A bacterial strain KP-364 producing extracellular keratinolytic protease was isolated from the soil of the poultry fac-tory. It was identified as Pseudomonas sp. based on its morphological and physiological characteristics, The optimal culture conditions for the production of keratinolytic protease by Pseudomonas sp. KP-364 were investigated. The composition of optimal medium for the keratinolytic protease was 2.0% glucose, 0.5% soybean meal. 0.5% $NaNO_3$ and 0.2% KCI Optimal initial pH for production of Keratinolytic protease production were 6.5 and $37^{\circ}C$ respec- tively. The keratinolytic protease production reached a maximum of 1,270 U/ml/hr after 48 hours cultivation under the optimal culture conditions.
Decomposition rate of organic matiter in the mud flat of Sunchon Bay was estimated. Physicochemical parameters, cellulose degradation rate. distribution of heterotrophic bacteria, and extracellular enzymatic activities were measured from August 1997 to July 1998. Soil temperatures, water contents, concentration of $PO_4$-P and organic matter were -1-~$30^{\circ}C$, 42.1-53.1%, 0.0779-0.1961 mgig and 1.99-7.64%, respectively. Decomposition rate of cellulose film ranged from 7.7 to 100%imonth, high in summer and low in winter. The number of heterotrophic bacteria ranged from $0.87{\times}10^6 to 3.6{\times}10^7 $CUFsIg dq soil. Enzymatic activities of phosphatase, $\alpha$-D-gluEosidase, $\beta$-D-glucosidase and cellobiohydrolase, which were measured as decomposition rate of methylumbelliferyl(MLiF)-substrate, were 152.23-1779.80 nMIhr, 2.67-202.18 nM/hr, 5.03-258.26 M h r and 3.42-63.07 nM/hr, respectively Cellulose degradaaon rate and extracellular extracellular enzymatic activities were conelated with each other, and showed high correlation coefticiency with soil temperature.
Hyun-Soo Roh;Min-Young Kwon;Sol-Bi Kim;Jae-Eun Cho;Song-Ih Han
Journal of the Korean Applied Science and Technology
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v.40
no.5
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pp.1126-1135
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2023
Nine microbial strains were isolated from the byproduct of ginseng processing and field of ginseng cultivation. Two strains among them were confirmed. Phylogenetic analysis of these 𝛽-Glucosidase strains confirmed that strain GYP-1 belongs to the Rhodotorula and strain GYP-3-3 belong to genus Brachybacterium. Rhodotorula sp. GYP-1 was finally selected due to its high biomass production. The 𝛽-Glucosidase activity of Rhodotorula sp. GPY-1 was assessed at 30 ℃, and Higher than 70% of the enzyme activity was maintained at the temperature range of 20-40℃. Although the optimum pH for the highest enzyme activity was pH 5.0, the enzyme was stable throughout the pH range of 5.0-8.0. In addition, Rhodotorula sp. demonstrated antifungal activity against the ginseng root rot disease caused by Botrytis.
Actinobacteria tolerating extreme conditions can be a rich source of bioactive compounds and enzymes. In this study filamentous actinobacteria were isolated from soils of Ulleung Island, and their physiological properties were examined. Soil samples were collected, serially diluted and spread on various agar media. The average viable counts of total bacteria were $1.28{\times}10^7CFU/g$ for soil sample 1 (ULS1) and $2.05{\times}10^7CFU/g$ for soil sample 2 (ULS2). As a result, 34 strains of actinobacteria were isolated and assigned to the genera Streptomyces (16 strains), Isoptericola (5 strains), Rhodococcus (4 strains), Agromyces (3 strains), Micrococcus (2 strains), Arthrobacter (1 strain), Williamsia (1 strain), Microbacterium (1 strain), and Oerskovia (1 strain) based on 16S rRNA gene sequence analysis. Enzyme activity and plant growth promoting potential were tested for representative isolates. Multiple strains of Streptomyces degraded starch, casein and Tween 80. As for plant growth promoting potential, strains of Oerskovia, Williamsia, Isoptericola, and Streptomyces solubilized phosphate, and those of Agromyces, Oerskovia, Micrococcus, Rhodococcus, Streptomyces, and Isoptericola produced 3-indole-acetic acid (IAA), respectively. Selected strains of Streptomyces exhibited strong antagonistic activity against Staphylococcus aureus and Bacillus subtilis as well as Candida albicans. This study confirms that actinobacteria from Ulleung Island can be a good source of novel bioactive compounds.
A thermophilic soil isolate Bacillus sp. Y-127 was selected for the production of thermostable amylase. The strain was used for the enzyme production and the thermostable amylase was characterized. The optimum cultural conditions for the enzyme production were 6$0^{\circ}C$ at pH 7.0 for 32 hours using a mineral medium containing 2% soluble starch and 0.2% yeast extract. The extra-cellular enzyme was purified about 123-folds with about 6% recovery. The purified enzyme was stable at pH between 4.0 and 7.0, and temperature up to 6$0^{\circ}C$.
Bacillus sp. SMMJ-2 producing extracellular keratinolytic protease was isolated from the Swedish soils. The optimal culture conditions for production of keratinolytic protease by Bacillus sp. SMMJ-2 were investigated. The optimal medium compositions for the keratinolytic protease production were 0.7% $K_2HPO_4$, 0.2% $KH_2PO_4$, 1.0% fructose,1.2% soybean meal (roasted), and 0.01% $Na_2CO_3$. Optimal initial pH and temperature for the production of keratinolytic protease were 7.0 and 30$^{\circ}C$, respectively. The keratinolytic protease production showed a maximum of 105 units/ml/min after 72 hours cultivation under the optimal culture conditions.
A strain J-19 was isolated from soil, produced lipase which has resistant against alkali and linear alkylbenzene sulfonate. The strain was identified as Pseudornonns sp.. The enzyme was purified by ammonium sulfate precipitation, DEAE-Sephadex and Sephadex G- 100 column chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 35 unit/mg protein and the yield of enzyme activity was 17%. The purified enzyme showed a single band on polyacrylamide disc gel electrophoresis. Mo1ecul;tr weight of the purified enzyme was estimated about 36,000 by Sephadex GI00 gel filtration and SDS-polyacrylarnide gel electrophoresis. The optimum pH and temperature were pH 10.0 and $30^{\circ}C$, respectively. Activity of the purified enzyme was increased 2-fold by the addition of 0.1% linear alkylbenzene sulfonate and 2.5- fold by the addition of 0.05% Tide. This enzyme remained stable from pH 8.0 to 10.0 and stable up to $40^{\circ}C$.
Bacillus subtilis K-4-3, which produces considerable amount of $\beta$-glucanase was selected among extracellular $\beta$-glucanase-producing bacteria isolated from soil. $\beta$-glucanase was purified by ammonium sulfate fractionation, Sephadex G-100 gel filtration and DEAE-sephacel ion exchange chromatography. The purified enzyme revealed a single band by polyacrylamide gel electrophoresis and SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. Its molecular weight was estimated to be 17000 dalton by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The optimum pH and temperature of the purified $\beta$-glucanase were 7.0 and $50^{\circ}C$, respectively. The enzyme was strongly inhibited by 1.0mM of $Fe^{3+}$, and activated by 1.0mm of $Li^{}47+$. The absence of glucose after thin layer chromatography of reaction products revealed that the purified enzyme contains no cellobiase or laminarinbiase activity. The loberation of ki, tri-and tetra-saccharide as reaction products can be explained by endoaction of the enzyme.
Aspergillus oryzae producing high proteolytic enzyme was isolated from soybean koji and named tentatively A. oryzae O-1. A. oryzae U-1 was obtained by mutation of A. oryzae O-1 with ultraviolet (UV)-irradiation and produced 14 times higher pretense activity compared with A. oryzae O-1. A. oryzae E-1 was acquired by treatment of A. oryzae U-1 with 0.5 M ethylmethanesulfonate (EMS) for 6 min at 3$0^{\circ}C$ and produced 39 times higher proteolytic activity than A. oryzae O-1. With protoplast fusion between A. oryzae O-1 and A. oryzee E-1 in the presence of polyethylenegylcol (PEG)-CaCl$_2$, proteolytic activity was increased to 82 times compared to A. oryzae O-1, and the fusant was named A. oryzae PF. The activities of the cultures containing proteolytic enzymes produced by the strains were determined to be 0.23 U/$m\ell$ for A. oryzae O-1, 3.29 U/$m\ell$ for A. oryzae U-1, 8.91 U/$m\ell$ for A. oryzae E-1, and 19.0 U/$m\ell$ for A. oryzae PF.
An alkaline protease producing microorganism was isolated from soil and identified as Streptomyces griseus HC-1141. The optimum pH and temperature for the purified enzyme activity were 8.0 and $60^{\circ}C$, respectively. The enzyme was relatively stable in the pH range of 7.0-9.0 and at the temperature below $60^{\circ}C$. The activity of purified enzyme was inhibited by $Hg^{2+}$, $Cu^{2+}$, $Zn^{2+}$, $Ba^{2+}$ and $Fe^{2+}$, whereas activated by $Mn^{2+}$ and $Ca^{2+}$. $\varepsilon$-Amino caproic acid, 2,4-dinitrophenol and iodine did not show inhibitory effect on the activity of alkaline protease, but p-chloromercuribenzoic acid, ethylendiaminetetraacetic acid showed inhibitory effect on the enzyme activity. These result suggested that the protease was metalloenzyme, and require a reactive SH group for the activity. The reaction of this enzyme follows typical Michaelis-Menten kinetics with the $K_m$ value of $2.229{\times}10^{-4}$M and the $V_{max}$ of $46.08 {\mu}$g/min for casein. The activation energy for the alkaline protease calculated by Arrhenius equation was 3.643 kcal/mol. This enzyme hydrolyzed casein more rapidly than the hemoglobin and egg albumin.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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