In this study, to improve the in vitro development of various cells including cloned embryos, the effects that isoproterenol and melatonin have on in vitro development of porcine parthenogenetic oocytes were investigated. Parthenogenetic activation was induced with electrical stimulation, BSA and 6-DMAP treatment. $10^{-7}M$ of melatonin and isoproterenol ($10^{-10}$, $10^{-12}$ and $10^{-14}M$) were supplemented for in vitro maturation (IVM) and in vitro culture (IVC) medium, with different concentrations. When isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, there was no significant (P<0.05) difference of maturation rate in the treatment groups as well as in that of only melatonin. As isoproterenol and melatonin were supplemented in IVM medium with different concentrations, blastocyst rates of isoproterenol $10^{-12}M$ treatment group (37.1%) were significantly (P<0.05) higher than control group (26.0%). Isoproterenol and melatonin were supplemented in IVC medium with different concentrations, then the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (82.2%) was significantly (P<0.05) higher than the group that melatonin was only supplemented (70.9%). There was no difference of blastocyst rate between the treatment groups. When isoproterenol and melatonin were supplemented for IVM+IVC medium with different concentrations, the cleavage rate of $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group (92.5%) was significantly (P<0.05) higher than the control group (82.8%) and the group that melatonin was only treated (81.6%). The blastocyst rate of $10^{-12}M$ as 45.6% was significantly (P<0.05) higher than control group (25.2%) and melatonin treatment group (31.2%). The cell number of blastocyst in $10^{-12}M$ isoproterenol treatment group $35.5{\pm}3.4$ was significantly (P<0.05) highest. The results of this study showed that the development rate of IVC when both isoproterenol and melatonin were supplemented was higher than when melatonin was only supplemented. Therefore, it is concluded that isoproterenol is rather effective in the activation of melatonin. $10^{-7}M$ melatonin and $10^{-12}M$ isoproterenol were considered suitable concentration.
The present study was carried out to investigate the effects of maturation media on penetrability of pig oocytes by liquid boar sperm coincubated with different sperm concentrations in a modified Trisbuffered medium (mTBM). Follicular oocytes collected from ovaries of prepubertal gilts were matured in a modified TCM-199 (mTCM-199) medium, modified Waymouth MB 752/1 (mWaymouth MB 752/1) medium or NCSU-23 medium. Oocytes (30~40) were transferred into each well of a Nunc 4-well multidish containing 0.5 $m\ell$ maturation medium. The spermich portion of ejaculates with greater than 90% motile sperm were used in the experiment. The semen was cooled 22 to 24$^{\circ}C$ over 2 h period. The semen was diluted with Beltsville Thawing Solution (BTS) extender at room temperature to give 2$\times$10$^{8}$ sperm/$m\ell$ in 100 $m\ell$ plastic bottle. Liquid boar semen of 30 $m\ell$ in 100 $m\ell$ plastic bottle was kept at 17$^{\circ}C$ far 5 days. The sperm with greater than 70% motility after day 5 of storage were used for in-vitro fertilization (IVF). After 44 h maturation of immature oocytes in 5% $CO_2$in air at 38.5$^{\circ}C$, cumulus cells were removed and oocytes (30~40) were coincubated for 6 h in 0.5 $m\ell$ mTBM fertilization medium with five different (1$\times$10$^{6}$ , 2$\times$10$^{6}$ , 4$\times$10$^{6}$ , 6$\times$10$^{6}$, 10$\times$10$^{6}$$m\ell$) sperm concentrations. At 6 h after IVF, oocytes were transferred into 0.5 $m\ell$ NCSU-23 culture medium fur further culture of 6 h. At 12 h after IVF, sperm penetration, polyspermy and male pronuclear formation of oocytes were evaluated. Oocytes of NCSU-23 maturation medium decreased polyspermy and increased male pronuclear formation compared to those of mTCM199 and mWaymouth MB 752/1 maturation media. Of oocytes matured in NCSU-23 medium and inseminated in mTBM medium with 2~4$\times$10$^{6}$$m\ell$ sperm concentrations, 50.8~50.9% showed sperm penetration, 13.3~19.5% polyspermy and 43.9~45.4% male pronuclear formation. In conclusion, we found out that oocytes matured in NCSU23 medium and inseminated in mTBM medium showed superior invitro fertilization compared to those matured in mTCM199 and mWaymouth MB 752/1 maturation media and inseminated in mTBM medium. The optimum sperm concentrations for in-vitro fertilization of oocytes matured in NCSU-23 medium by liquid boar semen stored at 17$^{\circ}C$ for 5 days were 2~4$\times$10$^{6}$$m\ell$.
This study was conducted to evaluate the effects of dietary herbal plant mixture on the performance in laying hens under heat stress. One hundred ninety two 54-weeks-old ISA Brown commercial layers, were used in 56 d experimental assay. Dietary treatments included CON (control; basal diet), HPM0.05 (basal diet + 0.05% herbal plant mixture), HPM0.1 (basal diet + 0.1% herbal plant mixture), and HPM0.2 (basal diet + 0.2% herbal plant mixture). For overall period, the hens fed with HPM0.1 and HPM0.2 diets showed lower in the hen day egg production than the hens fed with CON diet(P<0.05). At the end of the experimental period, egg weight was heavier in HPM 0.1 treatment than in CON (P<0.05). There were no significant differences among the treatments in egg shell breaking strength, egg shell thickness, Haugh unit, and yolk color unit. Total cholesterol concentration of yolk tended to decrease as the level of herbal plant mixture in the diet increased. Total protein of blood was higher in the hens fed with herbal plant mixture than in the hens fed with CON diet (P<0.05). Albumin concentration of blood was increased in HPM0.05 and HPM0.1 treatments compared with CON(P<0.05). Red blood cell (RBC) and white blood cell (WBC) concentrations in serum were increased in HPM0.1 and HPM0.2 treatments compared with CON treatment (P<0.05). In conclusion, dietary herbal plant mixture in laying hens under heat stress adversely affected egg production but increased total protein, albumin, RBC and WBC in blood.
Kim H. J.;Choi S. H.;Han M. H.;Son D. S.;Ryu I. S.;Kim I. C.;Lee J. H.;Kim I. H.;Im K. S.;Cho S. R.
Journal of Embryo Transfer
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v.20
no.1
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pp.25-33
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2005
This study is a part of research that development of effective genetic resources preservation system using the in vitro spermatogenesis, in vitro insemination and culture system. We aimed for establishment of in vitro culture system with in vitro activated porcine oocytes. The porcine oocytes were matured for 48 hours in $TCM199+10\%$ FCS and activated with $7\%$ ethanol. The activated oocytes were cultured for 7 days in $TCM199+10\%$ FCS or $NCSU23+0.4\%$ BSA medium. The activated oocytes were not developed to the blastocyst stage in $TCM199+10\%$ FCS medium. However in $NCSU23+0.4\%$ medium, those were developed to blastocyst with $3\%$ of treated oocytes. We extended maturation duration of porcine follicular oocytes fur 48, 52, 56, 60, 64, 68, and 72 hours and activated with $7\%$ ethanol and cultured using $NCSU23+0.4\%$ BSA medium. The six percents of activated oocytes were developed to blastocyst in 48 hours and $10\%$ in 52 hours with comparatively low rates suggested to be not fully activated by regenerated MPF. Maturation durations from 56 hours to 68 hours supported to develop upto $11.9\~18.3\%$ of blastocysts. However the developmental rate was declined to $7.2\%$ at 72 hours of maturation duration because of cytoplasmic deterioration. The assumed time window for activation will be $56\~68$ hours of maturation duration. When the matured oocytes were activated with electric pulse of 1, 1.2, 1.4, 1.6, 1.8 and 2.0kV/cm for $80{\mu}s$, although appling the electric current once was not enough for activation, appling twice with 1.6kV/cm for $80{\mu}s$ was shown the highest developmental rate with $11.3\%$. When those were compared with activating methods, $15.7%$ of blastocyst rate was obtained in the $7\%$ ethanol. That was higher than those in electric pulse with $9.5\%$ and calcium ionophore method with $5.8\%$. In this experimental condition, the $7\%$ ethanol treatment was the most effective method for activating porcine oocytes.
The objective of this study was carried out to examine the selection effects of in vitro matured porcine follicular oocytes with polar body extrusion and early cleavage as non-invasive marker to know the developmental competence in advance. The porcine oocytes matured for 48 h were examined the polar body extrusion. The examined oocytes were matured for additional $16{\sim}18h$ and activated with 7% ethanol and cultured in $5{\mu}g/ml$ cytochalasin B for 5 h for diploid formation. The treated oocytes were cultured and examined the cleavage after 48 h and continued culturing for 5 days. The oocytes of 21.9% were discarded in morphological selection and 32.1% oocytes were discarded by failure of first polar body extrusion. The selected oocytes were matured and activated and then after 48 h the cleavage rates were examined. In morphologically selected oocytes, 15.8% oocytes were not cleaved and 52.6% oocytes were normally cleaved and 31.6% oocytes were hyper-cleaved over 8-cell stage. However in the first polar body extruded oocytes, 7.1% oocytes were not cleaved and 73.1% oocytes were normally cleaved and 19.8% oocytes were hyper-cleaved. The morphologically selected embryos that not cleavage-selected were developed in 16.7% up to blastocyst and the morphologically selected and cleavage-selected embryos were developed in 31.7%. The polar body extruded oocytes that were not carried out cleavage selection were developed in 39.0% and the polar body extruded and cleavage-selected embryos were developed 49.0%. The first cleavage timing was examined with 12 h interval after activation. In $0{\sim}12,\;12{\sim}24,\;24{\sim}36,\;and\;36{\sim}48h$ intervals, 4.1%, 68.6%, 19.1%, and 2.3% oocytes were cleaved and 5.9% oocytes were not cleaved until 48 after activation. The cleaved oocytes in each interval were cultured and developed upto blastocyst with 0, 39.1, 9.5, and 0%, respectively. This results suggests that polar body extruded and cleaved at $12{\sim}36h$ embryo has higher developmental potential than the others.
In order to achieve successful in vitro production of embryo, it is necessary to establish intrauterine environment during in vitro culture. Thus, this study was investigated to establish embryo culture system using co-incubated collagen matrix gel (CM) with endometrial epithelial cells (EC). Endometrial epithelial cells were isolated from porcine endometrium at follicular phase, the cells seeded in insert dish for co-incubation with CM-coated culture dish. Then, culture media treated with/without 2.0 IU/ml hCG or 10 ng/ml $IL-1{\beta}$. After incubation for 24 h, the co-incubated insert dishes were removed from CM-coated culture dish before embryo culture. Embryos at 48 h after in vitro fertilization (IVF) were cultured on the dish for 120 h with porcine zygote medium. We determined PTGS-2 expression in the ECs, VEGF protein in co-incubated CM with EC and observed cleavage rate and blastocyst development of embryos at 168 h after IVF. In result, expression of PTGS-2 was higher at co-incubated EC with hCG and $IL-1{\beta}$ groups than EC without hCG and $IL-1{\beta}$. The VEGF protein was detected at co-incubated CM with EC, EC treated with hCG and $IL-1{\beta}$ groups higher than CM group. Also, cleavage rate was no significantly difference among all group, however, blastocyst development was significantly higher in co-incubated CM with EC treated with hCG group than un-treated groups (p<0.05). Therefore, we suggest that novel embryo culture system using co-incubated collagen matrix gel with endometrial epithelial cells treated with $IL-1{\beta}$ is beneficial and useful for enhancing the production of porcine blastocysts in vitro.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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