To develop the new strains of microorganisms having the degradative ability for various aromatic hydrocarbons, the hybrid plasmid pKG2 having the 2,4-Dichlorophenoxyacetic acid(2,4-D) degradative genes, the hybrid plasmid pKG3 containg the naphthalene degradative genes and TOL plasmid were introduced into Pseudomonas putida KUD 12 and P. putida KUP 10 by transformation or conjugation which originally have the degradative ability of the synthetic surfactants and phthalate esters, respectively. From P. putida KUD12, the new strains of P. putida KUD101(pKG2), KUD102(pKG3), KUD103(TOL), and KUD202(pKG3, TOL) were obtained, and KUD106(pKG2), KUD107(pKG3), KUD108(TOL) were originated from the P.putida KUP10. The degradative abilities in P. putida KUD101, KUD102 and KUD107 were similar with those of the original strains. The P. putida KUD103, KUD106 and KUD202 had a little lower and P. putida KUD108 had a better degradative abilitie than those of the original ones. In the case of mixed cultures, the mixed culture of KUD107 and KUD108 had a better degradative abilities than those of the other mixed cultures.
To analyze the effects of host versus plasmid on survival of 2, 4-degrading bacteria in environmental samples, strains Pseudomonas cepacia/pJP4, Alcaligenes JMP228/pJP4, P. cepacia/p712, and Alcaligenes JMP228/p712 were separately inoculated into samples of field soil, paddy soil, lake water, and river water, and then the changes of their populations were measured. The strains used contained a 2, 4-D degradative plasmid, either pJP4 conferring fast-growing property to the host or p712 conferring slow-growing property, and were resistant to antibiotics such that the inoculated strains could be enumerated against the indigenous microbial populations. In sterile environmental samples, these strains were stably maintained at the levels used for inoculation, except in sterile paddy soil where Alcaligenes JMP228 strains died drapidly. In natural soil samples for four strains declined steadily with time, but in naturla water samples their polulations fell rapidly at the early phase and then remained almost constant. When the environmentla samples were treated with 2, 4-D, P. cepacia/pJP4 and P. cepacia/p712 maintained significant numbers, while Alcaligenes JMP228/pJP4 and Alcaligenes JMP228/p712 declined significantly in most of the samples. The results indicated that the survivability of genetically modified microorganisms could vary depending on the environments and that their abundance in the environments under s2, 4-D selection was markedly influenced by the nature of the 2, 4-D degradative plasmid as well as type of the host strain.
KIM TAE SUNG;KIM MI SOON;JUNG MEE KUM;JOE MIN JEONG;AHN JAE HYUNG;OH KYOUNG HEE;LEE MIN HYO;KIM MIN KYUN;KA JONG OK
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.15
no.2
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pp.376-383
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2005
Alcaligenes sp. JMP228 carrying 2,4dichlorophenoxyacetic acid (2,4-D) degradative plasmid pJP4 was inoculated into natural soil, and transfer of the plasmid pJP4 to indigenous soil bacteria was investigated with and without 2,4-D amendment. Plasmid pJP4 transfer was enhanced in the soils treated with 2,4-D, compared to the soils not amended with 2,4-D. Several different transconjugants were isolated from the soils treated with 2,4-D, while no indigenous transconjugants were obtained from the unamended soils. Inoculation of the soils with both the donor Alcaligenes sp. JMP228/pJP4 and a recipient Burkholderia cepacia DBO 1 produced less diverse transconjugants than the soils inoculated with the donor alone. Repetitive extragenic palindromic-polymerase chain reaction (REP-PCR) analysis of the transconjugants exhibited seven distinct genomic DNA fingerprints. Analysis of 16S rDNA sequences indicated that the transconjugants were related to members of the genera Burkholderia and Pandoraea. Denaturing gradient gel electrophoresis (DGGE) analysis of PCR-amplified 16S rRNA genes revealed that inoculation of the donor caused clear changes in the bacterial community structure of the 2,4-Damended soils. The new 16S rRNA gene bands in the DGGE profile corresponded with the 16S rRNA genes of 2,4-Ddegrading transconjugants isolated from the soil. The results indicate that introduction of the 2,4-D degradative plasmid as Alcaligenes sp. JMP228/pJP4 has a substantial impact on the bacterial community structure in the 2,4-D-amended soil.
The effects of various 2, 4-D-degradative plasmids on the axenic growth patterns, the degradation phenotypes, and the competitiveness of different host bacteria were evaluated in liquid cultures; the organisms and plasmids used were Alcaligenes eutrophus JMP134/pJP4, Alcaligenes paradoxus/p2811, Pseudomonas pickettii/p712, pJP4, and p712 or p 2811 exhibited very different restriction fragment profiles in restriction endonuclease digests. These plasmids were transferred to the recipients (P. cepacia and Alcaligenes JMP228) at relatively high frequencies ranging from 8.9 $\times$ 10$^3$ to 1.6 $\times$ 10$^5$ per donar cell. In the axenic liquid cultures the fast-growing strains, such as P. pseudomallei/p745 and P. cepacia/pJP4, exhibited short lag periods, high specific growth rates, and high relative fitness coefficients, while the slow-growing strains, such as P. pickettii/p712 and A. paradoxus/p2811, had long lag periods, low specific growth rates, and low relative fitness coefficients. Depending on the type of plasmid containing the genes for the 2, 4-D pathway, some transconjugants exhibited intermediate grwoth patterns between the fast-growing strains and the slow-growing strains. The plasmid and plasmid-host interactions determined specific growth rate and lag time, respectively, which were shown to be principal determinants of competitiveness among the strains, but relative fitness coefficient derived from the axenic culture was not always predictive for the mixed culture condition.
Proceedings of the Korean Institute of Information and Commucation Sciences Conference
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2010.10a
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pp.663-665
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2010
By the curing and transformation experiment, it was found thatthe genes of Pseudomonas sp.KU171(pKU19) for MCPA-degrading were located on a plasmid pKU19. Also the plasmid had degradative gens for 2,4-D, 3CB, and DCP. Molecular size of pKU19 was measured to be 31.2Kb. The restriction pattern were analyzed with Eco RI, BglII,XhoI, and the restriction map was generated.
Eight numerically dominant 4-(2,4-dichlorophenoxy) butyric acid (2,4-DB)-degrading bacteria and three pairs of bacteria showing syntrophic metabolism of 2,4-DB were isolated from soils, and their phylogenetic and phenotypic characteristics were investigated. The isolates were able to utilize 2,4-DB as a sole source of carbon and energy, and their 2.4-DB degradative enzymes were induced by the presence of 2.4-DB. Analysis of 16S rDNA sequences indicated that the isolates were related to members of the genera, Variovorax, Sphingomonas, Bradyrhizobium, and Pseudomonas. The chromosomal DNA patterns of the isolates obtained by polymerase-chain-reaction (PCR) amplification of repetitive extragenic palindromic (REP) sequences were distinct from each other. Four of the isolates had plasmids, but only one strain, DB 1, rad a transmissible 2,4-D degradative plasmid. When analyzed with PCR using primers targeted to the tfdA, B, and C genes, only strains DB2 and DB9a produced DNA bands of the expected sizes with the tfdA and C primers, respectively. All of the isolates were able to degrade 2,4-D as well as 2,4-DB, suggesting that the degradation pathways of these compounds were closely related to each other, but respiratory activities of many isolates adapted to 2,4-DB metabolism were quite low with 2,4-D.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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