Acetobacter sp. strains were isolated from traditional vinegar collected in Daegu city and Gyeongbuk province. The strain KJY8 showing a high acetic acid productivity was isolated and characterized by phenotypic, chemotaxonomic, and phylogenetic inference based on 16S rRNA sequence analysis. The chemotaxonomic and phylogenetic analyses revealed the isolate to be a strain of Acetobacter pomorum. The isolate showed a G+C content of 60.8 mol%. It contained $\small{LL}$-diaminopimelic acid ($\small{LL}$-$A_2pm$) as the cell wall amino acid and ubiquinone $Q_9$ (H6) as the major quinone. The predominant cellular fatty acids were $C_{18:1}w9c$, w12t, and w7c. Strain KJY8 grew rapidly on glucose-yeast extract (GYC) agar and formed pale white colonies with smooth to rough surfaces. The optimum cultivation conditions for acetic acid production by the KJY8 strain were $20^{\circ}C$ and pH 3.0, with an initial ethanol concentration of 9% (w/v) to produce an acetic acid concentration of 8% (w/v).
Light hydrocarbons accumulated in subsurface soil by long-term microseepage could favor the anomalous growth of indigenous hydrocarbon-oxidizing microorganisms, which could be crucial indicators of underlying petroleum reservoirs. Here, Illumina MiSeq sequencing of the 16S rRNA gene was conducted to determine the bacterial community structures in soil samples collected from three typical oil and gas fields at different locations in China. Incubation with n-butane at the laboratory scale was performed to confirm the presence of "universal microbes" in light-hydrocarbon microseepage ecosystems. The results indicated significantly higher bacterial diversity in next-to-well samples compared with background samples at two of the three sites, which were notably different to oil-contaminated environments. Variation partitioning analysis showed that the bacterial community structures above the oil and gas fields at the scale of the present study were shaped mainly by environmental parameters, and geographic location was able to explain only 7.05% of the variation independently. The linear discriminant analysis effect size method revealed that the oil and gas fields significantly favored the growth of Mycobacterium, Flavobacterium, and Pseudomonas, as well as other related bacteria. The relative abundance of Mycobacterium and Pseudomonas increased notably after n-butane cultivation, which highlighted their potential as biomarkers of underlying oil deposits. This work contributes to a broader perspective on the bacterial community structures shaped by long-term light-hydrocarbon microseepage and proposes relatively universal indicators, providing an additional resource for the improvement of microbial prospecting of oil and gas.
The Bacterial community structure and its complexity of the enrichment culture during the isolation and screening of imidacloprid-degrading strain were studied using denaturating gradient gel electrophoresis analysis. The dominant bacteria in the original tea rhizosphere soil were uncultured bacteria, Rhizobium sp., Sinorhizobium, Ochrobactrum sp., Alcaligenes, Bacillus sp., Bacterium, Klebsiella sp., and Ensifer adhaerens. The bacterial community structure was altered extensively and its complexity reduced during the enrichment process, and four culturable bacteria, Ochrobactrum sp., Rhizobium sp., Geobacillus stearothermophilus, and Alcaligenes faecalis, remained in the final enrichment. Only one indigenous strain, BCL-1, with imidacloprid-degrading potential, was isolated from the sixth enrichment culture. This isolate was a gram-negative rod-shaped bacterium and identified as the genus Ochrobactrum based on its morphological, physiological, and biochemical properties and its 16S rRNA gene sequence. The degradation test showed that approximately 67.67% of the imidacloprid (50 mg/l) was degraded within 48 h by strain BCL-1. The optimum conditions for degradation were a pH of 8 and $30^{\circ}C$. The simulation of imidacloprid bioremediation by strain BCL-1 in soil demonstrated that the best performance in situ (tea soil) resulted in the degradation of 92.44% of the imidacloprid (100 mg/g) within 20 days, which was better than those observed in the ex situ simulations that were 64.66% (cabbage soil), 41.15% (potato soil), and 54.15% (tomato soil).
Culture-dependent methods, such as heterotrophic plate counting (HPC), are usually applied to evaluate the bacteriological quality of hemodialysis water. However, these methods cannot detect the uncultured or viable but non-culturable (VBNC) bacteria, both of which may be quantitatively predominant throughout the hemodialysis water treatment system. Therefore, propidium monoazide (PMA)-qPCR associated with HPC was used together to profile the distribution of the total viable bacteria in such a system. Moreover, high-throughput sequencing of 16S rRNA gene amplicons was utilized to analyze the microbial community structure and diversity. The HPC results indicated that the total bacterial counts conformed to the standards, yet the bacteria amounts were abruptly enhanced after carbon filter treatment. Nevertheless, the bacterial counts detected by PMA-qPCR, with the highest levels of $2.14{\times}10^7copies/100ml$ in softener water, were much higher than the corresponding HPC results, which demonstrated the occurrence of numerous uncultured or VBNC bacteria among the entire system before reverse osmosis (RO). In addition, the microbial community structure was very different and the diversity was enhanced after the carbon filter. Although the diversity was minimized after RO treatment, pathogens such as Escherichia could still be detected in the RO effluent. In general, both the amounts of bacteria and the complexity of microbial community in the hemodialysis water treatment system revealed by molecular approaches were much higher than by traditional method. These results suggested the higher health risk potential for hemodialysis patients from the up-to-standard water. The treatment process could also be optimized, based on the results of this study.
Journal of Korean Society of Environmental Engineers
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v.36
no.4
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pp.265-270
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2014
Protease producing microorganisms were isolated from many kinds of food waste and fermented foods, which contains high amount and variable kinds of degraded substances. Several microorganisms were identified by 16S rRNA full sequencing analysis methods. The activity of protease was analyzed and identified in variable conditions for the application. For industrial use for biowaste treatment some proteases were isolated, identified and selected from microbial cells. And the tests were carried for the further use. The protein degrading activity at low temperature is useful for the treatment of organic waste, which contains much proteins. By the protein degradation process the organic waste can be utilized in variable fields, for example from feedstuff supplement to fertilizer for agriculture. Bacterial cells with protease activity at low temperature were isolated and identified. The optimal conditions for microbial cultivation and protease production were studied.
Kim, Min-Kyeong;Seong, Chi-Nam;Jahng, Kwangyeop;Cha, Chang-Jun;Joh, Ki-seong;Bae, Jin-Woo;Cho, Jang-Cheon;Im, Wan-Taek;Kim, Seung-Bum
Journal of Species Research
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v.6
no.1
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pp.15-24
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2017
During the extensive survey of the prokaryotic species diversity in Korea, bacterial strains belonging to Betaproteobacteria and Epsilonproteobacteria were isolated from various sources including freshwater, sediment, soil and fish. A total of 23 isolates were obtained, among which 22 strains were assigned to the class Betaproteobacteria and one strain to the class Epsilonproteobacteria. The 22 betaproteobacterial strains were further assigned to Comamonadaceae (11 strains), Burkholderiaceae (6 strains), Oxalobacteraceae (2 strains), Neisseriaceae (1 strain) and unclassified family groups (2 strains). For the strains of Burkholderiaceae, 3 strains were identified as 3 species of Burkholderia, and 2 strains were as 2 species of Cupriavidus. For the strains of Comamonadaceae, 4 strains were identified as 2 species of the genus Hydrogenophaga, 2 strains as 2 species of Acidovorax, 2 strains as 2 species of Limnohabitans, and each of the remaining strains as single species of Comamonas, Curvibacter and Rhodoferax, respectively. For the strains of Oxalobacteraceae, 1 strain was identified as a species of Undibacterium, and the other strain as a species of Herbaspirillum. The strain belonging to Neisseriaceae was identified as a species of Iodobacter. The remaining strains of Betaproteobacteria were identified as species of Sphaerotilus and Methylibium respectively (family unassigned). The epsilonproteobacterial strain was identified as a species of Arcobacter of the family Camplyobacteraceae. The detailed description of each unrecorded species is provided.
Proceedings of the Plant Resources Society of Korea Conference
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2018.10a
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pp.109-109
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2018
Bacillus subtilis B22, a chemotrophic and aerobic bacterial strain was isolated from homemade kimchi, identified by 16S rRNA gene sequencing. B22 was primarily screened by biochemical, carbon source utilization tests. B22 was used to produce pectinase and ${\beta}$-glucosidase by submerged fermentation under different light sources. B22 was incubated in pectin media and basal media (pH 7.0) under blue, green, red and white light-emitting diodes (LEDs), fluorescent white light, and in darkness at $37^{\circ}C$, orbital shaker 150 rpm for 24 hours. Fermentation under blue LEDs maximized pectinase production ($71.59{\pm}1.6U/mL$ at 24 h) and ${\beta}$-glucosidase production ($56.31{\pm}1.6U/mL$ at 24 h). Further, the production of enzyme increased to pectinase ($156{\pm}1.28U/mL$) and ${\beta}$-glucosidase ($172{\pm}1.28U/mL$) with 3% glucose as a carbon source. Activity and stability of the partially purified enzymes were higher at pH 6.0 to 8.0 and $25-55^{\circ}C$. The effect on the metal ions $Na^+$ and $K^+$ and (moderateactivity) $Mn^{2+}$ and $Ni^{2+}$ increased activity, while $Hg^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Fe^{2+}$, and $Fe^{2+}$ inhibited activity. EDTA, phenylmethylsulfonyl fluoride and 5,5-dithiobis (2-nitrobenzoicacid) reduced activity, while tetrafluoroethylene and 1,10-phenanthroline inhibited activity. The amylase was highly tolerant of the surfactants TritonX-100, Tween-20, Tween-80 and compatible with organic solvents methanol, ethanol, isoamylalcohol, isopropanol, t-butylalcohol and the oxidizing agents hydrogen peroxide, sodium perborate and sodium hypochlorite, although potassium iodide and ammonium persulfate reduced activity. These properties suggest utility of pectinase and ${\beta}$-glucosidase produced by B. subtilis B22 under blue LED-mediated fermentation for industrial applications.
This study was carried out to research microorganisms having the antifungal activity against ginseng Alternaria blight pathogen Alternaria panax and ginseng anthracnose pathogen Colletotrichum gloeosporioides. Eleven Bacillus strains. were isolated from Korean traditional soybean paste and Kimchi. Among the 11 isolates, DJ5, KC1, KC2 and KC4 showing antagonistic activity on the mycelial growth of A. panax and C. gloeosporioides in pairing culture were finally selected as the antagonistic microorganisms. Based on 16s rRNA sequence and phylogenetic tree analysis, they were identified as Bacillus spp.. The selected microorganisms were investigated antagonistic activity by measured leaf-segment colonization in pot test. When Bacillus sp. were injected after A. panax treatment, KC1, KC2 and KC4 showed similar effect to chemical pesticides treated control. To measure preventive effect of Bacillus sp, antagonistic microorganisms were injected and C. gloeosporioides was treated in pot. When measuring the effectiveness for the prevention of Anthracnose, All Bacillus spp. showed approximately 83~90 % degree of superior preventive effect. In general, The four Bacillus spp. isolated from Korean traditional fermented foods showed therapeutic effect of Alternaria blight and preventive effect of Anthracnose.
The occurrence of dental caries is mainly associated with oral pathogens, especially cariogenic Streptococcus mutans. The aim of this study was to isolate and characterize lactic acid bacterium showing inhibitory activity against cariogenic Streptococcus mutans. As results, an isolate with strong inhibitory activity was obtained from Kimchi and it was identified as Lactobacillus sakei by API and 16S rRNA gene analyses. This strain secreted an inhibitory compound in cell growth medium and the activity of the compound was completely disappeared by proteinase K revealing the fact that the compound is proteinous substance, bacteriocin. Optimal culture condition for bacteriocin production by Lb. sakei K-7 was at pH 7.5 and $37^{\circ}C$ for 18 h. Oral administration of this isolate may give anticariogenic and probiotic effects on hosts.
Aspergillus niger LK harboring the enantioselective epoxide hydrolase (EHase) activity was isolated, and enantioselectivity of EHase was tested for various racemic aromatic epoxides. The gene encoding epoxide hydrolase was cloned from cDNA library generated by reverse transcriptase-polymerase chain reaction of the isolated total mRNA. Sequence analysis showed that the cloned gene encodes 398 amino acids with a deduced molecular mass of 44.5 kDa. Database comparison of the amino acid sequence reveals that it is similar to fungal EHase, whereas the sequence identity with bacterial EHase is very low. Recombinant expression of the cloned EHase in Escherichia coli BL21 yielded an active EHases, which can offer a potential biocatalyst for the production of chiral epoxides.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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