Herein, we cloned and expressed an endo-β-1,4-glucanase gene (celA1805) from Bacillus subtilis B111 in Escherichia coli. The recombinant celA1805 contains a glycosyl hydrolase (GH) family 8 domain and shared 76.8% identity with endo-1,4-β-glucanase from Bacillus sp. KSM-330. Results showed that the optimal pH and temperature of celA1805 were 6.0 and 50℃, respectively, and it was stable at pH 3-9 and temperature ≤50℃. Metal ions slightly affected enzyme activity, but chemical agents generally inhibited enzyme activity. Moreover, celA1805 showed a wide substrate specificity to CMC, barley β-glucan, lichenin, chitosan, PASC and avicel. The Km and Vmax values of celA1805 were 1.78 mg/ml and 50.09 µmol/min/mg. When incubated with cellooligosaccharides ranging from cellotriose to cellopentose, celA1805 mainly hydrolyzed cellotetrose (G4) and cellopentose (G5) to cellose (G2) and cellotriose (G3), but hardly hydrolyzed cellotriose. The concentrations of reducing sugars saccharified by celA1805 from wheat straw, rape straw, rice straw, peanut straw, and corn straw were increased by 0.21, 0.51, 0.26, 0.36, and 0.66 mg/ml, respectively. The results obtained in this study suggest potential applications of celA1805 in biomass saccharification.
Enzymatic deinking of office-waste paper was studied using crude cellulase and papain-hydrolyzed cellulase from Trichoderma reesei Rut C-30 in small-scale and mid-scale. The results were compared with deinkings using commercial enzyme(Novozym 342) and conventional chemical methods. Maximum brightness and freeness were obtained at 3 units/g Oven Dry Paper(ODP) of CMCase activity using crude cellulase in mid-scale deinking experiments. The deinked pulp had higher physical strength and brightness, and lower freeness and yield than the pulp deinked in small scale. In small scale deinking, maximum brightness and freeness were obtained at 2 unit/g ODP. Deinking by papain-hydrolyzed cellulase showed similar results with one by Novozym 342. It was better in brightness and freeness, but showed lower physical strength and yield, than the conventional deinking by sodium hydroxide. The ratio of endo-1,4-glucanase and exo-1,4-glucanase components in papain hydrolyzed cellulase from T. reesei Rut C-30 was similar to that of commercial enzyme, Novozym 342, implicating a successful application as a deinking enzyme.
이글은 다음과 같이 구성되어져 있다. preface 1) introduction 2) general information 3) folin protein determination 4) cellobiase assay 5) filter paper assay for saccharifying cellulase 6) carboxymethyl cellulase assay for endo-.betha.-1,4-glucanase 7) additional assay procedure for endoglucanase 8) evalutaiton of cellulase under process conditions 9) general remartks, references.
A highly thermostable ${\beta}-(1-4)-glucanase$ (NA23_08975) gene (fig) from Fervidobacterium islandicum AW-1, a native-feather degrading thermophilic eubacterium, was cloned and expressed in Escherichia coli. The recombinant FiG (rFiG) protein showed strong activity toward ${\beta}-{\small{D}}-glucan$ from barley (367.0 IU/mg), galactomannan (174.0 IU/mg), and 4-nitrophenyl-cellobioside (66.1 IU/mg), but relatively weak activity was observed with hydroxyethyl cellulose (5.3 IU/mg), carboxymethyl cellulose (2.4 IU/mg), and xylan from oat spelt (1.4 IU/mg). rFiG exhibited optimal activity at $90^{\circ}C$ and pH 5.0. In addition, this enzyme was extremely thermostable, showing a half-life of 113 h at $85^{\circ}C$. These results indicate that rFiG could be used for hydrolysis of cellulosic and hemicellulosic biomass substrates for biofuel production.
A lichenase gene (mt-lic) was identified for the first time through function-based screening of a soil metagenomic library. Its deduced amino acid sequence exhibited a high degree of homology with endo-${\beta}$-1,3-1,4-glucanase (having both lichenase and chitosanase activities), encoded by the bgc gene of Bacillus circulans WL-12. The recombinant lichenase overexpressed and purified from Escherichia coli was able to efficiently hydrolyze both barley ${\beta}$-glucan and lichenan. The enzyme showed maximal activity at a pH of 6.0 at $50^{\circ}C$, with Azo-barley-glucan as the substrate. The metal ions $Mn^{2+}$, $Mg^{2+}$, $Ca^{2+}$, and $Fe^{2+}$ enhanced the enzymatic activity, whereas the $Cu^{2+}$ and $Zn^{2+}$ ions inhibited the enzymatic activity. The $K_m$ and $V_{max}$ values of the purified lichenase were determined to be 0.45 mg/ml and 24.83 U/min/mg of protein, respectively.
Kim Ji-Young;Lim Chang-Soo;Kim Jae-Yong;Han Yeong-Hwan
Korean Journal of Microbiology
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v.40
no.3
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pp.230-231
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2004
The mycelia of Sparassis crispa DSMZ 5201 were cultivated at $24^{\circ}C$ for 15 days in yeast-malt extract-glucose broth (pH 4.0) and the filtrate was used as crude enzyme solution to determined the extracellular enzyme activity. The specific activity of $\alpha$-amylase was 44.27 unit/protein. The specific activities of protease, CMCase, $\beta$-glucosidase, chitinase, exo-$\beta$-l,4-glucanase were relatively high. However, a very little activity of xylanase was found.
Kim, Minseo;Lee, Aro;Truong, Hai An;Kang, Chon-Sik;Choi, Changhyun;Chung, Namhyun;Lee, Hojoung;Lee, Byung Cheon
Journal of Applied Biological Chemistry
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v.62
no.3
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pp.293-297
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2019
Leaf rust is the most widespread and destructive fungal disease, and outbreaks have always caused considerable losses in wheat yields. Thus, worldwide increases in wheat production depend on the development of leaf rust-resistant wheat varieties. In this study, we evaluated the resistance of forty Korean wheat cultivars to leaf rust at the seedling stage. Only two Korean wheats, Ol and Jonong, were resistant to leaf rust, whereas the remaining thirty-eight Korean wheats were susceptible to leaf rust. The Ol and Jonong varieties presented larger dry seed weights and higher antioxidant activity in response to leaf rust than the susceptible wheat varieties. No differences in ${\beta}$-1,3-glucanase activity or chlorophyll content between resistant and susceptible wheat varieties were observed. Overall, these results are important for the development of wheat varieties that are highly resistant to leaf rust and to understand the underlying mechanisms that confer leaf rust resistance.
The prcx.iuction of extracellular 1,4-${\beta}$-glucanase by Cellulomonas sp. CS1-1 on microcrystalline cellulose, sigmacell was maximal after 5-day cultivation as 280 units/mL, which was three times higher than the level produced on carboxymethyl cellulose. A carboxymethyl cellulase containing the carbohydrate of 8.2% was purified from the culture filtrate by successive procedures of column chromatographies. Purification factor was calculated as 22-folds with the specific carboxymethyl cellulase activity of 31.9 units/mg. The molecular weight and isoelectric point of the purified enzyme were 54,000 and pI 5.4, respectively. The optimal pH and temperature were 6.0 and $45^{\circ}C$, and the enzyme was stable between pH 6.5 and 7.5 and below $50^{\circ}C$. The estimated Km and Vmax were 10 mg/mL and $6.25{\mu}mol/min$ for carboxymethyl cellulose and 30.3 mg/mL and $2.85{\mu}mol/min$ for sigmacell, respectively. The enzyme was partially inhibited by $Ag^+$, $Zn^{+{+}}$, $Fe^{+{+}}$ and EDTA, while completely inhibited by $Cd^{+{+}}$ and $Hg^{+{+}}$ at 1 mM concentration.
Seo, Dong-Jun;Nguyen, Dang-Minh-Chanh;Song, Yong-Su;Jung, Woo-Jin
Journal of Microbiology and Biotechnology
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v.22
no.3
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pp.407-415
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2012
An endophytic bacterium, Bacillus thuringiensis GS1, was isolated from bracken (Pteridium aquilinum) and found to have maximal production of chitinase (4.3 units/ml) at 5 days after culture. This study investigated the ability of B. thuringiensis GS1 to induce resistance to Rhizoctonia solani KACC 40111 (RS) in cucumber plants. Chitinase activity was greatest in RS-treated plants at 4 days. ${\beta}$-1,3-Glucanase activity was highest in GS1-treated plants at 5 days. Guaiacol peroxidase (GPOD) activity increased continuously in all treated plants for 5 days. Ascorbate peroxidase (APX) activity in RS-treated plants was increased 1.5-fold compared with the control at 4 days. Polyphenol oxidase (PPO) activity in RS-treated plants was increased 1.5-fold compared with the control at 3 days. At 5 days after treatment, activity staining revealed three bands with chitinase activity (Ch1, Ch2, and Ch3) on SDS-PAGE of cucumber plants treated with GS1+RS, whereas only one band was observed for RS-treated plants (Ch2). One GPOD isozyme (Gp1) was also observed in response to treatment with RS and GS1+RS at 4 days. One APX band (Ap2) was present on the native-PAGE gel of the control, and GS1- and GS1+RS-treated plants at 1 day. PPO bands (Po1 and Po2) from RS- and GS1+RS-treated plants were stronger than in the control and GS1-treated plants upon native-PAGE at 5 days. Taken together, these results indicate that the induction of PR proteins and defense-related enzymes by B. thuringiensis GS1 might have suppressed the damping-off caused by R. solani KACC 40111 in cucumber plants.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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