Using a hybridoma technique, spleen cells of Balb/c mice immunized with human chorionic gonadotropin (hCG) were fused with NS-1 mouse myeloma cells. Two hybrid cell lines, clones KS-8 and KS-19, secreting monoclonal antibodies to hCG, were isolated. KS-8 and KS-19 belong to the immunoglobulin $G_1$ subclass. With the aid of a double-antibody radioimmunoassay, it was established that the KS-8 monoclonal antibody recognizes an immunodeterminant of the $\beta$-subunit of hCG, whereas the KS-19 monoclonal antibody recognizes an epitope present on the $\alpha$-subunit of hCG. The KS-8 monoclonal antibody specifically reacts with human chorionic gonadotropin and shows cross-reactivity of less than 0.3% to other related human glycoprotein hormones. On the other hand, using a hemagglutination test based on antibody-induced agglutination of sheep red blood cells coated with hCG, It was shown that only the KS-19 monoclonal antibody was capable of inducing a positive reaction, although both monoclonal antibodies had similar binding capacity to the coated cells. The results from the dual screening procedures demonstrate that KS-8 and KS-19 monoclonal antibodies show high sensitivity in two different assays, and are hence useful for the qualitative and quantitative determination of hCG by both radioimmunoassay and hemagglutination inhibition tests.
In order to obtain monoclonal antibody from ascites fluid at sufficiently high purity using a single hydroxylapatite chromatography (HA) a further optimization on its operating variables was carried out. By adjusting the pH of the eluent, the sodium phosphate buffer, to 6.0 from 6.8 and adding CaCl$_2$to 1 mM at the column inlet, the elution molarities (M$_{elu}$) for the desired monoclonal antibody and contaminating proteins can be distinguished from each other with enough resolution. Previously these two groups of proteins co-eluted at the same time at pH 6.8 and without CaCl$_2$. This sin81e step hydroxylapatite chromatography yields the desired antibody pure enough for diagnostic use.
The present study describes the production of monoclonal antibodies against cultured chick myoblast to pursue critical proteins in muscle cell fusion. Among a panel of monoclonal antibodies, three, Mll-3H 13, Mll-3Hl8 and Mll-3H35 were inhibited movblast fusion. A single 101-kDa antigen reactive with monoclonal antibody Mll-3H35 was detected by radioimmu-noprecipitation or by immunoblotting. During the course of myogenesis, the level of the protein remarkably decreased as the cells there differentiated. These results suggest that the protein platys a direct role in the process of myoblast fusion mechanism.
Competitive direct ELISA was developed to detect gentamicin residues. Mice immunized with gentamicin-keyhole limpet hemocyanin (KLH) conjugate developed good antiserum titers, which gradually increased with booster injections, indicating immunization was successfully processed. Monoclonal antibody against gentamicin was prepared using hybridoma cells cloned by limit dilution of fused cells. IgG was purified from ascites fluid of hybridoma cell-injected mice through ammonium sulfate precipitation and Sephadex G-25 gel filtration. After the gel filtration, fractions of high antibody titer were further purified through affinity chromatography on protein A/G column. Monoclonal antibody against gentamicin was confirmed as IgG1, which has kappa light chain. Cross-reactivities ($CR_{50}$) of gentamicin monoclonal antibody to other aminoglycosides (kanamycin, neomycin, and streptomycin) were less than 0.005%, indicating the monoclonal antibody was highly specific for gentamicin. Standard curve constructed through competitive direct ELISA showed measurement range (from 80 to 20% of B/$B_0$ ratio) of gentamicin was between 1 and 40 ng/ml, and 50% of B/$B_0$ ratio was about 4 ng/ml. The gentamicin concentration rapidly increased to 1,300 ng/ml after the intramuscular administration up to 2 h, then sharply decreased to less than 300 ng/ml after 4 h of withdrawal, during which the elimination half-life ($t_{1/2}$) of gentamicin in the rabbit plasma was estimated to be 1.8 h. Competitive direct ELISA method developed in this study using the prepared monoclonal antibody is highly sensitive for gentamicin, and could be useful for detecting gentamicin residues in plasma of live animals.
Background: Bone marrow stromal cells (BMSCs) express many cell surface molecules, which regulate the proliferation and differentiation of immune cells within the bone marrow. Methods: To identify cell surface molecules, which can regulate cell proliferation through cell interaction, monoclonal antibodies (MoAbs) against BMSCs were produced. Among them, 1H8 MoAb, which recognized distinctly an 80 kDa protein, abolished myeloma cell proliferation that was induced by co-culturing with BMSCs. Results: IL-6 gene expression was increased when myeloma or stromal cells were treated with 1H8 MoAb. In addition, the expression of IL-6 receptor and CD40 was up-regulated by 1H8 treatment, suggesting that the molecule recognized by 1H8 MoAb is involved in cell proliferation by modulating the expression of cell growth-related genes. Myeloma cells contain high levels of reactive oxygen species (ROS), which are related to gene expression and tumorigenesis. Treatment with 1H8 decreased the intracellular ROS level and increased PAG antioxidant gene concomitantly. Finally, 1H8 induced the tyrosine phosphorylation of several proteins in U266. Conclusion: Taken together, 1H8 MoAb recognized the cell surface molecule and triggered the intracellular signals, which led to modulate gene expression and cell proliferation.
Background: Disialoganglioside GD2 is a tumor-associated antigen that is overexpressed on tumor cells of neuroectodermal origin, such as melanoma and neuroblastoma. Anti-idiotypic antibodies that mimic GD2 may induce more effective immune responses than GD2 antigen itself, because they are protein antigens and are known to be able to break immune tolerance. In this study, to explore the potential of anti-idiotypic antibodies as tumor vaccines, the ability of anti-idiotypic antibodies (Ab2) to induce anti-anti-idiotypic antibodies (Ab3) that bind to the original antigen GD2 was investigated. Methods: Six monoclonal anti-idiotypic antibodies (1A8, 1G5, 2B6, 3A4, 3D6, 3H9) to monoclonal antibody M2058, which is a monoclonal antibody to GD2, were produced in mice. Three (1A8, 3A4, 3H9) of them were selected based on their ability to inhibit the binding of Ab1 to D142.34 (murine melanoma cell expressing GD2). These 3 different Ab2 were injected into rabbits, and rabbit Ab3 induced by each of them were characterized. Results: Ab3-containing sera from two rabbits immunized with 1A8, 3A4, or 3H9 bound significantly (P<0.05) to D142.34 but not to B78.96 (GD2-negative cell), and bound significantly (P<0.05) to isolated GD2 but not to GD1a. Ab3-containing sera from two rabbits immunized with 3A4 or 3H9 inhibited significantly (P<0.05) the binding of Ab1 M2058 to D142.34, and inhibited significantly (P<0.05) the binding of Ab1 M2058 to the Ab2. Conclusion: These results suggest that anti-idiotypic antibodies 3A4 and 3H9 have a potential to be used as vaccines against tumors expressing GD2 by inducing GD2-specific antibodies (Ab3).
We have reported that water-extracted Korean mistletoe (KM-110) had various biological activities such as antitumor and immunomodulatory activity, and the pectin fraction (KML-C) of the extract was one of major factors related to its biological functions. In this paper, we produced murine monoclonal antibody (mAb) against KML-C. The cAbs obtained were largely classified into two groups according to specificity to KML-C and ML-I, a pectin from European mistletoe. One group mAbs (9H7-D10 and 3C2-lH4) strongly reacted with KML-C, but not ML-I. In contrast, another group cAbs (8Bll-2C5, BE12-3E9 and 5E10-Fl) reacted with both KML-C and ML-1. The subisotypes of these mobs were shown to be IgGl (9H7-lD10, 3C2-lH4 and 8Bll-2C5) or IgM (8E12-3E9 and 5E10-Fl). To develop an assay system for determination of the amount of KML-C, we established the sandwich ELISA (enzyme-linked immunosorbent assay) method using these mAbs and horse radish peroxidase (HRP)-labelled cAbs. In various combinations of the cAbs for coated antibody and detection antibody, the sandwich ELISA quantitatively detected KML-C, showing the detection limit ranging from 7-5,000 ng/ml. Especially reproducibility (C.V) of the sandwich ELISA, in which 8E12-3E9 was used for coating antibody and 8Bll-2C5-HRP for detection antibody, was 4.59-5.83 in intra assay, and 3.9-9.4 in inter assay.
Monoclonal antibody to the Escherichia coli heat-stable enterotoxin(ST) was produced to develop a rapid and convenient diagnostic method to the ST. The toxin was purified from culture supernatant of enterotoxigenic E. coli O148H28($ST^+/LT^+$) and conjugated to bovine serum albumin(BSA). The ST-BSA conjugate was used to immunize BALB/c mice and the immune spleen cells from these mice were fused with $P3{\times}63$ Ag8.V653 plasmacytoma cells. Hybridomas were screened by ELISA and positive hybridomas were cloned by limiting dilution. Finally, one stable clone (AS36) specific to ST was selected for further growth and characterization. Antibody titers of culture supernatant and ascitic fluid from BALB/c mice were 1:1,024 and 1:20,480 respectively in ELISA. The isotype and subclass of monoclonal antibody was IgG1 in sandwich ELISA. To test the neutralizing effect of monoclonal antibody on toxin activity of ST, mixture of ascitic fluid and ST was assayed by infant mouse assay and this monoclonel antibody was proved to be a neutralizing antibody. The titer of ascitic fluid which completely neutralized biological activity of 4 units of ST was 1:4. Purified ST was quantitatively measured by competitive ELISA and minimum amount of ST detectable by this assay was 250pg, which was an amount six-fold smaller than that detectable by infant mouse assay. Four reference strains of enterotoxigenic E. coli from WHO were detected by competitive ELISA and highly specific, sensitive and reproducible result was obtained.
Monoclonal antibody를 이용한 Saliva-$check^{TM}$ Mutans키트의 타액 Streptococcus mutans검출방법으로서의 활용도와 임상적 우식지수 및 기존의 세균배양방법과의 상관관계를 알아보기 위해 2008년 2월에서 5월 중 평촌키즈웰치과에 내원한 만 2세에서 만 8세 사이의 92명의 아동을 대상으로 Streptococcus mutans 검출검사를 실시하였으며 또한 우식에 영향을 미치는 다른 요인인 치면세균막 pH와 타액완충능력검사를 실시하여 다음과 같은 결론을 얻었다. 1. Saliva-$check^{TM}$ Mutans 검사결과 양성을 나타낸 아동은 27명으로 29.3%이었고, 음성을 나타낸 아동은 65명으로 70.65%이었다. 우식경험유치면률은 음성 아동 13.89%, 양성 아동 25.23%으로 나타났다. 2. Monoclonal antibody를 이용한 검사방법 인 Saliva-$check^{TM}$ Mutans와 기존의 세균 배양방법인 $Dentocult^{(R)}$-SM은 각각 상이한 검사방법을 이용함에도 불구하고 검사결과 높은 상관관계를 보였다(p<0.01). 3. Saliva-$check^{TM}$ Mutans검사와 치면세균막 pH검사와는 역상관관계를 나타내었으나(p<0.01),타액완충능 검사와는 상관관계가 나타나지 않았다(p>0.05). 이상의 결과로 보았을 때 Monoclonal antibody를 이용한 검사방법인 Saliva-$check^{TM}$ Mutans는 구강 내 Streptococcus mutans를 측정하는 방법으로 적당하며 또한 검사에 필요한 시간을 대폭 줄일 수 있고 사용방법도 매우 간편하게 개발되어 환자들에게 적용함에 있어 효과적이라고 사료되었다.
Chlamydia trachomatis has now shown that this interesting intracellular parasite is a cause of nongonococcal urethritis, infantile pneumonia, pelvic inflammatory disease and epididymitis, in addition to lymphogranuloma venerum and inclusion conjunctivitis. There are several diagnostic methods for C. trachomatis, but the method using monoclonal antibody is the most sensitive and specific. The hybride cell were prepared by fusion of myeloma cell($P_3X_{63}\;Ag_8{\cdot}V_{653}$) of mouse and lymphocyte of mouse(BALB/c) that were immunized with formalin killed C. trachomatis serotype D. The cell mixtures after fusion were dispensed into 640 wells of the 96 well culture plates and continuously cultured in HAT medium for 2 weeks. The supernatants of culture media in 83(13%) wells were reacted with C. trachomatis, which were determined by enzyme-linked immunosorbent assay in 96 well microplate. The clones that secreted antibody to C. trachomatis were cloned by limiting dilution. Only six monoclones secreted antibody to C. trachomatis. The antibody titer of ascitic fluid that collected from same BALB/c mice bearing hybridoma cells was above 1:100,000. These monoclonal antibodies that were IgG reacted with elementary and reticulate bodies of all serotypes(Ba, D, E, F, G, H, J and LGV type-I) using ELISA and indirect immunofluorescence stain, but there were no cross reaction with other bacteria(coagulase negative Staphylococcus, Proteus and E. coli). We concluded these six monoclones secreted the same monoclonal antibody to C. trachomatis. The sensitivity and specificity of the monoclonal antibody compared with Microtrak(confirmatory test of C. trachomatis, Syva) was 100%, respectively.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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