MMP-9 is a metalloproteinase capable of basement membrane degradation in vivo. Expression of MMP-9 can be found in normal conditions such as trophoblasts, osteoclasts, and leukocytes and their precursors. They also occur as well as in pathological conditions, such as the invasive growth of primary tumors, metastasis, angiogenesis, rheumatoid arthritis, and periodontal diseases. MMP-9 upregulation can be highly induced by a wide range of agents. These agents include growth factors, cytokines, cell-cell, and cell-ECM adhesion molecules, and agents altering cell shape. Here, we observed that TNF-$\alpha$ stimulated human monocytic cell line, HL-60 produced MMP-9 in a dose and time dependent manner. Real time PCR results indicated transcriptional upregulation of MMP-9 as early as 3 h post TNF-$\alpha$ stimulation. To investigate the signaling pathway underlined in TNF-$\alpha$ induced MMP-9 expression, three MAP kinase inhibitors were added to cells 1 h prior to TNF-$\alpha$ treatment. The ERK inhibitor completely abolished MMP-9 expression by TNF-$\alpha$. But neither p38 MAP kinase nor JNK inhibitor had an effect on TNF-$\alpha$ induced MMP-9 expression, suggesting that ERK activation is required for the MMP-9 induction by TNF-$\alpha$. Taken together, we found that TNF-$\alpha$ stimulation facilitates ERK activation, which results in the transcriptional upregulation of MMP-9 gene and subsequent MMP-9 production and secretion.
The mushroom Coriolus versicolor contains biologically active polysaccharides, most of which belong to the ${\beta}$-glucan group. Diverse physicochemical properties, due to different sources and isolated types of ${\beta}$-glucans, can induce distinct biological activities. We investigated the effects of ${\beta}$-glucans from C. versicolor on phagocytic activity, nitric oxide (NO), TNF-${\alpha}$ production, and signaling of dectin-1, a well-known ${\beta}$-glucan receptor, in macrophages. ${\beta}$-Glucans increased phagocytic activity and TNF-${\alpha}$ and NO-iNOS/eNOS production. Laminarin, a specific inhibitor of dectin-1, showed strong inhibitory effects on phagocytosis and subsequent TNF-${\alpha}$, iNOS, and eNOS production increased by ${\beta}$-glucans, indicating that ${\beta}$-glucans reacts with dectin-1 receptors. We examined whether the aforementioned cytokines were involved in the signaling pathway from the dectin-1 receptor to phagocytosis, and found that the inhibition of iNOS, eNOS, and TNF-${\alpha}$ receptors significantly decreased ${\beta}$-glucan-induced phagocytosis. In conclusion, our study showed that dectin-1 signaling, triggered by ${\beta}$-glucans, subsequently elicited TNF-${\alpha}$ and NO-iNOS/eNOS production, and that these molecules seem to act as secondary molecules that cause eventual phagocytosis by macrophages. These findings suggest that C. versicolor could be used as a nutritional medicine that may be useful in the treatment of infectious disease.
Parkin is known to be a tumor suppressor protein. Previously, we determined that parkin expression restores susceptibility to TNF-${\alpha}$-induced death of HeLa cells, a human cervical cancer cell line resistant to TNF-${\alpha}$-induced cell death. MMP-3 is a zinc-dependent protease recently reported to activate intracellular apoptotic signaling. In this study we examined the regulation of MMP-3 expression by parkin in TNF-${\alpha}$-treated HeLa cells. Furthermore, we investigated the signaling pathway involved in parkin-induced expression of MMP-3. We found that HeLa cells exhibit low levels of MMP-3 but is induced after introduction of the parkin gene into HeLa cells. Furthermore, MMP-3 expression increased further when parkin expressing cells were treated with TNF-${\alpha}$. Using chemical inhibitors of cell signaling pathways, we found that MEK-1 (PD98059), PI3K (LY294002), p38 MAPK (SB203580), and JNK inhibitors alleviated parkin-induced up-regulation of MMP-3. Finally, we show that TNF-${\alpha}$-induced cell death in parkin expressing cells is inhibited by using a MMP-3 inhibitor. These results suggest that parkin expression induces prolonged expression of MMP-3 via MEK-1, PI3K, MAPK, and JNK pathway in HeLa cells allowing the HeLa cells to become sensitive to TNF-${\alpha}$-induced cell death. These results implicate a role of MMP-3 in parkin-induced cell death in TNF-${\alpha}$ treated HeLa cells.
In this study, we evaluated the role of apurinic/apyrimidinic endonuclease1/redox factor-1 (Ref-1) on the tumor necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$) induced cyclooxygenase-2 (COX-2) expression using A549 lung adenocarcinoma cells. TNF-$\alpha$ induced the expression of COX-2 in A549 cells, but did not induce BEAS-2B expression. The expression of COX-2 in A549 cells was TNF-$\alpha$ dose-dependent (5~100 ng/ml). TNF-$\alpha$-stimulated A549 cells evidenced increased Ref-1 expression in a dose-dependent manner. The adenoviral transfection of cells with AdRef-1 inhibited TNF-$\alpha$-induced COX-2 expression relative to that seen in the control cells ($Ad{\beta}gal$). Pretreatment with $10\;{\mu}M$ of SB203580 suppressed TNF-$\alpha$-induced COX-2 expression, thereby suggesting that p38 MAPK might be involved in COX-2 expression in A549 cells. The phosphorylation of p38 MAPK was increased significantly after 5 minutes of treatment with TNF-$\alpha$, reaching a maximum level at 10 min which persisted for up to 60 min. However, p38MAPK phosphorylation was markedly suppressed in the Ref-1-overexpressed A549 cells. Taken together, our results appear to indicate that Ref-1 negatively regulates COX-2 expression in response to cytokine stimulation via the inhibition of p38 MAPK phosphorylation. In the lung cancer cell lines, Ref-1 may be involved as an important negative regulator of inflammatory gene expression.
The Wnt/$\beta$-catenin signaling pathway alters adipocyte differentiation by inhibiting adipogenic gene expression. $\beta$-catenin plays a central role in the Wnt/$\beta$-catenin signaling pathway. In this study, we revealed that tumour necrosis factor-$\alpha$ (TNF-$\alpha$), a potential negative regulator of adipocyte differentiation, inhibits porcine adipogenesis through activation of the Wnt/$\beta$-catenin signaling pathway. Under the optimal concentration of TNF-$\alpha$, the intracellular $\beta$-catenin protein was stabilized. Thus, the intracellular lipid accumulation of porcine preadipocyte was suppressed and the expression of important adipocyte marker genes, including peroxisome proliferator-activated receptor-$\gamma$ (PPAR$\gamma$) and CCAAT/enhancer binding protein-$\alpha$ (C/EBP$\alpha$), were inhibited. However, a loss of $\beta$-catenin in porcine preadipocytes enhanced the adipogenic differentiation and attenuated TNF-$\alpha$ induced anti-adipogenesis. Taken together, this study indicated that TNF-$\alpha$ inhibits adipogenesis through stabilization of $\beta$-catenin protein in porcine preadipocytes.
Seo, Hyo-Seok;Sikder, Mohamed Asaduzzaman;Lee, Hyun Jae;Ryu, Jiho;Lee, Choong Jae
Biomolecules & Therapeutics
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v.22
no.6
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pp.525-531
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2014
In the present study, we investigated whether apigenin significantly affects tumor necrosis factor-${\alpha}$ (TNF-${\alpha}$)-induced production and gene expression of MUC5AC mucin in airway epithelial cells. Confluent NCI-H292 cells were pretreated with apigenin for 30 min and then stimulated with TNF-${\alpha}$ for 24 h or the indicated periods. The MUC5AC mucin gene expression and mucin protein production were measured by reverse transcription - polymerase chain reaction (RT-PCR) and enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA), respectively. Apigenin significantly inhibited MUC5AC mucin production and down-regulated MUC5AC gene expression induced by TNF-${\alpha}$ in NCI-H292 cells. To elucidate the action mechanism of apigenin, effect of apigenin on TNF-${\alpha}$-induced nuclear factor kappa B (NF-${\kappa}B$) signaling pathway was also investigated by western blot analysis. Apigenin inhibited NF-${\kappa}B$ activation induced by TNF-${\alpha}$. Inhibition of inhibitory kappa B kinase (IKK) by apigenin led to the suppression of inhibitory kappa B alpha ($I{\kappa}B{\alpha}$) phosphorylation and degradation, p65 nuclear translocation. This, in turn, led to the down-regulation of MUC5AC protein production in NCI-H292 cells. Apigenin also has an influence on upstream signaling of IKK because it inhibited the expression of adaptor protein, receptor interacting protein 1 (RIP1). These results suggest that apigenin can regulate the production and gene expression of mucin through regulating NF-${\kappa}B$ signaling pathway in airway epithelial cells.
Peptidoglycan (PG) is found in atheromatous lesions of arteries, where monocytes/macrophages express inflammatory cytokines, including tumor necrosis factor-alpha ($TNF-{\alpha}$). This study investigated the effects of PG on $TNF-{\alpha}$ expression and examined possible cellular factors involved in $TNF-{\alpha}$ upregulation. The overall aim was to identify the molecular mechanisms underlying inflammatory responses to bacterial pathogen-associated molecular patterns in the artery. Exposure of human THP-1 monocytic cells to PG enhanced the secretion of $TNF-{\alpha}$ and induced its gene transcription. Inhibition of TLR-2/4 with OxPAPC significantly inhibited $TNF-{\alpha}$ gene expression, whereas inhibition of LPS by polymyxin B did not. The PG-induced expression of $TNF-{\alpha}$ was also significantly suppressed by pharmacological inhibitors that modulate activities of cellular signaling molecules; for example, U0126 (an ERK inhibitor), SB202190 (a p38 MAPK inhibitor), and SP6001250 (a JNK inhibitor) significantly attenuated PG-induced transcription of $TNF-{\alpha}$ and secretion of its gene product. $TNF-{\alpha}$ expression was also inhibited by rapamycin (an mTOR inhibitor), LY294002 (a PI3K inhibitor), and Akt inhibitor IV (an Akt inhibitor). ROS-regulating compounds, like NAC and DPI, also significantly attenuated $TNF{\alpha}$ expression induced by PG. These results suggest that PG induces $TNF-{\alpha}$ expression in monocytes/macrophages by multiple molecules, including TLR-2, PI3K, Akt, mTOR, MAPKs, and ROS.
Capsular polysaccharides (CPs) from Streeptococcus pneumoniae were examined for the ability to induce secretory responses in a pure population of peritoneal macrophages. The highly purified CPs were able to affect the macrophage, ie, secretion of tumor necrosis factor-alpha (TNF-$\alpha$) and nitrite. As after stimulation with CPs, secretion of TNF-u induced by these CPs reached its maximum within the first few hours of the interaction, while secretion of nitrite was increased with time. In addition, production of TNF-$\alpha$ and nitrite was increased in a dose-dependent manner. In the presence of indomethacin, CP-stimulated TNF-$\alpha$ production was not altered. In contrast, LPS with indomethacin stimulated 24.5% more TNF-$\alpha$ than LPS alone, suggesting that the intracellular signaling processes for TNF production are differentially stimulated by CP and LPS. The results demonstrate that CPs are potent inducer of macrophage secretory activities.
Tumor necrosis factor alpha ($TNF{\alpha}$) is a multifunctional inflammatory cytokine that regulates various cellular and biological processes. Increased levels of $TNF{\alpha}$ have been implicated in a number of human diseases including diabetes and arthritis. Sympathetic nervous system stimulation via the beta2-adrenergic receptor (${\beta}2AR$) in osteoblasts suppresses osteogenic activity. We previously reported that $TNF{\alpha}$ upregulates ${\beta}2AR$ expression in murine osteoblastic cells and that this modulation is associated with $TNF{\alpha}$ inhibition of osteoblast differentiation. In our present study, we explored whether $TNF{\alpha}$ induces ${\beta}2AR$ expression in human osteoblasts and then identified the downstream signaling pathway. Our results indicated that ${\beta}2AR$ expression was increased in Saos-2 and C2C12 cells by $TNF{\alpha}$ treatment, and that this increase was blocked by the inhibition of NF-${\kappa}B$ activation. Chromatin immunoprecipitation and luciferase reporter assay results indicated that NF-${\kappa}B$ directly binds to its cognate elements on the ${\beta}2AR$ promoter and thereby stimulates ${\beta}2AR$ expression. These findings suggest that the activation of $TNF{\alpha}$ signaling in osteoblastic cells leads to an upregulation of ${\beta}2AR$ and also that $TNF{\alpha}$ induces ${\beta}2AR$ expression in an NF-${\kappa}B$-dependent manner.
Parkin is a protein known to have tumor suppressive functions. In a previous study, we determined that Parkin expression restores susceptibility to TNF-${\alpha}$-induced death in HeLa cells. ${\beta}$-catenin is a key protein in the Wnt signaling pathway and excessive activation of the ${\beta}$-catenin pathway can promote cancer development. In this study, we found that ${\beta}$-catenin levels decreased dramatically in Parkin over-expressing HeLa cells treated with TNF-${\alpha}$. We used chemical inhibitors of cell signaling pathways to identify the signaling molecules involved in ${\beta}$-catenin down-regulation. Our results indicate that the PKC inhibitor (RO-31-7549) blocked parkin-induced down-regulation of ${\beta}$-catenin. We also show that Parkin-induced decrease in cell viability in TNF-${\alpha}$-treated HeLa cells is alleviated upon treatment with a PKC inhibitor. Taken together, these results suggest the possibility that ${\beta}$-catenin reduction may be associated with Parkin-induced decrease of cell viability in TNF-${\alpha}$ treated HeLa cells.
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