DNA methylation seems to play an important regulatory role in gene expression and cell differentiation during postimplantation embryonic development. However, the significance of DNA methylation which is maintained by the DNA MTase during preimplantation embryonic development, is not fully understood. In order to study the role of DNA methylation in the preimplantation embryos, the expression of DNA MTase transcripts was monitored in the oocytes and preimplantation embryos. The mRNA of DNA MTase was detected in the oocytes and pleimplantation embryos. The relative mRNA levels of DNA MTase were high from the stages of GV-oocytes and pronuclear embryos, and thereafter decreased gradually. By the treatment of $\alpha$-amanitin, it was confirmed that the transcripts presented in pronuclear embryos was derived from the maternal genome. The presence of transcripts of DNA MTase in the oocytes and pronuclear embryos suggests that the maintenance of DNA methylation may be necessary and seems to play an important role in gene expression and cell differentiation during preimplantation embryonic develop-ment in mouse.
Objective: The aim of this study was to compare the efficacy of slow freezing with vitrification method for cryopreservation of mouse pronuclear stage embryos. Methods: Mouse pronuclear embryos obtained from superovulated mice and classified into 2 groups of slow freezing and vitrification. Slow freezing solution consisted of 1.5 M PROH, 0.1 M sucrose, while vitrification solution consisted of 40% ethylene glycol, 18% Ficoll and 0.5 M sucrose diluted in Dulbecco's phosphate-buffered saline supplemented with 10% SSS. Recovery and survival rates after thawing and development rates to hatching balstocyst stage were compared between two groups. Results: After freezing and thawing, recovery rate of slow freezing group was 93.8%, whereas vitrification group was 66.5% (p<0.01). Survival rate of recovered embryos were similar between two groups as 83.2% in slow freezing and 87.6% in vitrification. Embryo development rates to 2-cell stage after 24 hrs (77.0% vs 59.1%), 4-cell after 48 hrs (72.6% vs 53.3%), blastocyst after 96 hrs (53.1% vs 40.1%) of thawing were significantly higher in vitrification group than those of slow freezing group, respectively. Conclusion: The vitrification method may provide better developmental competence of frozen-thawed embryos than that of slow freezing method for cryopreservation of mouse pronuclear stage embryos.
Kim, Myo-Kyung;Lee, Sun-Hee;Choi, Su-Jin;Choi, Hye-Won;Park, Dong-Wook;Lim, Chun-Kyu;Song, In-Ok;Lee, Hyoung-Song
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.37
no.4
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pp.329-338
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2010
Objective: This study was carried out to know whether cryopreservation of sibling 2PN zygotes could increase the cumulative delivery rates in the patients who had less than 10 fertilized zygotes. Methods: A retrospective analysis was performed in 138 in vitro fertilization-embryo transfer (IVF-ET) cycles with less than 10 fertilized zygotes during January 2003 to December 2007 in Cheil General Hospital. These cycles were divided into two groups. In Group I (n=86), all fertilized embryos were cultured to transfer on day 3 without cryopreserved embryos at the 2PN stage. In Group II (n=52), among fertilized zygotes, some sibling zygotes were frozen at the 2PN stage, the remainder were cultured to transfer. Clinical outcomes in fresh ET cycles and cumulative ongoing pregnancy rates after subsequent frozen-thawed (FT)-ET cycles were compared. Results: There were no significant differences in female mean age, number of retrieved oocytes and total fertilized embryos between two groups, Number of cultured embryos was significantly lower in Group II ($5.2{\pm}0.5$) than in Group I ($8.4{\pm}0.7$) (p<0.01). Also, number of transferred embryos was significantly lower in Group II ($3.3{\pm}0.6$) compared with Group I ($3.6{\pm}0.6$) (p<0.01). ${\beta}$-hCG positive rates and delivery rates (51.2 vs. 46.2 % and 41.9 vs. 34.6 %, respectively) after fresh ET were slightly higher in Group I than in Group II. However, the differences were not statistically significant. Also, the cumulative delivery rates after subsequent FT-ET cycles were not significantly different between Group I (48.8%) and Group II (50.0%). Conclusion: This study showed that cryopreservation of sibling 2PN zygotes from patients who had less than 10 zygotes in the fresh ET cycles did not increase cumulative delivery outcomes. But, it could provide an alternative choice for patients due to offering more chance for embryo transfers if pregnancy was failed in fresh IVF-ET cycles.
To investigate the origin and action mechanism of cytoplasmic factors as regulators of morphogenesis, the embryonic development, RNA synthesis and protein phosphorylation were examined in reconstituted embryos. A half of 1-cell mouse embryo with both pronuclei was electrofused with the enucleated cytoplasm of 1- or 2-cell embryos which were cultured for 24 hrs from post 20 hrs hCG in CZB with or without cycloheximide (CHX, an inhibitor of protein synthesis; P+P-CHX group), genistein (Gen, an inhibitor of tyrosine protein kinase; P+2-Gen group) and 6-dimethylaminopurine (6-DMAP, an inhibitor of serine-threonine protein kinase; P+2-DMAP group), and co-cultured with Vero cells for 5 days. And their development, cell numbers at compaction, [5, 6-$^3$H]-uridine incorporation into RNA and the pattern of protein phosphorylation after labeling of [$^{32}$ P] orthophosphate were compared with that of the reconstituted embryos such as P+2 or P+P (control group). Embryonic development and the time of RNA synthesis in P+P-CHX were similar to those in P+P. But the time and the cell stages of embryonic compaction in P+P-CHX were similar to those in P+2. The compaction was initiated at 4-cell in P+2 and P+2-Gen, but at 8-cell in P+P and P+2-DMAP. On a two-dimensional gel electrophoresis, phosphorylation of 80KD and 110KD proteins were inhibited after 3 hrs of reconstruction in the embryo of P+2-DMAP when compared with that of P+2 and P+2-Gen. These results suggest that protein synthesis between 1- and 2-cell stage affects the timing of embryonic genome activation, and that cytoplasmic factors derived from oocyte or their modification regulates the time schedule of embryonic compaction in mouse. Also, serine-threonine protein kinase has an important role on the regulation of compaction.
목 적: 인간의 배아줄기세포는 전분화능과 영속성을 가지고 있어 발생 및 분화에 관련된 기초 연구 뿐 만 아니라 재생의학, 약물검색 등에서도 매우 유용한 재료로 이용될 수 있다.본 연구에서는 유전체의 변형이 배아줄기세포주의 확립 효율에 미치는 영향을 살펴보고자 비정상적인 포배기 배아에서 내세포괴를 분리하여 배양하였다. 연구 방법: 인간의 체외수정 및 배아이식술에서 공여 받은1개 또는3개의 전핵이 관찰되는 비정상 수정란 (n=20)과 착상전 유전진단에서 이수성이 확인된 배아 (n=27)를 대상으로 하였다. 일반적인 immunosurgery 방법으로 영양배엽세포들을 제거하고 내세포괴를 분리한 후 PMEF 혹은 STO feeder 세포위에서 배양하였다. 배아줄기세포의 배양시스템을 검증하기 위해서 이미 확립된 Miz-hES1 cell line을 동시에 같은 조건 하에서 계대배양하였다. 결 과: 비정상 수정란에서 발생된 포배기 배아에서 분리한 1개의 내세포괴가 배아줄기세포와 유사한 colony를 형성하였으나, 계대배양에는 실패하였다. 이수성 배아에서 발생된 포배기 배아의 내세포괴 배양에서는 두개의 colony가 계대배양 중에 영양배엽세포의 형태로 분화되어 미분화 상태를 유지하지 못하였다. 동일한 시기와 조건 하에서 계대배양된 Miz-hES1 cell line이 미분화상태로 유지됨을 karyotyping (46, XY)과 immunophenotyping (positive in SSEA-3 and -4)으로 확인하였다. 결 론: 본 연구의 결과에서 비정상 수정란과 이수성 배아에서 발생된 포배기 배아에서 유래한 내세포괴는 배아줄기세포주 확립 및 미분화 상태 유지 능력이 매우 저조한 것으로 여겨진다. 따라서, 인간의 배아줄기세포주를 확립하는데 있어 배아의 정상여부가 중요한 요소로 작용할 것으로 생각된다.
Choi, Su Jin;Lee, Sun Hee;Song, In Ok;Koong, Mi Kyoung;Kang, Inn Soo;Jun, Jin Hyun
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.33
no.4
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pp.237-243
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2006
Objective: The aim of this study was to evaluate the efficacy of frozen-thawed ET in poor prognosis patients such as the old age (38~44 years; OA group) and the patients who did not achieve clinical pregnancy with the first fresh ET cycle (non-pregnant patients; NP group). Methods: Laboratory and clinical data were collected from fresh and frozen-thawed ET cycles of OA and NP group. Controlled ovarian hyperstimulation (COH) and conventional insemination or ICSI, in vitro culture and ET were performed by routine procedures. Supernumerary embryos were frozen by the slow freezing method, and frozen embryos were thawed by the rapid thawing method. Embryo development, pregnancy and implantation rates were statistically analyzed by Student t-test and chi square test Results: Mean ages were similar between fresh ET ($40.0{\pm}1.8$ years, n=206) and frozen-thawed ET ($39.9{\pm}1.9$ years, n=69) cycles in OA group. However, the clinical pregnancy and implantation rate of subsequent frozen-thawed ET significantly higher than those of fresh ET cycles (29.0% and 11.2% vs. 16.5% and 7.0%, p<0.05). In NP group, there was no difference in the mean age between fresh ET ($31.2{\pm}2.3$ years, n=40) and frozen-thawed ET ($31.9{\pm}3.1$ years, n=119) in subsequent cycles. The clinical pregnancy and implantation rates were similar between the subsequent fresh ET (42.5% and 22.6%) and the frozen-thawed ET (40.3% and 18.8%). Conclusion: In old age patients, higher pregnancy rate of frozen-thawed ET compared to fresh ET cycles in this study. It may be related that better uterine environments for implantation in frozen-thawed ET cycles than that of non-physiological hormonal condition in uterus of fresh COH cycles.
The survival and pregnancy rates were compared between non-frozen embryos and cryopreserved embryos at either pronucleate or 2-4 cell stages using the freezing and thawing techniques being identical in both groups were compared with fresh embryos. 496 embryos were frozen with 1, 2-propanediol and sucrose and 117 2-4 cell stages embryos had been thawed and 79.6 and 66.0% of them respectively were survival. Clinical pregnancy rate was 19.2% for embryos frozen at the pronucleate stage and 19.0% for embryos frozen at the 2-4 cell stages while the pregnancy rate of non-frozen embryos was 21.3%. There were no significant difference in the survival and pregnancy rates of embryos frozen at pronucleate and 2-4 cell stages. The current cumulative pregnancy rate per retrieval in all cycles with frozen zygotes is 35.4 %, consid~ erably higher than observed in single transfers of embryos without cryopreservation(21.3%); predicted pregnancy rate after transfer of all frozen embryos is 43.3 %. It is concluded that firstly, the survival and pregnancy rate of cryopreserved embryos at pronucleate or 2-4 cell stages are very similar to those from their fresh embryos and non-frozen embryos and secondly, cryopreservation substantially enhances pregnancy attainment from in vitro fertilization.
The effects of freezing and 1,2-propanediol on early and late pronucleate stage mouse ova were investigated in terms of survival after thawing and development in vitro. The samples were divided into two groups according to different age in pronucleate ova: ova in(1) early pronuclear stage with two distant pronuclei at 18h after hCG injection, and (2) late pronuclear stage with adjacent pronuclei at 30h. Zygotes in the late pronuclear stage have been proven to be more resistant to 1,2-propanediol, showing a significantly higher developmental rate than zygotes in early stage (80.3 versus 66.3%, <0.05), but survival rate was similar in the two groups (91.0 versus 93.5%). After freezing and thawing, survival and developmental rates were decreased in both groups when compared to the control group (54.3 versus 92.3%, 47.7 versus 73.3%. respectively). And developmental rate in the late pronuclear stage zygotes showed significantly higher than in early (55.4 versus 40.0%) after thawing. In conclusion, early pronucleate mouse ova have a lower developmental capacity in vitro and a lower survival rate after freezing and thawing than late ova. These findings suggest that the timing of freezing could be important for survival and further development in vitro in cryopreservation of human pronucleate ova.
Kim, H.S.;Ryu, B.Y.;Oh, S.K.;Suh, C.S.;Kim, S.H.;Choi, Y.M.;Kim, J.G.;Moon, S.Y.;Lee, J.Y.
Clinical and Experimental Reproductive Medicine
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v.25
no.1
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pp.59-64
/
1998
This study was designed to evaluate the influence of pronuclear age on the survival and post-thawing development after cryopreservation of mouse embryos. Freezing and thawing were performed in the different pronuclear stages of mouse embryos after IVF. Embryos were obtained from $F_1$ hybrid mice and classified into 4 groups according to the pronuclear stage (6hr, 9hr, 12hr and 15hr after insemination). Pronuclear ova were slowly cooled in a biological freezer using 1.5M 1,2-propanediol and 0.1M sucrose as cryoprotectant. Thawing was done at room temperature and 1,2-propanediol was removed by multi-step dilutions. Both frozen-thawed embryos and control fresh embryos were cultured in vitro in Ham's F-10 medium supplemented with 4mg/ml BSA. In control group, the development rate after 48hr was 99.3%, and the complete hatching rate after 144hr was 61.3%. In experimental groups, the survival rate after thawing was 95.4% in 6hr, 88.7% in 9hr, 75.2% in 12hr and 62.4% in 15hr after insemination, the development rate after 48hr was 61.1, 77.0, 67.0 and 79.6%, respectively, and the complete hatching rate after 144hr was 25.7, 43.7, 42.2 and 60.0%, respectively. The survival rate in 15hr was significantly lower (p<0.05) compared with other groups. In vitro development rates after 48hr were similar in all groups, but complement hatching rate was significantly lower (p<0.05) in 6hr group. In conclusion, cryopreservation of mouse pronuclear ova with 2 distinct pronuclei (9hr and 12hr groups) showed better results after thawing compared with early (6hr group) or late pronuclear ova just prior to cleavage (15hr group).
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[게시일 2004년 10월 1일]
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