, and HDPCs-Combined could be differentiated into adipogenic, chrondrogenic, and osteogenic cell types. However, we found that the methods for isolating and culturing HDPCs influence the differentiation capacities of cells. HDPCs-OG and HDPCs-ED were preferably differentiated into adipogenic and osteogenic cells, respectively. Differentiation markers shown by RT-PCR and western blotting analysis were mostly upregulated in the treated groups compared with the control groups. Conclusions: Our findings confirmed that cell populations formed by two different culture methods and the combined culture method exhibited different properties. The results of this study could provide an insight into regenerative endodontic treatment using HDPCs.
The present study was designed to determine the influence of all-trans retinoic acid (ATRA) on adipogenesis-related gene regulation in bovine intramuscular (IM) and subcutaneous (SC) adipose cells during differentiation. Bovine IM and SC adipocytes were isolated from three 19-mo-old, crossbred steers. Adipogenic differentiation was induced upon cultured IM and SC preadipocytes with various doses (0, 0.001, 0.01, 0.1, 1 µM) of ATRA. After 96 h of incubation, cells were harvested and used to measure the gene expression of CCAAT/Enhancer binding protein β (C/EBPβ), peroxisome proliferator-activated receptor (PPAR) γ, glucose transporter 4 (GLUT4), stearoyl CoA desaturase (SCD), and Smad transcription factor 3 (Smad3) relative to the quantity of ribosomal protein subunit 9 (RPS 9). Retinoic acid receptor (RAR) antagonist also tested to identify the effect of ATRA on PPARγ -RAR related gene expression in IM cells. The addition of ATRA to bovine IM decreased (p < 0.05) expression of PPARγ. The expression of PPARγ was also tended to be downregulated (p < 0.1) in high levels (10 µM) of ATRA treatment in SC cells. The treatment of RAR antagonist increased the expression of PPARγ in IM cells. Expression of C/EBPβ decreased (p < 0.05) in SC, but no change was observed in IM (p > 0.05). Increasing levels of ATRA may block adipogenic differentiation via transcriptional regulation of PPARγ. The efficacy of ATRA treatment in adipose cells may vary depending on the location.
Adipose tissue is an important endocrine organ involved in the control of whole body energy homeostasis and insulin sensitivity. Considering the increased incidence of obesity and obesity-related disorders, including diabetes, it is important to understand thoroughly the process of adipocyte differentiation and its control. Therefore, we performed a differential proteome mapping strategy using two-dimensional gel electrophoresis combined with peptide mass fingerprinting to identify intracellular proteins that are differentially expressed during adipose conversion of 3T3-L1 pre-adipocytes in response to an adipogenic cocktail. In the current study, we identified 46 differentially expressed proteins, 6 of which have not been addressed previously in 3T3-L1 cell differentiation. Notably, we found that phosphoribosyl pyrophosphate synthetase (PRPS), a regulator of cell proliferation, was preferentially expressed in pre-adipocytes than in fully differentiated adipocytes. In conclusion, our results provide valuable information for further understanding of the adipogenic process.
본 연구는 한우유래 myoblast에서 지방세포분화 유도 전사인자들을 과발현시켜 지방세포로의 교차분화를 유도하기 위하여 실시하였다. 한우 유래 satellite cell을 배양한 후 adipogenic transcription factor인 $PPAR{\gamma}$, C/$EBP{\alpha}$, SREBP1c, KLF5등을 단독 또는 co-transfection을 실시하여 세포에 과발현을 유도하였다. 이들 세포들은 adipogenic differentiation medium에서 2일간 배양한 후growth medium에서 8일간 추가로 배양하였다. 지방세포로의 교차분화 유무는 Oil-red O염색과 지방세포 마커 유전자들의 발현으로 확인하였다. $PPAR{\gamma}$과 C/$EBP{\alpha}$를 각각 단독으로 과발현을 유도한 경우myoblast에서 지방세포로의 교차분화를 유도하기에는 충분하지 못하였다. 그러나 $PPAR{\gamma}$와 C/$EBP{\alpha}$을 co-transfection을 실시한 경우 지방세포로의 교차분화가 유도되었고, 세포내지방구형성, 지방세포 마커유전자의 발현, 근세포 마커유전자의 발현 감소 등이 확인되었다. KLF5 와 $PPAR{\gamma}$를 동시에 과발현할 경우 지방세포로의 교차분화를 볼 수 있었지만 KLF단독의 경우는 교차분화를 유도하지 못하였다. 할성형SREBP1c (tSREBP1c)의 경우, 단독으로 myoblast에 과발현을 처리한 경우만으로 지방세포로의 교차분화를 유도할 수 있었다. 이들 결과는 한우유래 satellite cell을 이용하여 지방세포분화 전사인자를 단독 혹은 조합하여 이들 세포에 과발현 시킬 경우 지방세포로의 교차분화를 유도할 수 있음을 보여 주었다.
Mesenchymal stem cells (MSCs) are multipotent stem cells capable of differentiating into adipocytes, osteoblasts, or chondrocytes. A mutually inhibitory relationship exists between osteogenic and adipogenic lineage commitment and differentiation. Such cell fate decision is regulated by several signaling pathways, including Wnt and bone morphogenetic protein (BMP). Accumulating evidence indicates that microRNAs (miRNAs) act as switches for MSCs to differentiate into either osteogenic or adipogenic lineage. Different miRNAs have been reported to regulate a master transcription factor for osteogenesis, such as Runx2, as well as molecules in the Wnt or BMP signaling pathway, and control the balance between osteoblast and adipocyte differentiation. Here, we discuss recent advancement of the cell fate decision of MSCs by miRNAs and their targets. [BMB Reports 2015; 48(6): 319-323]
Objectives : Mahuang-Chuanwu(Mahwang-Cheonoh) Pharmacopuncture(MCP) has been used to treat obesity in Clinical Korean Medicine. MCP solution(MCPS) is also expected to have strong anti-obesity activities. However, little is known about the mechanisms of its inhibitory effects on adipocyte differentiation and lipogenesis. Methods : In the present study, we examined the effects of MCPS on differentiation and lipogenesis of 3T3-L1 adipocytes. To elucidate the mechanism of the effects of MCPS on lowering lipid content in 3T3-L1 adipocytes, we examined whether MCPS modulates the expressions of transcription factors to induce lipogenesis and adipogenic genes related to regulate the accumulation of lipids. Results : Our results showed that MCPS significantly inhibited differentiation and lipogenesis of 3T3-L1 adipocytes in a dose-dependent manner. MCPS suppressed the mRNA expressions of cytidine-cytidine-adenosine-adenosine-thymidine(CCAAT)/enhancer binding proteins ${\alpha}$($C/EBP{\alpha}$), C/EBP ${\beta}$, $C/EBP{\delta}$, and peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$($PPAR{\gamma}$) genes related to the induction of adipose differentiation. MCPS inhibited the mRNA expressions of adipose-specific aP2, adipsin, lipoprotein lipase(LPL), CD36, TGF-${\beta}$, and leptin genes related to the fat formation. MCPS downregulated the mRNA expressions of liver X receptor(LXR) ${\alpha}$ and fatty acid synthase(FAS) genes related to the induction of lipogenesis. In addition, MCPS reduced the production of adipocyte-induced pro-inflammatory cytokines. Conclusions : MCPS could regulate the accumulation of lipids and expression of adipogenic genes via inhibition of transcript factors related to induction of adipose differentiation.
Yonekur, Shinichi;Hirota, Shohei;Tokutake, Yukako;Rose, Michael T.;Katoh, Kazuo;Aso, Hisashi
Asian-Australasian Journal of Animal Sciences
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제27권4호
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pp.567-573
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2014
Hormonal and nutrient signals regulate leptin synthesis and secretion. In rodents, leptin is stored in cytosolic pools of adipocytes. However, not much information is available regarding the regulation of intracellular leptin in ruminants. Recently, we demonstrated that leptin mRNA was expressed in bovine intramuscular preadipocyte cells (BIP cells) and that a cytoplasmic leptin pool may be present in preadipocytes. In the present study, we investigated the expression of cytoplasmic leptin protein in BIP cells during differentiation as well as the effects of various factors added to the differentiation medium on its expression in BIP cells. Leptin mRNA expression was observed only at 6 and 8 days after adipogenic induction, whereas the cytoplasmic leptin concentration was the highest on day 0 and decreased gradually thereafter. Cytoplasmic leptin was detected at 6 and 8 days after adipogenic induction, but not at 4 days after adipogenic induction. The cytoplasmic leptin concentration was reduced in BIP cells at 4 days after treatment with dexamethasone, whereas cytoplasmic leptin was not observed at 8 days after treatment. In contrast, acetate significantly enhanced the cytoplasmic leptin concentration in BIP cells at 8 days after treatment, although acetate alone did not induce adipocyte differentiation in BIP cells. These results suggest that dexamethasone and acetate modulate the cytoplasmic leptin concentration in bovine preadipocytes.
후박추출물은 중국 원산인 당후박에서 제조되며, 항산화 및 항염증 효과로 알려져 있다. 후박의 성분으로는 폴레페놀인 honokiol 및 magnolol 등이 알려져 있다. 이 연구에서, 우리는 후박추출물이 triglyceride (TG)의 축척을 감소시킴으로써 지방세포 분화를 억제한다는 표면적인 결과를 얻었다. 또한, 후박 추출물이 hormone sensitive lipase (HSL) 단백질 수준을 증가시키고 adipocyte에 specific한 transcription factors로 peroxisome proliferator activated receptor (PPAR)-${\gamma}$의 단백질과 mRNA 수준을 억제하였다. 결과적으로, 후박추출물이 항비만제로서 adipogenic transcription factor와 그들의 특이적인 유전자의 발현을 억제함으로써 지방세포 분화를 억제한다고 사료된다.
BACKGROUND/OBJECTIVES: Abeliophyllum distichum is a plant endemic to Korea, containing several beneficial natural compounds. This study investigated the effect of A. distichum leaf extract (ALE) on adipocyte differentiation. MATERIALS/METHODS: The cytotoxic effect of ALE was analyzed using cell viability assay. 3T3-L1 preadipocytes were differentiated using induction media in the presence or absence of ALE. Lipid accumulation was confirmed using Oil Red O staining. The mRNA expression of adipogenic markers was measured using RT-PCR, and the protein expressions of mitogen-activated protein kinase (MAPK) and peroxisome proliferator-activated receptor gamma (PPAR𝛾) were measured using western blot. Cell proliferation was measured by calculating the incorporation of Bromodeoxyuridine (BrdU) into DNA. RESULTS: ALE reduced lipid accumulation in differentiated adipocytes, as indicated by Oil Red O staining and triglyceride assays. Treatment with ALE decreased the gene expression of adipogenic markers such as Ppar𝛾, CCAAT/enhancer binding protein alpha (C/ebp𝛼), lipoprotein lipase, adipocyte protein-2, acetyl-CoA carboxylase, and fatty acid synthase. Also, the protein expression of PPAR𝛄 was reduced by ALE. Treating the cells with ALE at different time points revealed that the inhibitory effect of ALE on adipogenesis is higher in the early period treatment than in the terminal period. Furthermore, ALE inhibited adipocyte differentiation by reducing the early phase of adipogenesis and mitotic clonal expansion. This was indicated by the lower number of cells in the Synthesis phase of the cell cycle (labeled using BrdU assay) and a decrease in the expression of early adipogenic transcription factors such as C/ebp𝛽 and C/ebp𝛿. ALE suppressed the phosphorylation of MAPK, confirming that the effect of ALE was through the suppression of early phase of adipogenesis. CONCLUSIONS: Altogether, the results of the present study revealed that ALE inhibits lipid accumulation and may be a potential agent for managing obesity.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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