Abraham Okki, Mwamula;Oh-Gyeong Kwon;Chanki Kwon;Yi Seul Kim;Young Ho Kim;Dong Woon Lee
The Plant Pathology Journal
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v.40
no.2
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pp.171-191
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2024
Identification of Helicotylenchus species is very challenging due to phenotypic plasticity and existence of cryptic species complexes. Recently, the use of rDNA barcodes has proven to be useful for identification of Helicotylenchus. Molecular markers are a quick diagnostic tool and are crucial for discriminating related species and resolving cryptic species complexes within this speciose genus. However, DNA barcoding is not an error-free approach. The public databases appear to be marred by incorrect sequences, arising from sequencing errors, mislabeling, and misidentifications. Herein, we provide a comprehensive analysis of the newly obtained, and published DNA sequences of Helicotylenchus, revealing the potential faults in the available DNA barcodes. A total of 97 sequences (25 nearly full-length 18S-rRNA, 12 partial 28S-rRNA, 16 partial internal transcribed spacer [ITS]-rRNA, and 44 partial cytochrome c oxidase subunit I [COI] gene sequences) were newly obtained in the present study. Phylogenetic relationships between species are given as inferred from the analyses of 103 sequences of 18S-rRNA, 469 sequences of 28S-rRNA, 183 sequences of ITS-rRNA, and 63 sequences of COI. Remarks on suggested corrections of published accessions in GenBank database are given. Additionally, COI gene sequences of H. dihystera, H. asiaticus and the contentious H. microlobus are provided herein for the first time. Similar to rDNA gene analyses, the COI sequences support the genetic distinctness and validity of H. microlobus. DNA barcodes from type material are needed for resolving the taxonomic status of the unresolved taxonomic groups within the genus.
Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.39
no.5
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pp.605-613
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2022
The genus Flavobacterium, type genus of the family Flavobacteriaceae and a member of the phylum Bacteriodetes includes gram-negative and yellow-pigmented rods. Those bacteria have been isolated from various environments of the earth. A yellow-pigmented, gram-negative rod was isolated from a pond in the campus of the Changwon University, Changwon, Kyeongnam and designated as strain B1. Strain B1 was further analyzed physiologically, biochemically and phylogenetically, and concluded to be a member of genus Flavobacterium. BLAST search of the 16S rRNA gene sequence of strain B1 shows homology no higher than 99.0% with those sequences of other bacteria. The major fatty acids of strain B1 are iso-C15:0 (19.6%), summed feature 3(C16:1 ω7c and/or C16:1 ω6c, 16.1%), iso-C17:0 3OH(10.2%), iso-C15:0 3OH(8.4%) and iso-C15:1 G(6.6%) showing significant differences in fatty acid compositions between strain B1 and the other known Flavobacterium species. DNA sequence of 16S rRNA gene of strain B1 was deposited in genbank under accession number OP060681.
The purpose of this study was to develop Peptoniphilus mikwangii-specific quantitative real-time polymerase chain reaction (qPCR) primers based on the 16S ribosomal RNA (16S rDNA) gene. The specificity of the primers was determined by conventional PCR using 29 strains of 27 oral bacterial species including P. mikwangii. The sensitivity of the primers was determined by qPCR using the purified genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$ (40 ng to 4 fg). The data showed that the qPCR primers (RTB134-F4/RTB134-R4) could detect P. mikwangii strains exclusively and as little as 40 fg of the genomic DNA of P. mikwangii KCOM $1628^T$. These results suggest that the developed qPCR primer pair can be useful for detecting P. mikwangii in epidemiological studies of oral bacterial infectious diseases.
A two-step broad-range PCR method detecting gram-negative bacteria at the level as low as 2 CFU was developed by using primers of GNFI and GNRI and then semi-nested primer of GNF2 and GNRI. The nucleotide sequences of the primers were determined based on l6S rRNA gene. The DNA fragments of 1173 bp and 169 bp were amplified in one-step PCRs with primer sets of GNFI-GNRI and GNF2-GNRl, respectively, using template DNA from seven strains of gram-negative bacteria including Escherichia coli, Enterobacter aerogenes, Klebsiella pneumoniae, Pseudomonas spp., and Acinetobacter baumaii but not from Achromobacter lyticus, Alca/igens faecalis, and five strains of gram-positive bacteria. DNA fragments of 180 bp were amplified from LTLT-pasteurized milk and UHf-pasteurized milk in the two-step PCR. The DNA fragments were amplified from LTLT-pasteurized milk which was added with Pseudomonas j/uorescens and subsequently heated at 65 $^{\circ}C$, 80 $^{\circ}C$, and 100 $^{\circ}C$ for 30 min but they were not amplified from the milk autoclaved at 121$^{\circ}C$ for 15 min. It was suggested in PCR that Pseudomonas fluorescens heated at 65 $^{\circ}C$ for 30 min in milk was more sensitive to DNase treatment than viable bacteria.
We have employed comparative RFL,P(Restriction Fragment Ixngth Pol~iniorphism) analysis and molecular phylogenetic techniques to investigate the diversity of uncultured microorganisms associated with the anaerobic PCP degradation in PCP-adapted enrichment cultures inoculated by samples from anaerobic cewage sludgc(Jangrim, Pusan) and leachate of landfill site(Kimhae). 16s rDNA cloncs were obtairted by PCR amplification of mixed population DNAs extracted directly from the nonactive and active stage ol each PCP-adapted culture. After three rounds of comparative RFLP analyses. two RFLP types. designated as Ala and Hld, were found prevalent and common in both active stage samples. Thc analysis of phylogenctic diversity bawd on the 5'-terminal 180 nt of sequences from whole clones of the Ala and Bld RFLP types showed close similarity among themselves. In case of Bld clones, 7XQ of them shared identical sequences. Thcse resuliq suggest that the clones of both RFLP types wcre originated from highly affiliated microorganisms which are e~iriched as a result of metabolic activity to PCP. The full-length 16s rRNA sequence of each representative clone from both RFLP types was determined. and an Ala clone w i n found to he related to Clo.strrdiurn ulfutzac~(Genk~ank No. Z69203) and a Bld clone to Thermobacteroides proteolyticus(Genbank No. X09335), with sequence similarities of 89%' and 97%. respectively.
Background: Tetracycline is an antibiotic widely used for the treatment of Helicobacter pylori infection, but its effectiveness is decreasing due to increasing bacterial resistance. The aim of this study was to investigate the occurrence of 16S rRNA mutations associated with resistance or reduced susceptibility to tetracycline ofHelicobacter pylori by real-time PCR (RT-PCR) assays from culture. Materials and Methods: Tetracycline susceptibility and minimal inhibition concentration (MIC) was determined by the Epsilometer test (Etest) method. A LightCycler assay developed to detect these mutations was applied to DNA extracted from culture. The 16S rRNA of these isolates was sequenced and resistance-associated mutations were identified. From 104 isolates of H. pylori examined, 11 showed resistance to tetracycline. Results: LightCycler assay was applied to DNA extracted from 11 tetracycline-susceptible and 11 tetracycline resistance H. pylori isolates. In our study the sequencing of the H. pylori wild types in 16 s rRNA gene were AGA 926-928 with MIC (0.016 to $0.5{\mu}g/ml$), while the sequencing and MIC for resistant were GGA and AGC, (0.75 to $1.5{\mu}g/ml$), respectively. Also we found a novel mutation in 2 strains with $84^{\circ}C$ as their melting temperatures and exhibition of an A939C mutation. Conclusions: We conclude that real-time PCR is an excellent method for determination of H. pylori tetracycline resistance related mutations that could be used directly on biopsy specimens.
Culture-dependent ARDRA and culture-independent DGGE were employed to investigate the bacterial community associated with the marine sponge Halichondria panicea collected from Jeju Island. A total of 120 bacterial strains associated with the sponge were cultivated using modified Zobell and Marine agar media. PCR amplicons of the 16S rRNA gene from the bacterial strains were digested with the restriction enzymes HaeIII and MspI, and then assigned into different groups according to their restriction patterns. The 16S rRNA gene sequences derived from ARDRA patterns showed more than 96% similarities compared with known bacterial species, and the isolates belonged to four classes, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Bacteroidetes, and Firmicutes, of which Alphaproteobacteria was dominant. DGGE fingerprinting of 16S rRNA genes amplified from the sponge-derived total gDNA showed 14 DGGE bands, and their sequences showed 100% similarities compared with the sequences available in GenBank. The sequences derived from DGGE bands revealed high similarity with the uncultured bacterial clones. DGGE revealed that bacterial community consisted of seven classes, including Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, Acidobacteria, Actinobacteira, Bacteroidetes, Cyanobacteria, and Chloroflexi. According to both the ARDRA and DGGE methods, three classes, Alphaproteobacteria, Gammaproteobacteria, and Bacteroidetes, were commonly found in H. panicea. However, overall bacterial community in the sponge differed depending on the analysis methods. Sponge showed more various bacterial community structures in culture independent method than in culture-dependent method.
In 2003 typical phytoplasma symptoms of witches' broom and flower malformation were observed on statice (Limonium sinuatum) plants grown at commercial greenhouses in Busan, South Korea. The DNA extracted from the infected leaves was amplified using universal primer pair of Pl/P6 derived from conserved 16S rRNA gene of Mollicutes giving the expected Polymerase chain reaction (PCR) product of 1.5 kb. In the nested PCR assays, the expected DNA fragment of 1.1 kb was amplified with the specific primer pair 16Fl/Rl that was designed on the basis of aster yellows (AY) phytoplasma 16S rDNA sequences. The 1.1 kb PCR products were cloned and nucleotide sequences were determined. The sequences were identical to that of Onion yellows OY phytoplasma (GenBank accession no. D12569) isolated from Onion in Japan. Electron microscopy of thin sections of leaf veins showed phytoplasma bodies in the phloem. Statice witches' broom symptom occurred on statice in commercial greenhouses in Korea was confirmed as infection of AY phytoplasma by transmission electron microscopy observation, and by determination of 16S rRNA gene sequences of phytoplasma.
Separate protocols are commonly used to prepare plasmid DNA, chromosomal DNA, or total RNA from E. coli cells. Various methods for the rapid preparation of plasmid DNA have been developed previously, but the preparation of the chromosomal DNA and total RNA are usually laborious. We report here a simple, fast, reliable, and cost-effective method to extract total nucleic acids from E. coli by direct lysis of the cells with phenol. Five distinct and sharp bands, which correspond to chromosomal DNA, plasmid DNA, 23S rRNA, 16S rRNA, and a mixture of small RNA, were observed when analyzing the prepared total nucleic acids on a regular 1-2% agarose gel. The simple and high-quality preparation of the total nucleic acids in a singe tube allowed us to rapidly screen the recombinant plasmid, as well as to simultaneously monitor the change of the plasmid copy number and rRNA levels during the growth of E. coli in the liquid medium.
Murine mycoplasmosis, caused by Mycoplasma (M.) pulmonis, is a prominent disease in rodent animals. The aim of this study was to develop a sensitive and specific PCR assay to detect M. pulmonis in animals and to assess the suitability of this assay for the detection of mycoplasmal infection in rats experimentally infected with M. pulmonis. A new PCR assay using the M. pulmonis-specific primer pairs MPul-F and MPul-R was developed. The primers and probe for the assay were designed from regions in the 16S rRNA gene that are unique to M. pulmonis. The novel PCR assay was very specific and sensitive for M. pulmonis, detecting the equivalent of 5 pg of target template DNA. It detected only M. pulmonis and no other Mycoplasma species or other bacterial species. The newly developed PCR assay also effectively detected M. pulmonis infection in rats. These results suggest that this PCR assay using M. pulmonis-specific primer pairs of MPul-F and MPul-R will be useful and effective for monitoring M. pulmonis infection in animals.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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