Sestrin 2 (SESN2) is a member of the sestrin family of stress-induced proteins that negatively regulate aging-associated biological processes. This study aims to investigate the role of SESN2 in regulating the differentiation potential and senescence of mesenchymal stem cells (MSCs) derived from young and elderly donors. Bulk RNA sequencing revealed a common decline in the SESN2 mRNA levels in MSCs from elderly individuals, which was confirmed via reverse transcription-polymerase chain reaction and western blot analyses. SESN2 knockdown in MSCs from young donors resulted in phenotypic changes similar to those in MSCs from elderly donors, including an enhanced expression of senescence and adipogenic markers and diminished expression of osteogenic markers. To confirm the effect of decreased SESN2 expression on osteogenic and adipogenic differentiation, we induced Sesn2 knockdown in mouse bone marrow-derived MSCs. Sesn2 knockdown suppressed the mRNA expression of osteogenic marker genes, alkaline phosphatase activity, and matrix mineralization. Furthermore, Sesn2 knockdown enhanced mRNA expression of the adipogenic marker genes and intracellular lipid accumulation. These results suggest that a decline in SESN2 expression during aging contributes to the shift of MSC differentiation from osteogenic to adipogenic lineage.
Satellite cells are skeletal muscle progenitor/stem cells that reside between the basal lamina and plasma membranes of skeletal fibers in vivo. These cells can give rise to both myogenic and adipogenic cells. Given the possible role for differentiation of satellite cells into adipocytes in marbling and in some pathological disorders like sarcopenia, knowledge of the proteins involved in such process remains obscure. Using two-dimensional polyacrylamide gel electrophoresis coupled with mass spectrometry, we investigated the proteins that are differentially expressed during adipogenic differentiation of satellite cells from bovine longissimus muscle. Our proteome mapping strategy to identify the differentially expressed intracellular proteins during adipogenic differentiation revealed a total of 25 different proteins. The proteins up-regulated during adipogenic differentiation of satellite cells like Cathepsin H precursor, Retinal dehydrogenase 1, Enoyl-CoA hydratase, Ubiquinol-cytochrome-c reductase, T-complex protein 1 subunit beta and ATP synthase D chain were found to be associated with lipid metabolism. The down-regulated proteins like LIM protein, annexin proteins, cofilin-1, Rho GDP-dissociation inhibitor 1 and septin-2, identified in the present study were found to be associated with myogenesis. These results clearly demonstrate that the adipogenic conversion of muscle satellite cells is associated with the up-regulated and down-regulated proteins involved in adipogenesis and myogenesis respectively.
Objective: This study investigated the effect of purified medical herb extracts such as Alisma canaliculatum and Polyporus umbellatuson adipogenic differentiation of human bone marrow derived mesenchymal stromal stem cells (hBMSCs). Methods: Two different medical herb were extracted using hot distilled water. The optimal concentration of extracts were fixed at 100 ng/ml by means of cell viability and cytotoxic assay. To test the adipogenic differentiation ability of extracts, we induced the adipogenesis of hBMSCs for 21 days. At day 5, the cell was harvested to check mRNA and protein expression level of adipogenic related factors. The efficacy of lipid droplet formation was evaluated using the oil-red O staining method at days 21. Results: Two different medical herb extracts have no toxicity on hBMSCs. And two different medical herb extracts significantly decreased formation of lipid droplet compared with control groups in hBMSCs. The A. canaliculatum extract group showed the lowest mRNA and protein expression level of adipossgenic related transcription factors. This data suggests that extract of A. canaliculatum and P. umbellata decrease the adipogenic differentiation of hBMSCs. Conclusions: Our findings indicate that water-extract of A. canaliculatum and P. umbellata will be useful therapeutic reagents for prevention of obesity related disease such as diabetes, hyperlipidemia, coronary artery disease, and osteoporosis.
Kim, Daehwan;Jo, Hwansung;Lee, Jingu;Kim, Keesung;Roh, Sangho
International Journal of Oral Biology
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v.38
no.4
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pp.161-167
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2013
Human dental pulp stem cells (DPSCs) are multi-potent mesenchymal stem cells that have several differentiation potentials. An understanding of thetissues that differentiate from these cells can provide insights for future regenerative therapeutics and tissue engineering strategies. The mesiodens is the most frequent form of supernumerary tooth from which DPSCs can differentiate into several lineages similar to cells from normal deciduous teeth. Recently, it has been shown that nanoscale structures can affect stem cell differentiation. In our presentstudy, we investigated the effects of a 250-nm nanoscale ridge/groove pattern array on the osteogenic and adipogenic differentiation of dental pulp cells from mesiodenscontaining human DPSCs. To this end, the expression of lineage specific markers after differentiation induction was analyzed by lineage specific staining and RT-PCR. The nanoscale pattern arrayed surface showed apositive effect on the adipogenic differentiation of DPSCs. There was no difference between nanoscale pattern arrayed surface and conventional surface groups onosteogenic differentiation. In conclusion, the nanoscale ridge/groove pattern arrayed surface can be used to enhance the adipogenic differentiation of DPSCs derived from mesiodens. This finding provides an improved understanding of the effects of topography on cell differentiation as well as the potential use of supernumerary tooth in regenerative dental medicine.
In the course of screening anti-adipogenic activity of natural products employing the preadipocyte cell line, 3T3-L1 as an in vitro assay system, the EtOAc fraction of the stem barks of Acer tegmentosum Maxim (Aceraceae) showed significant inhibitory activity on adipocyte differentiation as assessed by measuring fat accumulation using Oil Red O staining. Activity-guided fractionation led to the isolation of active constituent, (+)-catechin. (+)-Catechin showed inhibitory activity on adipocyte differentiation in dose-dependent manner. Further studies with interval treatment demonstrated that (+)-catechin exerted inhibitory activity on adipocyte differentiation via acting on early stage of adipogenesis. Our present study also showed that (+)-catechin significantly inhibited the preadipocyte proliferation. Taken together, these results suggest that (+)-catechin, a constituent of A. tegmentosum might contribute the anti-adipogenic activity of A. tegmentosum.
Adipocyte differentiation in human bone marrow mesenchymal stem cells (hBM-MSCs) is not as efficient as that in murine pre-adipocytes when induced by adipogenic agents including insulin, dexamethasone, and 3-isobutyl-1-methylxanthine (IDX condition). Therefore, the promotion of adipocyte differentiation in hBM-MSCs has been used as a cell culture model to evaluate insulin sensitivity for anti-diabetic drugs. In hBM-MSCs, $PPAR{\gamma}$ agonists or sulfonylurea anti-diabetic drugs have been added to IDX conditions to promote adipocyte differentiation. Here we show that troglitazone, a peroxisome proliferator-activated receptor-gamma ($PPAR{\gamma}$) agonist, significantly reduced the levels of anti-adipogenic $PGE_2$ in IDX-conditioned hBM-MSC culture supernatants when compared to $PGE_2$ levels in the absence of $PPAR{\gamma}$ agonist. However, there was no difference in the mRNA levels of cyclooxygenases (COXs) and the activities of COXs and prostaglandin synthases during adipocyte differentiation in hBM-MSCs with or without troglitazone. In hBM-MSCs, troglitazone significantly increased the mRNA level of 15-hydroxyprostaglandin dehydrogenase (HPGD) which can act to decrease $PGE_2$ levels in culture. These results suggest that the role of $PPAR{\gamma}$ activation in promoting adipocyte differentiation in hBM-MSCs is to reduce anti-adipogenic $PGE_2$ levels through the up-regulation of HPGD expression.
Deumaya Shrestha;Eunbin Kim;Krishna K. Shrestha;Sung-Suk Suh;Sung-Hak Kim;Jong Bae Seo
Journal of Animal Science and Technology
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v.66
no.1
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pp.204-218
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2024
Elsholtzia fruticosa (EF) is present in tropical regions throughout South Asian countries as well as the Himalayas. Although it has been used as a traditional medicine to treat digestive, respiratory, and inflammatory issues, its effect on preadipocyte differentiation is unknown. In this study, we examined the effects of a methanol extract prepared from EF on the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes. Cell differentiation was assessed by microscopic observation and oil-red O staining. The expression of adipogenic and lipogenic genes, including PPARγ and C/EBPα, was measured by western blot analysis and quantitative real-time polymerase chain reaction (qRT-PCR), to provide insight into adipogenesis and lipogenesis mechanisms. The results indicated that EF promotes the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes, with elevated lipid accumulation occurring in a concentration-dependent manner without apparent cytotoxicity. EF enhances the expression of adipogenic and lipogenic genes, including PPARγ, FABP4, adiponectin, and FAS, at the mRNA and protein levels. The effect of EF was more pronounced during the early and middle stages of 3T3-L1 cell differentiation. Treatment with EF decreased C/EBP homologous protein (CHOP) mRNA and protein levels, while increasing C/EBPα and PPARγ expression. Treatment with EF resulted in the upregulation of cyclin E and CDK2 gene expression within 24 h, followed by a decrease at 48 h, demonstrating the early-stage impact of EF. A concomitant increase in cyclin-D1 levels was observed compared with untreated cells, indicating that EF modulates lipogenic and adipogenic genes through intricate mechanisms involving CHOP and cell cycle pathways. In summary, EF induces the differentiation of 3T3-L1 preadipocytes by increasing the expression of adipogenic and lipogenic genes, possibly through CHOP and cell cycle-dependent mechanisms.
Journal of Physiology & Pathology in Korean Medicine
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v.28
no.3
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pp.288-295
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2014
Bojungchiseub-tang (BJCST) has been used in symptoms and signs of edema, dampness-phlegm, kidney failure, and so on. BJCST is also expected to have strong anti-obesity activities. However, little is known about the mechanisms of its inhibitory effects on adipocyte differentiation and adipogenesis. In the present study, we examined the effects and mechanism of BJCST on transcription factors and adipogenic genes of 3T3-L1 preadipocytes to understand its inhibitory effects on adipocyte differentiation and adipogenesis. Our results showed that BJCST significantly inhibited differentiation and adipogenesis of 3T3-L1 preadipocytes in a dose-dependent manner. To elucidate the mechanism of the effects of BJCST on lowering lipid content in 3T3-L1 adipocytes, we examined whether BJCST modulate the expressions of transcription factors to induce adipogenesis and adipogenic genes related to regulate accumulation of lipids. As a result, the expression of steroid regulatory element-binding protein (SREBP)1, cytidine-cytidine-adenosine-adenosine-thymidine (CCAAT)/enhancer binding proteins ${\alpha}$ ($C/EBP{\alpha}$), $C/EBP{\beta}$, $C/EBP{\delta}$, and peroxisome proliferator-activated receptor ${\gamma}$ ($PPAR{\gamma}$) genes, which induce the adipose differentiation, liver X receptor $(LXR){\alpha}$ and fatty acid synthase (FAS) genes, which induce lipogenesis and adipose-specific aP2, Adipsin, lipoprotein lipase (LPL), CD36, TGF-${\beta}$, leptin and adiponectin genes, which compose fat formation were decreased. BJCST also reduced the expression of acyl CoA oxidase (ACO) and uncoupling protein (UCP) genes related to lipid oxidation. In conclusion, BJCST could regulate transcript factor related to induction of adipose differentiation and inhibited the accumulation of lipids and expression of adipogenic genes.
The present study examined the rate of cell growth and differentiation potential into adipocytes in A549 lung adenocarcinoma cells exposed to each adipogenic medium containing glucose metabolism hormones, such as thyroxine (T4) thyroid hormone and glucocorticoid (GC) adrenal steroid hormone, as well as pioglitazone (PGZ), a PPARγ agonist. Following each adipogenic treatment for 2 weeks, the rate of cell growth was significantly (p<0.05) inhibited, and the level of telomerase activity was significantly (p<0.05) decreased in the PGZ-based adipogenic medium containing both T4 and GC hormone compared with those containing each T4 or GC hormone. Moreover, the adiposome-like vesicles were highly reacted with Oil-Red O staining solution, and the levels of transcripts expressed in the differentiating adipocytes for adipogenesis, including adinopectin, leptin, and resistin, were significantly (p<0.05) increased in the PGZ-based adipogenic medium containing both T4 and GC hormone compared with those of the adipogenic medium containing each T4 or GC hormone, implying that adipocytic differentiation has fully occurred in the A549 cancer cells. Based on present observations, the PGZ-based adipogenic medium containing both T4 and GC efficiently induces inhibition of cell growth and cellular differentiation into adipocytes in A549 cancer cells rather than in the adipogenic medium containing only T4 or GC hormone. Adipogenic treatment could provide potential probability in cancer chemotherapy.
Lee, Jun Hee;Lee, Sang Hun;Lee, Hyang Seon;Ji, Seung Taek;Jung, Seok Yun;Kim, Jae Ho;Bae, Sun Sik;Kwon, Sang-Mo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.20
no.5
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pp.459-466
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2016
Adipogenic differentiation of mesenchymal stem cells (MSCs) is critical for metabolic homeostasis and nutrient signaling during development. However, limited information is available on the pivotal modulators of adipogenic differentiation of MSCs. Adaptor protein Lnk (Src homology 2B3 [SH2B3]), which belongs to a family of SH2-containing proteins, modulates the bioactivities of different stem cells, including hematopoietic stem cells and endothelial progenitor cells. In this study, we investigated whether an interaction between insulin-like growth factor-1 receptor (IGF-1R) and Lnk regulated IGF-1-induced adipogenic differentiation of MSCs. We found that wild-type MSCs showed greater adipogenic differentiation potential than $Lnk^{-/-}$ MSCs. An ex vivo adipogenic differentiation assay showed that $Lnk^{-/-}$ MSCs had decreased adipogenic differentiation potential compared with wild-type MSCs. Interestingly, we found that Lnk formed a complex with IGF-1R and that IGF-1 induced the dissociation of this complex. In addition, we observed that IGF-1-induced increase in the phosphorylation of Akt and mammalian target of rapamycin was triggered by the dissociation of the IGF-1R-Lnk complex. Expression levels of a pivotal transcription factor peroxisome proliferator-activated receptor gamma ($PPAR-{\gamma}$) and its adipogenic target genes (LPL and FABP4) significantly decreased in $Lnk^{-/-}$ MSCs. These results suggested that Lnk adaptor protein regulated the adipogenesis of MSCs through the $IGF-1/Akt/PPAR-{\gamma}$ pathway.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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