An Arpase complex has been purified to apparent homogeniety from the extract of chick skeletal muscle using conventional column chromatographies and glycerol density gradient centrifugation. This eWe has a sedimentation coefficient of 15S as determined by the gradient centrifugation and therefore is referred to as the 15S ATPase. It behaves as a 600-kOa molecule upon gel filtration analysis using a Superose-6 column. However, the ATPase runs as a 95-kDa polvpeptide when analyzed by polvacrvlamide gel electrophoresis in the presence of sodium dodecyl sulfate. Thus, the Arpase is likely to consist of six identical subunits of 95 KDa. It has a Km value of 0.6 mM for ATP and is maximally active at pH 9.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.14
no.1
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pp.77-81
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1985
It was investigated about extractability and biological property(ATPase activity) of actomyosin from skeletal muscle of chi(:ken differed feeding period. The extractabilities of actomyosin from pectoral muscle were increased from 184.5 to 1020.1 mg per 100g muscle as feeding period prolonged from 3 weeks to 8 weeks. In case of leg-muscles, extractability was revealed the similar tendency as pectoral muscles. EDTA ATPase activity of actomyosin in various chicken muscles for 3 weeks feeding was 0.6 Brmole Piimg Protein/min., 0.59 for 6 Iveeks feeding and 0.50 for 8 weeks. The Ma^{+2}$-ATPase of actomyosin in various chicken muscles was showed inverted relationship with ionic strength. EGTA ($125\;{\mu}mole$)inhibited Ma^{+2}$-ATPase activity to below $0.1\;{\mu}mole$ Pi/mg protein/min. regardless the feeding period.
It has been reported that the luteal function may be regulated by the intracellular $Ca^{++}$ level which may be adjusted partially by the high affinity $Ca^{++}-ATPase$ in luteal cell membranes. Then, one may expect that luteotropic and/or luteolytic agents, such as gonadotropins, prostaglandin $F_{2{\alpha}}\;(PGF_{2{\alpha}})$ and ouabain, affect the intracellular $Ca^{++}$ level. In this present study, therefore, we examined the effects of luteinizing hormone (LH, or human chorionic gonadotropin, hCG), $PGF_{2{\alpha}}$ and ouabain on the kinetic properties of the high affinity $Ca^{++}-ATPase$ in light membrane, heavy membrane, and microsomal fractions from the highly luteinized ovary. LH (or hCG) increased the affinity and the Vmax for $Ca^{++}$ both in light membrane and heavy membrane. $PGF_{2{\alpha}}$ increased the Vmax in light membrane and decreased the Km in heavy membrane for $Ca^{++}$ at low concentration $(5\;{\mu}g/ml)$. At higher concentration, however, $PGF_{2{\alpha}}$ oppositly affected on kinetic properties, that shown at low concentration. Ouabain, a potent inhibitor of $Na^+-K^+-ATPase$, increased the Km at high concentration $(10^{-4}\;M)$, however, decreased the Vmax for $Ca^{++}$ in light membrane at low concentration $(10^{-6}\;M)$. Also, ouabain increased the Km for $Ca^{++}$ in heavy membrane without changes in the Vmax at both concentrations. It seems that LH and low dose of $PGF_{2{\alpha}}$ increase the intracellular $Ca^{++}$ level and cause in activation of $Ca^{++}-ATPase$, however, higher dose of $PGF_{2{\alpha}}$ and ouabain inhibit directly $Ca^{++}-ATPase$ activity and result in increase in intracellular $Ca^{++}$ level. According to the above results, we suggest that luteotropic and/or luteolytic agents regulate the luteal progesterone $(P_4)$ production through two different pathways; one is cyclic adenosine monophosphate (cAMP)-dependent and another is $Ca^{++}-dependent$. Intracellula. $Ca^{++}$ level regulated by the high affinity $Ca^{++}-ATPase$ may affect both pathways in a time-dependent fashion. LH (or hCG) acts on the luteal $P_4$ production via both pathways. The initial step is $Ca^{++}$ dependent, and the late step is cAMP dependent. $PGF_{2{\alpha}}$ and ouabain increase the intracellular $Ca^{++}$ concentration so that basal luteal $P_4$ production is increased and LH-stimulated $P_4$ production is inhibited by the inhibiting LH-dependent adenylate cyclase activity.
Here we report a simple screening system using hematoxylin staining (HS) of the root apex. It allowed rapid classification into different aluminum (Al) tolerance from 65 cultivars within one week. Using this system, we selected the most Al-tolerant (Jayae-2) and-sensitive (Pum-2) barley (Hordeum vulgare L.) The results show that the different responses in Al-induced growth inhibition, Al accumulation and expression of plasma membrane (PM) $H^+$-ATPase in root apices of selected two cultivars. It showed strongly Al-induced growth inhibition in a dosedependant manner only in Pum-2 but not in Jayae-2. Aluminum accumulation in root apices (10 mm) was significantly higher in Pum-2 only. The $H^+$-ATPase expression of PM vesicles by western blotting was decreased in Pum-2 but not in Jayae-2 treated with $20{\mu}M$ Al for 24 h. These finding indicate to screen from our system is rapid and reliable and to sustain the expression of PM $H^+$-ATPase at translational level is an important role in root growth as affected by Al.
The $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase has been purified homogeneously from sarcoplasmic reticulum of rat skeletal muscle by sucrose density gradient centrifugation. The purified enzyme has a molecular weight of 115,000 as judged by polyacrylamide gel electrophoresis in the presence of sodium dedecyl sulfate, and therefore has the same size of the enzyme in rabbit and chick skeletal muscle. $Ca^{2+}, Mg^{2+}, Fe^{2+}, Co^{2+}, and Mn^{2+}$ at 50 $\\muM$ show stimulatory effect on the ATP-ase, while $Zn^{2+}, Cu^{2+}, and Hg^{2+}$ inhibit it at the same concentration. The ATPase activity is insensitive to antimalarial drugs such as quinine and quinacrine, but is sensitive to inhibition by p-hydroxymecurie benzoate and phenylmethylsulfonylfluoride. The enzyme has optimum pH of 6 to 7 and Km value for ATP is estimated to be 98 $\\muM$. Thus, a number of biochemical properties of this enzyme appear to be different from those of the enzyme that have been isolated from rabbit skeletal muscle. The $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase appears to be selectively degraded in microsomal fraction. The activity of metalloendoprotease is evident in the microsomal preparation when assayed by radioactively labeled protein substrate, such as $^{3}H-casein and $^{125}I$-insulin. However, it is presently unclear whether the metalloendoprotease is responsible for the degradation of the $(Ca^{2+}+Mg^{2+})$-ATPase.
Kim, Hee-Joong;Hwang, Ae-Ran;Park, Yang-Saeng;Kang, Doo-Hee
The Korean Journal of Physiology
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v.11
no.2
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pp.1-7
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1977
The activity of the $Ca^{++}$ activated adenosinetriphosphatase (Ca-ATPase) of actomyosin systeme of rabbit and frog skeletal muscle has been studied at varying pH and temperature. The PH optima of the Ca-ATPase activity of the rabbit actomyosin was rather broad. Over the temperature range of $16-36^{\circ}C$ activity of the enzyme was not appreciably changed between pH 6.4-8.5; below and above which it rapidly reduced. The pH at the inflection point of the enzyme activity increased as temperature decreased, showing the ${\bigtriangleup}pH\;inflection/{\bigtriangleup}T$ of approximately $-0.018\;unit/^{\circ}C$. Consequently, $(OH^-)/(H^+)$ ratio at the inflection point was constant regardless of assay temperature. In the frog actomyosin systems the Ca-ATPase activity was not apparently altered between PH 6.4-7.0 when the incubation temperature was $15{\sim}30^{\circ}C$. Outside of this range of pH, however, the enzyme activity was dramatically decreased. The pH of the inflection point changed inversely with temperature. ${\bigtriangleup}pH\;inflection/{\bigtriangleup}T$ at the acidic side was approximately $-0.018\;unit/^{\circ}C$, whereas that at the alkaline side it was about $-0.037\;unit/^{\circ}C$. The Arrhenius Plot on the Ca-ATPase activity at constant $(OH^-)/(H^+)$ ratio of 1.0 was not linear, but showed break at arround $20^{\circ}C$ for both rabbit and frog actomyosin Preparations. From these results it was speculated that pH dependence of Ca-ATPase activity of rabbit actomyosin systems might reflect titrations of histidine-imidazole and -SH groups, and that of the frog actomyosin represents titrations of histidine-imidazole and lysyllysine ${\alpha}-NH_2$ groups.
In order to elucidate the molecular mechanism of the intracellular $Ca^{2+}$ overload frequently reported from diabetic heart, diabetic rats were induced by the administration of streptozotocin, the membrane vesicles of junctional SR (heavy SR, HSR) were isolated from the ventricular myocytes, and SR $Ca^{2+}$ uptake and SR $Ca^{2+}$ release were measured. The activity of SR $Ca^{2+}-ATPase$ was $562{\pm}14$ nmol/min/mg protein in control heart. The activity was decreased to $413{\pm}30$ nmol/min/mg protein in diabetic heart and it was partially recovered to $485{\pm}18$ nmol/min/mg protein in insulin-treated diabetic heart. A similar pattern was observed in SR $^{45}Ca^{2+}$ uptakes; the specific uptake was the highest in control heart and it was the lowest in diabetic heart. In SR $^{45}Ca^{2+}$ release experiment, the highest release, 45% of SR $^{45}Ca^{2+}$, was observed in control heart. The release of diabetic heart was 20% and it was 30% in insulin-treated diabetic heart. Our results showed that the activities of both SR $Ca^{2+}-ATPase$ and SR $Ca^{2+}$ release channel were decreased in diabetic heart. In order to evaluate how these two factors contribute to SR $Ca^{2+}$ storage, the activity of SR $Ca^{2+}-ATPase$ was measured in the uncoupled leaky vesicles. The uncoupling effect which is able to increase the activity of SR $Ca^{2+}-ATPase$ was observed in control heart; however, no significant increments of SR $Ca^{2+}-ATPase$ activities were measured in both diabetic and insulin-treated diabetic rats. These results represent that the $Ca^{2+}$ storage in SR is significantly depressed and, therefore, $Ca^{2+}-sequestering$ activity of SR may be also depressed in diabetic heart.
Benzyl alcohol is known to have dual effect on the red blood cell shape change. At low concentration up to 50 mM benzyl alcohol transformed the shape from discocyte to stomatocyte by preferent binding to the inner hemileaflet, however, at higher concentratransformed the shape from discocyte to stomatocyte by preferential binding to the inner monolayer, however, at higher concentration above 50 mM benzyl alcohol transformed to echinocyte by affecting both monolayers. These results suggest that the effect of benzyl alcohol on the red blood cell shape and $Ca^{++}$ transport across cardiac cell membranes to assess the effects of the drug on the structures and functions of the biological cell membranes. The results are as follows: 1) Benzyl alcohol up to 40 mM caused progressive stomatocytic shap change of the red blood cell but above 50 mM benzyl alcohol caused echinocytic shape change. 2) Benzyl alcohol up to 40 mM inhibited both osmotic hemolysis and osmotic volume change of the red blood cell in hypotonic and hypertonic NaCl solutions, respectively. 3) Benzyl alcohol inhibited both Bowditch Staircase and Wood-worth Staircase phenomena at rat left auricle. 4) Benzyl alcohol at concentration of 5 mM increased $Ca^{++}-ATPase$ activity of red blood cell ghosts slightly but above S mM benzyl alcohol inhibited the $Ca^{++}-ATPase$ activity. 5) Benzyl alcohol at concentrations of 5 mM and 10 mM increased $Ca^{++}-ATPase$ activity slightly at rat gastrocnemius muscle S.R. but above 10 mM benzyl alcohol inhibited the $Ca^{++}-ATPase$ activity. Above results indicate that benzyl alcohol inhibit water permeability and $Ca^{++}$ transport across cell membranes in part via effects on the fluidity and transition temperatures of the bulk lipid by preferential intercalation into cytoplasmic monolayer and in part via other effect on the conformational change of active sites of the $Ca^{++}-ATPase$ molecule extended in cytoplasmic face.
In order to evalulate the cause of polyuric acute tubular necrosis, we measured electrolytes, $Na^{+}\;and\;K^{+}$ excreted in urine, and activities of $Na^{+}-K^{+}$adenosine triphosphatase ($Na^{+}-K^{+}$ATPase) Excretion of $Na^{+}\;and\;K^{+}$ significantly increased in 24hr exposure on the uranyl nitrate and then decreased below the normal level after 3 days. The concentration of $Na^{+}\;and\;K^{+}$ in urines of the rats treated uranyl nitrate was less than that of the normal rats. The activities of $Na^{+}-K^{+}$ATPase decreased only in the group treated with high dose group of uranyl nitrate (30mg/kg BW) on the 3rd day but were not changed in the low dose groups(5 mg/kg BW and 15mg/kg BW).
In recent years much interesting information about the mechanism of the $Na^+-K^+$ activated ATPase has been obtained from investigation of the $K^+-activated$ phosphatase activity which appears to be catalysed by the same enzyme. Also several studies have indicated that a $K^+-activated p-nitrophenylphosphatase activity is intimately related to the ATPase activity. And then the exact relation of p-nitrophenylphosphatase activity to $Na^+-K^+$ ATPase activity is not known. The effects of some ions and drugs on the p-nitrophenylphosphatase activity of the rat brain were investigated and the results were summarized as follows. 1. The p-nitrophenylphosphatase was stimulated markedly by low concentrations of $K^+$, while the activity was activated slightly in the presence of $Na^+$ and oligomycin. 2. Addition of both ATP and $Na^+$ caused a remarkable increase in the activity of the $K^+-dependent$ phosphatase at low concentrations of $K^+$. 3. In the presence of $Na^+$ and low concentrations of $K^+$, oligomycin activated the p-nitrophenylphosphatase. 4. O1igomycin inhibited the stimulation of the enzyme activity caused by $Na^{+}+ATP$. 5. Ouabain inhibited the $K^+-dependent$ p-nitrophenylphosphatase activity more in the presence of ATP and $Na^+$ than in their absence. 6. Quinidine inhibited both $Na^+-K^+$ ATPase and p-nitrophenylphosphatase. These inhibitory effects of the drug were partially antagonized by increasing $K^+$ concentrations. The sensitivity of the $K^+-dependent$ p-nitrophenylphosphatase to quinidine was greater than the that of $Na^+-K^+$ ATPase.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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