Proceedings of the Korean Society of Fisheries Technology Conference
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2000.05a
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pp.530-530
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2000
The host defense system or immune system of all modern animals has their roots in very ancient organisms. After analyzing literature data concerning properties of invertebrates and vertebrates lectins we suggest that mechanism of mannans recognition may exist in marine invertebrates, as a universal mechanism for homeostasis maintenance and host defense, and mannan-binding lectins family of vertebrates has ancient precursor, as was shown for another S-type lectins family. We carried out the screening of mannan-binding type lectin among different species of echinoderms inhabiting in Piter the Grate Bay, the sea of Japan. As a result, the C-type lectins (SJL-32) specific for high mannose glycans was isolated from the coelomic plasma of the sea cucumbers Stichopus japonicus by ion-exchange chromatography on a DEAE-Toyopearl 650M, affinity chromatography on a mannan-Sepharose 6B and gel filtration on a Sephacryl S-200. SJL-32 is homodimer with molecular mass about 32 kDa on SDS-PAGE under non-reducing conditions. Protein part of the lectin has high conteins Asn, Glu, Ser. Hemagglutination of trypsin-treated O blood group human erythrocytes by SJL-32 was competitively inhibited by high-branched -D-mannan composed of -1,2 and -1,6 linked D-mannopyranose residues. In contrast, a variety of mono-, oligo-, and polysaccharides composed of residues of galactose and fucose showed absence or little inhibitory activities. The lectin activity strong depends on Ca2+ concentration, temperature and pH. Monospecific polyclonal antibodies were obtained to the lectin. As was shown by ELISA assay, antibodies to SJL-32 cross-reacted with human serum mannan-binding lectin. This data allows making conclusion about common antigenic determinants and structural homology of both lectins. In our opinion, SJL-32 belongs to evolutionary high conservative mannan-binding lectins (MBLs) family and takes part in the host defense against pathogenic microorganisms.
Subolesin (4D8), the ortholog of insect akirins, is a highly conserved protective antigen and thus has the potential for development of a broad-spectrum vaccine against ticks and mosquitoes. To date, no protective antigens have been characterized nor tested as candidate vaccines against Dermacentor silvarum bites and transmission of associated pathogens. In this study, we cloned the open reading frame (ORF) of D. silvarum 4D8 cDNA (Ds4D8), which consisted of 498 bp encoding 165 amino acid residues. The results of sequence alignments and phylogenetic analysis demonstrated that D. silvarum 4D8 (Ds4D8) is highly conserved showing more than 81% identity of amino acid sequences with those of other hard ticks. Additionally, Ds4D8 containing restriction sites was ligated into the pET-32(a+) expression vector and the recombinant plasmid was transformed into Escherichia coli rosetta. The recombinant Ds4D8 (rDs4D8) was induced by isopropyl ${\beta}$-D-thiogalactopyranoside (IPTG) and purified using Ni affinity chromatography. The SDS-PAGE results showed that the molecular weight of rDs4D8 was 40 kDa, which was consistent with the expected molecular mass considering 22 kDa histidine-tagged thioredoxin (TRX) protein from the expression vector. Western blot results showed that rabbit anti-D. silvarum serum recognized the expressed rDs4D8, suggesting an immune response against rDs4D8. These results provided the basis for developing a candidate vaccine against D. silvarum ticks and transmission of associated pathogens.
Fu, Yao Yao;Yu, Hong Shan;Tang, Si Hui;Hu, Xiang Chun;Wang, Yuan Hao;Liu, Bing;Yu, Chen Xu;Jin, Feng Xie
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.20
no.6
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pp.1011-1017
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2010
A novel dioscin-glycosidase that specifically hydrolyzes multi-glycosides, such as 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-rhamnoside, 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}2$)-rhamnoside, 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-arabinoside, and ${\beta}$-D-glucoside, on diosgenin was isolated from the Absidia sp.d38 strain, purified, and characterized. The molecular mass of the new dioscin-glycosidase is about 55 kDa based on SDS-PAGE. The dioscin-glycosidase gradually hydrolyzes either 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-Rha or 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}2$)-Rha from dioscin into 3-O-${\alpha}$-L-Rha-${\beta}$-D-Glc-diosgenin, further rapidly hydrolyzes the other ${\alpha}$-L-Rha from 3-O-${\alpha}$-L-Rha-${\beta}$-D-Glc-diosgenin into the main intermediate products of 3-O-${\beta}$-D-Glc-diosgenin, and subsequently hydrolyzes these intermediate products into aglycone as the final product. The enzyme also gradually hydrolyzes 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-arabinoside, 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}2$)-rhamnoside, and ${\beta}$-D-glucoside from [3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-Ara, 3-O-${\alpha}$-L-($1{\to}4$)-Rha]-${\beta}$-D-Glc-diosgenin into diosgenin as the final product, exhibiting significant differences from previously reported glycosidases. The optimal temperature and pH for the new dioscin-glycosidase is $40^{\circ}C$ and 5.0, respectively. Whereas the activity of the new dioscin-glycosidase was not affected by $Na^+$, $K^+$, and $Mg^{2+}$ ions, it was significantly inhibited by $Cu^{2+}$ and $Hg^{2+}$ ions, and slightly affected by $Ca^{2+}$ ions.
In this study, we characterized the physical form of allergenic Cry j 1 in the urban atmosphere. Through an immunofluorescence antibody method, we showed that allergenic Cry j 1 exists as fine particles (${\leq}1.1{\mu}m$). To determine Cry j 1 concentrations and its particle size distribution, we used the ELISA method to confirm that most Cry j 1 exists as fine particles in the urban atmosphere and is found at high concentrations on fine day next to rainy day. Furthermore, we evaluated Cry j 1 denaturation by using the Biacore J system based on the surface plasmon resonence (SPR) principle and sodium dodecyl sulfate polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE). We showed that the dissociation constant ($K_D$) of Cry j 1 that has been exposed to urban polluted air is lower ($1.76{\times}10^{-14}$ M) than that of Cry j 1 ($1.32{\times}10^{-9}-3.37{\times}10^{-9}$ M) of original pollen grains that has not been exposed to air pollutants. Cry j 1 turns into low molecular weight proteins by reacting with various acidic solutions. In sum, we showed that allergenic Cry j 1 exists as fine particles that can deposit in the lower respiratory tract. This finding clarifies the relationship between Japanese cedar pollinosis and air pollutants.
To elucidate enzymatic properties of $\alpha$-galactosidases (EC3, 2, 1, 22) from germinated soybean and Aspergillus niger changes in the enzyme activities and oligosaccharide contents during germination of soybean were determined and $\alpha$-galactosidases from germinated soybean and wheat bran culture of Aspergillus niger were purified by ammonium sulfate fractionation, ion exchange chromatography and gel filtration. Their chemical and enzymatic properties were investigated and the results obtained were summarized as follows : 1. $\alpha$-Galactosidase activity of soybean was maximized when it was germinated at $25^{\circ}C$ for 120 hours. And raffinose and stachyose in soybean were decomposed completely after 96 hours and 120 hours of germination, respectively. 2. The highest level of $\alpha$-Galactosidase activity was obtained when Aspergillus niger was grown on wheat bran medium at $30^{\circ}C$ for 96 hours. 3. Soybean $\alpha$-galactosidase was purified by 6.6 fold by ammonium slufate fractionation, ion exchange chromatography on DEAE-Cellulose and Sephadex A-50., and gel filtration on Sephadex G-150. Its specific activity was 825 units/mg protein and the yield was 2.5% of the total activity of crude extracts. 4. Aspergillus niger $\alpha$-galactosidase was purified by 23.7 fold. Its specific activity was 1,229 units/mg protein and the yield was 14% of the total activity of wheat bran culture. 5. The purified $\alpha$-galactosidases of soybean and Aspergillus niger were found to be homogeneous by polyacrylamide gel electrophoresis and by HPLC. 6. Chemical properties of the purified $\alpha$-galactosidases were : 1) The soybean $\alpha$-galactosidase was monomeric and its molecular weight was estimated to be 30,000 by SDS-PAGE whereas the Aspergillus niger $\alpha$-galactosidase was a tetrameric glycoprotein which consisted of identical subunits with molecular weight of 28,000 each.
Ben Abdelmalek-Khedher, Imen;Urdad, Maria Camino;Limam, Ferid;Schmitter, Jean Marie;Marzouki, M. Nejib;Bressollier, Philippe
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.18
no.9
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pp.1555-1563
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2008
A novel $\alpha$-amylase ($\alpha$-1,4-$\alpha$-D-glucan glucanohydrolase, E.C. 3.2.1.1), ScAmy43, was found in the culture medium of the phytopathogenic fungus Sclerotinia sclerotiorum grown on oats flour. Purified to homogeneity, ScAmy43 appeared as a 43 kDa monomeric enzyme, as estimated by SDS-PAGE and Superdex 75 gel filtration. The MALDI peptide mass fingerprint of ScAmy43 tryptic digest as well as internal sequence analyses indicate that the enzyme has an original primary structure when compared with other fungal a-amylases. However, the sequence of the 12 N-terminal residues is homologous with those of Aspergillus awamori and Aspergillus kawachii amylases, suggesting that the new enzyme belongs to the same GH13 glycosyl hydrolase family. Assayed with soluble starch as substrate, this enzyme displayed optimal activity at pH 4 and $55^{\circ}C$ with an apparent $K_m$ value of 1.66 mg/ml and $V_{max}$ of 0.1${\mu}mol$glucose $min^{-1}$$ml^{-1}$. ScAmy43 activity was strongly inhibited by $Cu^{2+}$, $Mn^{2+}$, and $Ba^{2+}$, moderately by $Fe^{2+}$, and was only weakly affected by $Ca^{2+}$ addition. However, since EDTA and EGTA did not inhibit ScAmy43 activity, this enzyme is probably not a metalloprotein. DTT and $\beta$-mercaptoethanol strongly increased the enzyme activity. Starting with soluble starch as substrate, the end products were mainly maltotriose, suggesting for this enzyme an endo action.
The entomopathogenic bacterium Bacillus thuringiensis is the most widely used biopesticide. Insecticidal proteins, coded by genes located in plasmids, form typical parasporal, crystalline inclusions during sporulation. We isolated a Bacillus thuringiensis strain having insecticidal activity against larvae of the house fly (M. domestica) from the soils at a pig farm in Korea, and named it Bacillus thuringiensis SM. The culture filtrate from Bacillus thuringiensis SM showed strong lethality (83.3%) against M. domestica larvae. The parasporal crystal is enclosed within the spores' outermost envelope, as determined by transmission electron microscopy, and exhibited a bipyramidal form. The crystal proteins of strain SM consisted of five proteins with molecular weights of approximately ~130, ~80, ~68, ~42, and ~27 kDa on a 10% SDS-PAGE (major band, a size characteristic of Cry protein). Examination of antibiotic resistance revealed that the strain SM showed multiple resistant. The strain SM had at least three different plasmids with sizes of 6.6, 9.3, and 54 kb. Polymerase chain reactions (PCRs) revealed the presence of cry1, cry4A2, and cry11A1 genes in the strain SM. The cry1 gene profile of the strain SM appeared in the three respective products of 487 bp [cry1A(c)], 414 bp [cry1D], and 238 bp [cry1A(b)]. However, the strain SM has not shown the cry4A2 md cry11A1 genes. In in vivo toxicity assays, the strain SM showed high toxicity on fly larvae (M. domestic) [with $LC_{50}$ of 4.2 mg/ml, $LC_{90}$ of 8.2 mg/ml].
Two ribosome-inactivating proteins, PRIP 1 and PRIP 2 have been isolated from the leaves of $Cucurbita\;moschata\;D_{UCHESNE}$. Crude extracts were purified through ammonium sulfate precipitation and column chromatography using DE-52 cellulose, S-Sepharose, FPLC Suprose 12 HR and FPLC Mono-S. The molecular weights of PRIP 1 and PRIP 2 were 31,000 and 30,500, respectively. PRIP 2 was thermostabe and maintained its activity even after the incubation of the protein at $50^{\circ}C$ for 30 min. In a cell free in vitro translation system using rabbit reticulocyte lysate, protein synthesis was inhibited by the addition of PRIP 1 and PRIP 2. The $IC_{50}$ of PRIP 1 and PRIP 2 were 0.82 nM and 0.79 nM, respectively. The comparison of N-terminal amino acid sequences of the PRIP 1 and PRIP 2 with known RIPs revealed that PRIP 1 shows sequence similarity with Luffin B from Luffa cylindrica and Trichokirin from Trichosanthes kirilowii Maximowicz and PRH) 2 has sequence similarity with Momordin II and MAP 30 from Momordica charantia.
This study describes the isolation of a Toxocara canis species-specific excretory-secretory(ES) antigen and the development of an enzyme-linked immunosorbent assay(ELISA) based on this antigen. Analysis of the ES antigens of T. canis, Toxocara vitulorum, Ascaris lumbricoides and Necator americanus larval antigen was performed by SDS-PAGE followed by western blotting. A 57 kDa T. canis-specific antibody fraction(TcES-57) was identified by western blotting and labelling with anti-Toxocara antibodies(from experimental rabbits and human patients) and tracing with anti-human or anti-rabbit peroxidase conjugate. No protein fraction of 57 kDa was detected in ES or larval antigens collected from T. canis, T. vitulorum, A. lumbricoides and N. americanus. Using TcES-57, a specific anti-serum was produced in rabbits and a double sandwich ELISA was developed. This test was validated using known seropositive sera from toxocariasis patients, sera from A. lumbricoides or N. americanus patients, and 50 serum samples from cats. These tests revealed that TcES-57 antigen is specific to T. canis infection and does not cross react with sera of other related infections. Thus, ELISA based on TcES-57 antigen was proven to be an effective tool in the diagnosis of toxocariasis and studies on the role of T. canis in the epidemiology of human toxocariasis.
Thymidylate synthase (TS) catalyzes the transfer of a methyl group from methylenetetrahydrofolate to dUMP to form dTMP. It is a primary target in the chemotherapy of colorectal cancers and some other neoplasms. In order to obtain pure protein for analysis of structure and biological function, an expression vector TS-pET28b (+) was constructed by inserting wild-type human thymidylate synthase (hTS) cDNA into pET28b (+). Then an expression strain was selected after transformation of the recombined plasmid into Rosetta (DE3). Fusion protein with His-tag was efficiently expressed in the form of inclusion bodies after IPTG induction and the content was approximately 40.0% of total bacteria proteins after optimizing expression conditions. When inclusion bodies were washed, dissolved and purified by Ni-NTA under denatured conditions, the purity was up to 90%. On SDS-PAGE and West-blotting, the protein band was found to match well with the predicted relative molecular mass-36kDa. Bioactivity was 0.1 U/mg. The results indicated that high-level expression of wild-type hTS cDNA can be achieved in prokaryotes with our novel method, facilitating research into related chemotherapy.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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