Li, Dan;Quan, He Xiu;Wen, Jin-Fu;Jin, Jing-Yu;Park, Sung-Hun;Kim, Sun-Young;Kim, Sung-Zoo;Cho, Kyung-Woo
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.9
no.2
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pp.87-94
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2005
It is not clear whether $Ca^{2+}-induced$$Ca^{2+}$ release from the sarcoplasmic reticulum (SR) is involved in the regulation of atrial natriuretic peptide (ANP) release. Previously, we have shown that nifedipine increased ANP release, indicating that $Ca^{2+}$ entry via voltage-gated L-type $Ca^{2+}$ channel activation decreases ANP release. The purpose of the present study was two-fold: to define the role of SR $Ca^{2+}$ release in the regulation of ANP release and whether $Ca^{2+}$ entry via L-type $Ca^{2+}$ channel is prerequisite for the SR-related effect on ANP release. Experiments were performed in perfused beating rabbit atria. Ryanodine, an inhibitor of SR $Ca^{2+}$ release, increased atrial myocytic ANP release ($8.69{\pm}3.05$, $19.55{\pm}1.09$, $27.31{\pm}3.51$, and $18.91{\pm}4.76$% for 1, 2, 3, and $6{\mu}M$ ryanodine, respectively; all P<0.01) with concomitant decrease in atrial stroke volume and pulse pressure in a dose-dependent manner. In the presence of thapsigargin, an inhibitor of SR $Ca^{2+}$ pump, ryanodine-induced increase in ANP release was not observed. Thapsigargin attenuated ryanodine-induced decrease in atrial dynamic changes. Blockade of L-type $Ca^{2+}$ channel with nifedipine abolished ryanodine-induced increase in ANP release ($0.69{\pm}5.58$% vs. $27.31{\pm}3.51$%; P<0.001). In the presence of thapsigargin and ryanodine, nifedipine increased ANP release and decreased atrial dynamics. These data suggest that $Ca^{2+}$-induced $Ca^{2+}$ release from the SR is inversely involved in the regulation of atrial myocytic ANP release.
Sarcococca saligna is a shrub that is traditionally used for its medicinal properties in Pakistan. In this study we report the cardio-suppressant, vasodilator and tracheal relaxant activities of the aqueous-methanolic extract (Ss.Cr) of the plant. Ss.Cr, that tested positive for the presence of saponins, flavonoids, tannins, phenols, and alkaloids, exhibited a dose-dependent (0.3-5 mg/mL) negative inotropic and chronotropic effect on the isolated guinea-pig atrium which was resistant to atropine ($1\;{\mu}M$) and aminophylline ($10\;{\mu}M$) pretreatment. In rabbit thoracic aorta, Ss.Cr dose-dependently (0.1-3 mg/mL) relaxed the high $K^{+}$ (80 mM) and phenylephrine ($PE,\;1\;{\mu}M$)-induced contractions, indicating a possible $Ca^{++}$ channel blocking (CCB) effect. When tested against PE ($1\;{\mu}M$) control peaks in normal $Ca^{++}\;and\;Ca^{++}$-free Kreb's solution, Ss.Cr exhibited dose-dependent (0.1-3 mg/mL) inhibition, being more potent in relaxing the PE responses in $Ca^{++}$-free Kreb's solution, thus indicating specific blockade of $Ca^{++}$ release from the intracellular stores. Ss.Cr also relaxed the agonist-induced contractions in: a) rat aorta irrespective of the presence of endothelium or nitric oxide synthase inhibitor L-NAME and b) rabbit and guinea-pig tracheal strips. The data shows that Ss.Cr possesses possible $Ca^{++}$ channel blocking activity which might be responsible for its observed cardio-suppressant, vasodilator and tracheal relaxant effects though more tests are required to confirm this $Ca^{++}$ channel blocking effect.
Real-time monitoring is one of the prime necessities in a weapon flight test that is required for the efficient and timely collection of large amounts of high-rate sampled data acquired by an event-trigger. The wireless sensor network is a good candidate to resolve this requirement, especially considering the inhospitable environment of a weapon flight test. In this paper, we propose a priority based multi-channel MAC protocol with CSMA/CA over a single radio for a real-time monitoring of a weapon flight test. Multi-channel transmissions of nodes can improve the network performance in wireless sensor networks. Our proposed MAC protocol has two operation modes: Normal mode and Priority Mode. In the normal mode, the node exploits the normal CSMA/CA mechanism. In the priority mode, the node has one of three grades - Class A, B, and C. The node uses a different CSMA/CA mechanism according to its grade that is determined by a signal level. High grade nodes can exploit more channels and lower backoff exponents than low ones, which allow high grade nodes to obtain more transmission opportunities. In addition, it can guarantee successful transmission of important data generated by high grade nodes. Simulation results show that the proposed MAC exhibits excellent performance in an event-triggered real-time application.
Khanna, Rajesh;Zougman, Alexandre;Stanley, Elise F.
BMB Reports
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v.40
no.3
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pp.302-314
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2007
N type calcium channels (CaV2.2) play a key role in the gating of transmitter release at presynaptic nerve terminals. These channels are generally regarded as parts of a multimolecular complex that can modulate their open probability and ensure their location near the vesicle docking and fusion sites. However, the proteins that comprise this component remain poorly characterized. We have carried out the first open screen of presynaptic CaV2.2 complex members by an antibody-mediated capture of the channel from purified rat brain synaptosome lysate followed by mass spectroscopy. 589 unique peptides resulted in a high confidence match of 104 total proteins and 40 synaptosome proteome proteins. This screen identified several known CaV2.2 interacting proteins including syntaxin 1, VAMP, protein phosphatase 2A, $G_{o\alpha}$, G$\beta$ and spectrin and also a number of novel proteins, including clathrin, adaptin, dynamin, dynein, NSF and actin. The unexpected proteins were classified within a number of functional classes that include exocytosis, endocytosis, cytoplasmic matrix, modulators, chaperones, and cell-signaling molecules and this list was contrasted to previous reports that catalogue the synaptosome proteome. The failure to detect any postsynaptic density proteins suggests that the channel itself does not exhibit stable trans-synaptic attachments. Our results suggest that the channel is anchored to a cytoplasmic matrix related to the previously described particle web.
The vasorelaxant effect of serotonin reuptake inhibitor fluoxetine was investigated in rat isolated thoracic aorta. Fluoxetine induced a concentration-dependent relaxation in aorta precontracted with phenylephrine (PE) and KCl. These relaxations were suppressed by removal of the endothelium (-E) or pretreatment of nitric oxide synthase inhibitors, N(G)-nitro-L-arginine (L-NNA) and N(omega)-nitro-Larginine methyl ester (L-NAME), guanylate cyclase inhibitors, methylene blue (MB) and 1H-[1,2,4]oxadiazolo [4,3-a]quinoxalin-1-one (ODQ), and $Ca^{2+}$ channel blockers, nifedipine and verapamil, in PE-precontracted +E rings. However, fluoxetine-induced relaxations were not suppressed by pretreatment of $K^{+}$ channel blockers, tetrabutylammonium and glibenclamide, in PE-precontracted endothelium intact (+E) rings. The fluoxetine-induced relaxations were not suppressed by removal of the endothelium or pretreatment of LNNA and MB in KCl-precontracted +E rings. Also, fluoxetine inhibited PE-induced sustained contraction in +E rings. These inhibitory effects of fluoxetine on contractions could be reversed by removal of the endothelium or pretreatment of L-NNA, L-NAME, MB, ODQ, nifedipine and verapamil, but not by pretreatment of etrabutylammonium and glibenclamide. These findings suggest that the vasorelaxant effect of fluoxetine is modulated by intracellular $Ca^{2+}$ with an involvement of endothelial NO-cGMP pathway and also may be related to the inhibition of $Ca^{2+}$ entry through voltage-gated channel.
To investigate the functional and immunological properties of the Ca-release channel in the sarcoplasmic reticulum(SR) of the eel skeletal muscle, $[^3H]ryanodine$ binding, SDS gel electrophoresis, $^{45}Ca\;release$ studies, and immunoblot assay were carried out in the SR of the eel skeletal muscle. Maximal binding sites(Bmax) and $K_D$ values of $[^3H]ryanodine$ for Ca-release channel of the SR of the eel skeletal muscle were $19.44{\pm}1.40\;pmole/mg$ protein and $15.55{\pm}1.69\;nM$, respectively. $[^3H]Ryanodine$ binding to RyR was increased by calcium and AMP. The SR of the eel skeletal muscle has two high molecular weight bands on the SDS PAGE. The mobility of upper band was more slower than the single band of the rabbit skeletal muscle, and that of the lower band was similar with the single band of canine cardiac muscle. Vesicular $^{45}Ca-release$ was activated by calcium. Ca-induced $^{45}Ca-release$ was significantly inhibited by $MgCl_2(2\;mM)$, ruthenium red$(10\;{/mu}M)$ or tetracaine(1 mM), but not by high concentration of calcium itself. AMP-induced $^{45}Ca-release$ was slightly occurred only in the absence of calcium, it was not inhibited by $MgCl_2$ or ruthenium red. Caffeine also increased $^{45}Ca-release$ from the SR vesicles, but it was not affected by $MgCl_2$ or ruthenium red. Polyclonal Ab against rat skeletal muscle RyR is reacted with that of rabbit, but not reacted with that of the eel skeletal muscle. These results suggested that ryanodine receptor of the SR of the eel skeletal muscle is showing some similar properties with that of mammalian skeletal muscle, but might be an another isotype channel having two bands which is less sensitive to AMP, not cross-reacted with antisera against rat RyR, and not inhibited by high concentration of calcium.
There are several physiological and pharmacological evidences indicating that opening of voltage dependent $Ca^{2+}$ channels play a critical role in induction of acrosome reaction in mammalian sperm. We determined the intracellular free $Ca^{2+}$ concentration in ejaculated goat sperm using a fluorescent, $Ca^{2+}$-specific probe, Fura2/AM, after the suspension of sperm in KRB medium, capable of sustaining capacitation and the acrosome reaction. We used nifedipine, D-600 and diltiazem, the $Ca^{2+}$ channel antagonists belonging to the classes of dihydropyridines, phenylalkylamines and benzothiazepines, to investigate the possibility that L-type voltage gated $Ca^{2+}$ channels play a role in the progesterone-stimulated exocytotic response. Progesterone promoted a rise in intracellular $Ca^{2+}$ in goat sperm and addition of nifedipine (100 nM) just prior to progesterone induction, significantly inhibited both intracellular $Ca^{2+}$ rise and exocytosis suggesting that $Ca^{2+}$ channels are involved in the process. However, the intracellular $Ca^{2+}$ increase during the process of capacitation was not affected with the addition of nifedipine suggesting a role of focal channel for $Ca^{2+}$ during capacitation. Studies using monensin and nigericin, two monovalent cation ionophores showed that an influx of $Na^+$ also may play a role in the opening of $Ca^{2+}$ channels. These results strongly suggests that the entry of $Ca^{2+}$ channels with characteristics similar to those of L-type, voltage-sensitive $Ca^{2+}$ channels found in cardiac and skeletal muscle, is a crucial step in the sequence of events leading to progesterone induced acrosome reaction in goat sperm.
Kim, June-Bum;Kim, Sung-Jo;Kang, Sun-Yang;Yi, Jin Woong;Kim, Seung-Min
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.57
no.10
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pp.445-450
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2014
Purpose: Familial hypokalemic periodic paralysis (HOKPP) is an autosomal dominant channelopathy characterized by episodic attacks of muscle weakness and hypokalemia. Mutations in the calcium channel gene, CACNA1S, or the sodium channel gene, SCN4A, have been found to be responsible for HOKPP; however, the mechanism that causes hypokalemia remains to be determined. The aim of this study was to improve the understanding of this mechanism by investigating the expression of calcium-activated potassium ($K_{Ca}$) channel genes in HOKPP patients. Methods: We measured the intracellular calcium concentration with fura-2-acetoxymethyl ester in skeletal muscle cells of HOKPP patients and healthy individuals. We examined the mRNA and protein expression of KCa channel genes (KCNMA1, KCNN1, KCNN2, KCNN3, and KCNN4) in both cell types. Results: Patient cells exhibited higher cytosolic calcium levels than normal cells. Quantitative reverse transcription polymerase chain reaction analysis showed that the mRNA levels of the $K_{Ca}$ channel genes did not significantly differ between patient and normal cells. However, western blot analysis showed that protein levels of the KCNMA1 gene, which encodes $K_{Ca}$1.1 channels (also called big potassium channels), were significantly lower in the membrane fraction and higher in the cytosolic fraction of patient cells than normal cells. When patient cells were exposed to 50 mM potassium buffer, which was used to induce depolarization, the altered subcellular distribution of BK channels remained unchanged. Conclusion: These findings suggest a novel mechanism for the development of hypokalemia and paralysis in HOKPP and demonstrate a connection between disease-associated mutations in calcium/sodium channels and pathogenic changes in nonmutant potassium channels.
Effects of 1, 4-dihydropyridine compounds, such as nifedipine, nisoldipine, nitrendipine, and nimodipine which were calcium antagonists on the normal and Ca-dependent, slow channel mediated action potentials in the guinea pig's papillary muscle were investigated. The glass microelectrode was impaled into a papillary muscle cell for measurements of potential changes with the simultaneous tracing of isometric contraction. The concentration of Ca antagonists were 1 mg/l (nifedipine and nisoldipine), 2 mg/l (nitrendipine and nimodipine), which showed the maximal inhibition of isometric contraction (above 90%) and simultaneous effects on the normal action potentials and only the halves of those concentrations were sufficient to observe the effects on the calcium action potentials. The data for analysis were only chosen when the microelectrode was maintained in a cell throughout the experiments. 1, 4-Dihydropyridine compounds decreased the action potential duration but did not affect the resting membrane potential, overshoot, and upstroke velocity of the normal action potentials with the decrease in the isometric contraction. And with the decrease in the area and amplitude of isometric contraction, the area, amplitude, upstroke velocity and duration of Ca action potential was decreased. But the differences in the effects of the Ca antagonists were not observed. Therefore it is inferred that the changes in normal and Ca action potential induced by the 1, 4-dihydropyridine compounds with a common chemical structure would be caused by the slow inward Ca-current, not by a fast Na-current.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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