Kim, Hyun Jung;Kim, Chung Hyon;Lee, Soo Min;Choe, Seung Ah;Lee, Joong Yeup;Jee, Byung Chul;Hwang, Doyeong;Kim, Ki Chul
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.39
no.3
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pp.118-124
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2012
Objective: To review the outcomes of preimplantation genetic diagnosis (PGD) using zona drilling with acid Tyrode's solution (chemical zona pellucida drilling, chemical ZD) and those of partial zona dissection (PZD). Methods: Clinical outcomes of seventy-one couples undergoing 85 PGD cycles from January 2005 to December 2010 were included. Blastocyst formation and the hatching rate, clinical pregnancy rate, ongoing pregnancy rate, implantation rate, and fetal gender ratio of the PZD and chemical ZD groups were compared. Results: Application of PZD resulted in a significantly higher rate of clinical pregnancy (40.7% vs. 15.4%, p=0.022), ongoing pregnancy (35.6% vs. 11.5%, p=0.023), and implantation (18.1% vs. 5.7%, p=0.007) compared with chemical ZD. Among non-transferred embryos, the rate of blastocyst formation on day 5 (49.1% vs. 39.5%, p=0.016) and hatching on day 6 (47.2% vs. 26.5%, p<0.001) were also significantly higher in the PZD group. Conclusion: The mechanical zona dissection (ZD) method showed better outcomes than chemical ZD in terms of the blastocyst development and pregnancy rate. In this study, the fact that chemical ZD was conducted in different period from mechanical method should be considered in interpreting the result.
The efficiency of somatic cell nuclear transfer (NT) in pigs is low and requires enhancement. We identified the most efficient method for zona pellucida (ZP) removal and blastomere aggregation in pigs and investigated whether the aggregation of NT and parthenogenetic activation (PA) of blastomeres could reduce embryonic apoptosis and improve the quality of NT-derived embryos by investigating. Embryonic developmental competence after ZP removal using acid Tyrode's solution or protease (pronase E). The embryonic developmental potential of NT-derived blastomeres was also investigated using well-of-the-well or phytohemagglutinin-L. We analyzed apoptosis in aggregate-derived blastocysts. The aggregation rate of protease-treated embryos was lower than that of Tyrode's solution-treated embryos (69.2% vs. 88.3%). No significant difference was observed between phytohemagglutinin-L and well-of-the-well (35.7%-38.5%). However, 2P1N showed a higher number of blastocysts compared to 3N (73.8% vs. 24.3%) and an increased blastocyst diameter compared to the control and 1P2N (274 ㎛ vs. 230-234 ㎛). In blastomeres aggregated using phytohemagglutinin-L, the apoptotic cell ratio was significantly higher in 1P2N and 3N than in 3P (5.91%-6.46% vs. 2.94%, respectively). Our results indicate that aggregation of one NT embryo with two PA embryos improved the rate of blastocysts with increased blastocyst diameter.
Kim, Dae-Hwan;Park, Sang-Kyu;Kim, Se-Woong;Jung, Yeon-Gil;Roh, Sang-Ho
Journal of Embryo Transfer
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v.26
no.2
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pp.111-115
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2011
In general, zona pellucida (ZP) of the blastocyst has to be removed first, then either isolated the inner cell mass (ICM) or ZP-removed whole blastocyst, which is then cultured on the feeder layer to induce ICM outgrowth for the generation of embryonic stem cells (ESC). However, it is unclear whether ICM isolation before seeding on feeder layer is beneficial or not because the interaction between ICM and trophoblasts may affect cellular growth and/or pluripotency during the culture on the feeder. In the present study, two ZP removal methods (mechanically by splitting with a 28-gauge needle versus chemically by the treatment of acid-Tyrode's solution) and two ICM isolation methods (ZP-free whole blastocyst seeding versus mechanical isolation of ICM) were evaluated for the efficient isolation and culture of putative parthenogenetic bovine ESC. The number of maintained outgrown colonies was counted in each experimental group. As the result, mechanical removal of ZP with a needle and followed by whole ZP-free blastocyst seeding on feeder cells tended to attach more on the feeder layer and resulted in more outgrown colonies with its simple and less time-costing benefits. Currently we are generating ESC lines in HanWoo cattle by using this method for initial outgrowth of the parthenogenetic bovine blastocysts.
These experiments were carried out to investigate fertilizable and developmental ability after zona drilling the unfertilized eggs and the eggs not fertilized by the 1st insemination. The results of in vitro fertilization of the mouse eggs treated by using micromanipulation and acid tyrode's solution with capacitated epididymal spermatozoa were as follows. In the case of ovulated unfertilized eggs, according to sperm count(106, 105, 104 and 103/ml) the rates of in vitro fertlilization treated by zona drilling were 86.0%, 82.0%, 70.0% and 54.0%, respectively, and those of control were 58.0%, 52.0%, 12.0% and 8.0%, respectively. The rates of in vitro fertilization of zona drilled eggs were significantly high compared with those of control, and there were no significant difference between two groups. According to the sperm count the zona drilled eggs developed to the blastocysts were 51.4%, 40.5%, 23.3% and 17.4% and those of control were 35.7%, 26.3%, 0% and 0%, respectively. Also, in the eggs not fertilized by 1st insemination, the fertilization rates of oocytes reinseminated after zona drilling was significantly higher(83.5%) than that of control(34.7%), and the rates of polyspermy were similar. The rates of development to the blastocysts was 18.6% in the zona drilling treated eggs, and that of control was 27.3%, there was no significant difference between two groups. These results indicated that oocytes not fertilized by 1st insemination as well as ovulated unfertilized eggs could be fertilized, improve fertilizing rates by zona drilling treatment, and development potential were normal.
The demand for the production of gene-defective mice from embryonic stem (ES) cells is increasing to clarify decisive gene function in vivo. Although blastocyst injection is widely used to generate ES cell-mediated knockout mice, coculture method has been alternatively used because of several advantages, such as low cost and simple procedure. Thus, this experiment was designed to demonstrate the feasibility of the coculture method using J1 ES cells, which are known to be efficient for blastocyst injection. Eight-cell embryos were harvested from 2.5 days post-coitum (dpc), denuded with acid tyrode's solution, and transferred onto trypsinized J1 ES cells. Aggregation was carried out following two typical methods, which are simple coculture method and aggregation in groove prepared by aggregation needle. Successfully aggregated-embryos were developed to blastocysts for 24 h and transferred into uterus of pseudo-pregnant foster mother. Chimeric offspring was judged by coat pigmentation. In this study, we could obtain chimeric mice from all the two aggregation methods, but the chimera production efficiencies in coculture using groove were three times higher at least than those in the other group. In conclusion, these observations suggest that coculture method should be available for production of knockout mice from J1 ES cells. Presently, the germ-line transmission rates of the chimeras produced from the two methods are under investigation.
Objective: The effects of cryopreservation with or without coculture on the in vitro development of blastomere-biopsied 8-cell mouse embryos were investigated. This experimental study was originally designed for the setup of a preclinical mouse model for the preimplantation genetic diagnosis (PGD) in human. Methods: Eight-cell embryos were obtained after in vitro fertilization (IVF) from F1 hybrid mice (C57BL(표현불가)/CBA(표현불가)). Using micromanipulation, one to four blastomeres were aspirated through a hole made in the zona pellucida by zona drilling (ZD) with acid Tyrode's solution (ATS). A slow-freezing and rapid-thawing protocol with 1.5M dimethyl sulfoxide (DMSO) and 0.1M sucrose as cryoprotectant was used for the cryopreservation of blastomere- biopsied 8-cell mouse embryos. After thawing, embryos were cultured for 110 hours in Ham's F-10 supplemented with 0.4% bovine serum albumin (BSA). In the coculture group, embryos were cultured for 110 hours on the monolayer of Vero cells in the same medium. The blastocyst formation was recorded, and the embryos developed beyond blastocyst stage were stained with 10% Giemsa to count the total number of nuclei in each embryo. Results: The survival rate of embryos after cryopreservation was significantly lower in the blastomere-biopsied (7/8, 6/8, 5/8, and 4/8 embryos) groups than in the non-biopsied, zona intact (ZI) group. Without the coculture, the blastocyst formation rate of embryos after cryopreservation was not significantly different among ZI, the zona drilling only (ZD), and the balstomere-biopsied groups, but it was significantly lower than in the non-cryopreserved control group. The mean number of cells in embryos beyond blastocyst stage was significantly higher in the control group ($50.2{\pm}14.0$) than in 6/8 ($26.5{\pm}6.2$), 5/8 ($25.0{\pm}5.5$), and 4/8 ($17.8{\pm}7.8$) groups. With the coculture using Vero cells, the blastocyst formation rate of embryos after cryopreservation was significantly lower in 5/8 and 4/8 groups, compared with the control, 7/8, and 6/8 groups. The mean number of cells in embryos beyond blastocyst stage was also significantly lower in 4/8 group ($25.9{\pm}10.2$), compared with the control ($50.2{\pm}14.0$), 7/8 ($56.0{\pm}22.2$), and 6/8 ($55.3{\pm}25.5$) groups. Conclusion: After cryopreservation, blastomere-biopsied mouse embryos have a significantly impaired developmental competence in vitro, but this detrimental effect might be prevented by the coculture with Vero cells in 8-cell mouse embryos biopsied one or two blastomeres. Biopsy of mouse embryos after ZD with ATS is a safe and highly efficient preclinical model for PGD of human embryos.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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