This study aimed to evaluate the effect of seminal vesicle fluid (SVF) on the acrosome reaction (AR) occurred spontaneously or induced by $Ca^{2+}$ ionophore A23187, follicular fluid, and progesterone in mouse epididymal sperm. SVF was divided into high (MW>10 kD) and low (MW<10 kD) fractions by ultrafiltration. The low MW fraction of SVF decreased the rate of spontaneous AR, however the high MW fraction did not. It suggested that the low MW fraction of SVF might have contained decapacitation factor(s) responsible for prolonging of time need for capacitation. When sperm preincubated for 60 min in the presence of SVF, the rate of AR induced by A23187 was decreased, but prolongation of preincubation time for 120 min significantly potentiated the AR by A23187. It suggested that addition of SVF into sperm preincubation medium imposed the epididymal sperm a condition similar to ejaculation. AR induced by human follicular fluid or progesterone was also inhibited by SVF. It suggested that substance in SVF might have affected AR of mouse sperm by inhibiting the interaction between AR inducing ligands and sperm surface receptors involved in acrosomal exocytosis.
To investigate the effects of reactive oxygen species (ROS) on capacitation, acrosome reaction in human spermatozoa. Human spermatozoa were incubated with xanthine-xanthine oxidase (X-XO), $H_2O$$_2$, sodium nitroprusside (SNP) or lymphocyte. Otherwise, spermatozoa were incubated under low $O_2$ (5 %) condition. Chlortetracycline (CTC) staining was conducted to assess capacitation and acrosome reaction. Analysis of lipid peroxidation was done by spectrophotometric determination of malondialdehyde (MDA) production in spermatozoa. $H_2O$$_2$, X-XO, SNP and lymphocyte treatment significantly increased capacitated spermatozoa within 1 h of incubation. There was no significant difference in capacitation between low- and high $O_2$ groups. In the presence of low concentration of $H_2O$$_2$, lipid peroxidation decreased significantly. However, under the high concentration of $H_2O$$_2$, lipid peroxidation significantly increased at the end of incubation compared to control. In the presence of high concentration of lymphocytes, lipid peroxidation significantly increased compared to control at 1hr of incubation. There was no significant difference in lipid peroxidation according to $O_2$ concentration examined. Acrosome reaction (AR) was evaluated by CTC staining after the progesterone challenge. In all ROS groups, AR increased compared to control. The X(100 $\mu$M) - XO (100mIU) system was the most potent to induce AR. Taken together, it suggested positive control of AR by ROS and the positive relationship between the lipid peroxidation and AR. The early onset of capacitation in the presence of ROS suggest that ROS might be a positive regulator of sperm capacitation and hyperactivation.
This study has been designed in order to examine a physiological role of $Ca^{2+}$ which has been known as an essential factor for capacitation, to confirm whether the enzyme activity of $Ca^{2+}$-ATPase on capacitation is important or not, and to clarify relationship between various levels of the $Ca^{2+}$ concentration and $Ca^{2+}$-ATPase which has been known to be an important factor of the plasma membranes. In the present study applying quercetin, a $Ca^{2+}$-ATPase inhibitor, the enzymatic effect of $Ca^{2+}$-ATPase on capacitation was found to be remarkable: a significant increase of the transition from the original type (type A) to the type B and the type AR of the spermatozoa. This finding suggests that $Ca^{2+}$-ATPase plays an important role in the efflux and the influx of the $Ca^{2+}$ which has been known to be an essential factor the capacitation and acrosome reaction, and that the inhibitory action of the $Ca^{2+}$-ATPase might be a prerequsite step toward the acrosome reaction. The conclusion reached can be deduced as follows: increment of the intracelluar $Ca^{2+}$ concentration occurred by controlling the slope of $Ca^{2+}$ concentration through $Ca^{2+}$-ATPase activities in both the intra- and extracelluar fluid may be an important procedure for capacitation and acrosome reaction, and ultimately for fertilization of the spermatozoa and the ova.
Iron is required for cell viability but is toxic in excess. While the iron-mediated malfunction of testicular cells is well appreciated, the underlying mechanism(s) of this effect and its relationship with fertility are poorly understood. Ferritin is a ubiquitous intracellular protein that controls iron storage, ferroxidase activity, immune response, and stress response in cells. Ferritin light chain protein (FTL) is the light subunit of the Ferritin. Previously, we had identified the FTL in bovine spermatozoa following capacitation. In present study, to investigate the role of Ferritin in sperm function, mice spermatozoa were incubated with multiple doses (1, 10 and $100{\mu}M$) of sodium nitroprusside (SNP), an iron donor. SNP was increased Ferritin levels in a dose-dependent manner. The Ferritin was detected on the acrosome in spermatozoa by immunocytochemistry. Short-term exposure of spermatozoa to SNP increased tyrosine phosphorylation and the acrosome reaction (AR). Finally, SNP affected a significant decrease in the rate of fertilization as well as blastocyst formation during early embryonic development. On the basis of these results, we propose that the effects of Ferritin on the AR may reduce overall sperm function leads to poor fertility in males and compromised embryonic development.
This experiment was carried out to investigate ultrastructural changes that occurred in bovine epididymal spermatozoa during incubation in a BO medium supplemented with 5 mM caffeine. No structural changes were observed under electron microscope in the majority of non-incubated sperm(79.8%) keeping the membrane intact. Structural changes were however observed when spermatozoa were cultured in a BO medium supplemented with 5 mM caffeine, which were classified into 4 types, intact(29.4%), vesiculated(45.6%), acrosome lost(17.8%) and degenerated(7.2%) spermatozoa, respectively. These results indicated that : 1) vesiculation of spermatozoa membrane is normal acrosome reaction and acrosome lost of spermatozoa is dead one ; 2) caffeine can induce acrosome reaction of bovine epididymal spermatozoa.
This study was performed to determine the effects of nitric oxide on human sperm cell function. Semen samples were obtained from normal healthy volunteers. Motile spermatozoas collected by swim-up method were incubated up to 24 hours in Ham's F-10 medium supplemented with a various concentration of sodium nitroprusside (nitric oxide releasing agent). Sperm motility, hyperactivation, acrosome reaction rate, and acrosin activity were determined. The results are as follows; 1. 1mM of SNP resulted in a significant decrease in sperm motility ($44.8%{\pm}8.9%:78.1%{\pm}6.3%$, and hyperactivation $(10.4%{\pm}6.4%:47.7%:{\pm}9.5%)$ after incubation for 3 hours compared with the control group (Ham's F-10 alone), but had no effect on acrosome reaction. 2. At $100{\mu}M$ SNP, sperm motility was reduced after incubation for 6 hours $(54.8%{\pm}3.2%)$ compared with that of the control group $(82.7%{\pm}8.9%)$, but hyperactivation and acrosome reaction were not affected. 3. However, a lower concentration (less than $10{\mu}M$) of SNP had no effect on sperm motility and hyperactivation for 8 hours of incubation but significantly decreased them when incubation periods were increased up to 24 hours compared with the control group. On the other hand, $1{\mu}M$ and $10{\mu}M$ SNP significantly increased the acrosome reaction rate in both acrosomal status ($17.3%{\pm}5.2%$, $23.5%{\pm}4.7%$, respectively) and acrosin activity ($34.3{\mu}IU{\pm}10.5{\mu}IU,\;45.6{\mu}IU{\pm}5.6{\mu}IU$, respectively) as compared with the control group $(7.0%{\pm}4.0%,\;9.5{\mu}IU{\pm}3.4{\mu}IU)$. These results indicate that SNP, NO releasing agent, has a dose-dependent effects on the sperm cell function. Therefore it may positively affect the fertilization by promoting acrosomal reaction at a lower concentration (less than $10{\mu}M$).
Dioscorea bulbifera tubers contain several phytochemicals of pharmaceutical value. They have been traditionally used for treating various ailments, including postmenopausal symptoms. In the present study, we analyzed the direct effects of Dioscorea tuber extract on mouse spermatozoa. Its contraceptive effect was also evaluated by an intravaginal application before copulation. Mouse spermatozoa were cultured in vitro with various concentrations of the extract. After culturing, the spermatozoa were stained with fluorescein isothiocyanate peanut agglutinin or Coomassie blue to study the acrosome reaction, stained with trypan blue to study the viability, or treated with a hypo-osmotic medium to study the membrane damage. Estrous female mice were intravaginally injected with the extract and copulated with males. The extract induced acrosome exocytosis, viability loss, and membrane damage in a concentration-dependent manner. Female mice treated with the extract showed complete loss of fertility. These observations indicate that the Dioscorea bulbifera tuber extract could be used as a topical contraceptive. Infertility could be due to the precocious acrosome exocytosis of the spermatozoa or membrane damage.
본 연구는 수정능획득유기물질로 알려진 카페인 헤파린을 병행처리하여 한우 정자의 첨체 반응율과 생존율을 알아보고 수정능획득과정 중에 단백질의 변화상을 전기영동방법으로 조사하였다. 동결융해후 정자의 생존율은 90%이상이었으나 전배양처리후 0.5시간에 70%로 감소하고 2시간 이후에는 35%로 감소하였다. 정자의 첨체반응율은 동결융해후 정상정자가 85.7%였으나 전배양시간에 따라 53.4%에서 14.3%로 감소하였다. 동결융해후 첨체가 소실된 생존정자는 9.4%였으나 전배양시간에 따라 17.2%에서 46.8%로 증가하였다. 원정액에서는 분자량 20,000정도에서 동결융해후 전자보다 특이적으로 많은 단백질량을 나타내었으나 동결융해 후 정자를 0.5에서 2.0시간으로 전배양하였을 때 전배양시간에 따른 단백질상의 변화는 대조구와 큰 차이가 없었다.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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