The cytoskeleton has been shown to form a network, connecting the extracelluar matrix via integrin with the nucleus and the cytoplasmic constituents of the cell. It is therefore assumed that the cytoskeleton may mediate signals generated by perturbations originating in the matrix. The purpose of this study is to examine the effect of cytoskeletal change on osteoblastic cell activities. The author cultured osteoblastic cells obtained from neonatal mouse calvaria. The cells were teated with cytochalasin B(CB) or colchicine (COL) at four concentrations for 3 hours and after another 24 hours the conditioned media was collected and assayed for prostaglandin $E_2\;(PGE_2)$, interleukin-6(IL-6), tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$) and matrix metalloproteinase-1(MMP-1). In addition, the cytoskeletal protein actin were observed by immuno-fluorescence. The results were as follows: 1. The production of $PGE_2$ showed the tendency to be increased in CB-treated group. $PGE_2$ was increased in COL-treated group dose-dependantly, 2. IL-6 production, in CB-treated group, was increased, except at 1.0 ${\mu}g/ml$. IL-6 was induced in COL-treated group. 3. TNF-$\alpha$ production was increased in CB-treated group, except at 1.0 ${\mu}g/ml$, and in COL-treated group, that was increased. 4. The MMP-1 production was decreased in CB-treated soup and was not changed in COL-treated group, which could be selectively visualized by immunoblotting with monospecific antibody. 5. The cytoskeletal actin stress fibers were disappeared and the cells showed to be rounded in CB-treated group. These results indicated that there are a relationship between the cytoskeletal rearrangements and osteoblastic cell activities, especially in release of paracrine/autocrine factors, such as $PGE_2$, IL-6, and TNF-$\alpha$.
Objective: Despite extensive research on implantation failure, little is known about the molecular mechanisms underlying the crosstalk between the embryo and the maternal endometrium, which is critical for successful pregnancy. Profilin 1 (PFN1), which is expressed both in the embryo and in the endometrial epithelium, acts as a potent regulator of actin polymerization and the cytoskeletal network. In this study, we identified the specific role of endometrial PFN1 during embryo implantation. Methods: Morphological alterations depending on the status of PFN1 expression were assessed in PFN1-depleted or control cells grown on Matrigel-coated cover glass. Day-5 mouse embryos were cocultured with Ishikawa cells. Comparisons of the rates of F-actin formation and embryo attachment were performed by measuring the stability of the attached embryo onto PFN1-depleted or control cells. Results: Depletion of PFN1 in endometrial epithelial cells induced a significant reduction in cell-cell adhesion displaying less formation of colonies and a more circular cell shape. Mouse embryos co-cultured with PFN1-depleted cells failed to form actin cytoskeletal networks, whereas more F-actin formation in the direction of surrounding PFN1-intact endometrial epithelial cells was detected. Furthermore, significantly lower embryo attachment stability was observed in PFN1-depleted cells than in control cells. This may have been due to reduced endometrial receptivity caused by impaired actin cytoskeletal networks associated with PFN1 deficiency. Conclusion: These observations definitively demonstrate an important role of PFN1 in mediating cell-cell adhesion during the initial stage of embryo implantation and suggest a potential therapeutic target or novel biomarker for patients suffering from implantation failure.
Different types of eukaryotic cells may adopt seemingly distinct modes of directional cell migration. However, several core aspects are regarded common whether the movement is either ameoboidal or mesenchymal. The region of cells facing the attractive signal is often termed leading edge where lamellipodial structures dominates and the other end of the cell called rear end is often mediating cytoskeletal F-actin contraction involving Myosin-II. Dynamic remodeling of cell-to-matrix adhesion involving integrin is also evident in many types of migrating cells. All these three aspects of cell migration are significantly affected by signaling networks of TorC2, TorC1, and PP2A/B56. Here we review the current views of the mechanistic understanding of these regulatory signaling networks and how these networks affect eukaryotic cell migration.
The aim of this review was to understand the effects of ${\beta}$-adrenergic stimulation on oxidative stress, structural remodeling, and functional alterations in the heart and cerebral artery. Diverse stimuli activate the sympathetic nervous system, leading to increased levels of catecholamines. Long-term overstimulation of the ${\beta}$-adrenergic receptor (${\beta}AR$) in response to catecholamines causes cardiovascular diseases, including cardiac hypertrophy, stroke, coronary artery disease, and heartfailure. Although catecholamines have identical sites of action in the heart and cerebral artery, the structural and functional modifications differentially activate intracellular signaling cascades. ${\beta}AR$-stimulation can increase oxidative stress in the heart and cerebral artery, but has also been shown to induce different cytoskeletal and functional modifications by modulating various components of the ${\beta}AR$ signal transduction pathways. Stimulation of ${\beta}AR$ leads to cardiac dysfunction due to an overload of intracellular $Ca^{2+}$ in cardiomyocytes. However, this stimulation induces vascular dysfunction through disruption of actin cytoskeleton in vascular smooth muscle cells. Many studies have shown that excessive concentrations of catecholamines during stressful conditions can produce coronary spasms or arrhythmias by inducing $Ca^{2+}$-handling abnormalities and impairing energy production in mitochondria, In this article, we highlight the different fates caused by excessive oxidative stress and disruptions in the cytoskeletal proteome network in the heart and the cerebral artery in responsed to prolonged ${\beta}AR$-stimulation.
Md. Abdur Rauf Sarkar;Salim Sarkar;Md Shohel Ul Islam;Fatema Tuz Zohra;Shaikh Mizanur Rahman
Genomics & Informatics
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v.21
no.3
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pp.36.1-36.19
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2023
The LIM domain-containing proteins are dominantly found in plants and play a significant role in various biological processes such as gene transcription as well as actin cytoskeletal organization. Nevertheless, genome-wide identification as well as functional analysis of the LIM gene family have not yet been reported in the economically important plant sorghum (Sorghum bicolor L.). Therefore, we conducted an in silico identification and characterization of LIM genes in S. bicolor genome using integrated bioinformatics approaches. Based on phylogenetic tree analysis and conserved domain, we identified five LIM genes in S. bicolor (SbLIM) genome corresponding to Arabidopsis LIM (AtLIM) genes. The conserved domain, motif as well as gene structure analyses of the SbLIM gene family showed the similarity within the SbLIM and AtLIM members. The gene ontology (GO) enrichment study revealed that the candidate LIM genes are directly involved in cytoskeletal organization and various other important biological as well as molecular pathways. Some important families of regulating transcription factors such as ERF, MYB, WRKY, NAC, bZIP, C2H2, Dof, and G2-like were detected by analyzing their interaction network with identified SbLIM genes. The cis-acting regulatory elements related to predicted SbLIM genes were identified as responsive to light, hormones, stress, and other functions. The present study will provide valuable useful information about LIM genes in sorghum which would pave the way for the future study of functional pathways of candidate SbLIM genes as well as their regulatory factors in wet-lab experiments.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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