The soluble acid invertase ($\beta$-D-fructofuranoside fructohydrolase, EC 3.2.1.26) was isolated and characterized from the hypocotyls of mung bean (Phaseolus radiatus L.). The enzyme was purified to apparent homogeneity by consecutive step using diethylaminoethyl (DEAE)-cellulose anion exchange, Concanavalin (Con) A affinity and Sephacryl S-300 chromatography. The overall purification was about 148-fold with a yield of about 15%. The finally purified enzyme exhibited a specific activity of about 139 $\mu$mol of glucose produced mg-1 protein min-1 at pH 5.0 and appeared to be a single protein by sodium dodecyl sulfate-polyacrylamide gel electrophoresis (SDS-PAGE) and nondenaturing PAGE. The enzyme had the native molecular weight of 70 kD and subunit molecular weight of 70 kD as estimated by Sephadex G-200 chromatography and SDS-PAGE, respectively, suggesting that the enzyme was composed of a monomeric protein. On the other hand, the enzyme appeared to be a glycoprotein containing N-linked high mannose oligosaccharide chain on the basis of its ability to bind to the immobilized C on A. The enzyme had a Km for sucrose of 1.8 mM at pH 5.0 and maximum activity around pH 5.0. The enzyme showed highest enzyme activity with sucrose as substrate, but the activity was slightly measured with raffinose and cellobise. No activity was measured with maltose and lactose. These results indicate the soluble acid invertase is a $\beta$-fructofuranosidase.
Xylogone sphaerospora ${\beta}$-mannanase was purified by Sephadex G-100 column chromatography. The specific activity of the purified enzyme was 8.44 units/ml protein, representing an 56.27-folds purification of the original crude extract. The final preparation thus obtained showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was determined to be 42kDa. Konjac glucomannan was hydrolyzed by the purified ${\beta}$-mannanase, and then the hydrolysates was separated by activated carbon column chromatography. The main hydrolysates were composed of D.P. (Degree of Polymerization) 3 and 4 glucomannooligosaccharides. For elucidate the structure of D.P 3 and 4 glucomannooligosaccharides, sequential enzymatic action was performed. D.P 3 and 4 were identified as M-G-M and M-M-G-M (G- and M- represent glucosidic and mannosidic link-ages). To investigate the effects of konjac glucomannooligosaccharides on in vitro growth of Bifido-bacterium longum, B. bifidum, B. infantis, B. adolescentis, B. animalis, B. auglutum and B. breve. Bifidobacterium spp. were cultivated individually on the modified-MRS medium containing carbon source such as D.P. 3 and D.P. 4 glucomannooligosaccharides, respectively. B. longum and B. bifidum grew up 3.9-fold and 2.8-fold more effectively by the treatment of D.P. 4 glucomannooligosaccharides, compared to those of standard MRS medium. Especially, D.P. 4 was more effective than D.P. 3 glucomannooligosaccharide on the growth of Bifidobacterium spp.
[ ${\alpha}$ ]Galactosidase was purified from a culture filtrate of Mortierella sp. by CM-sephadex C-50, and subsequent Sephadex G-100 column chromatography. The final preparation thus obtained showed a single band on SDS-polyacrylamide gel electrophoresis. The molecular weight was determined to be 56 kDa. $Gal^3Man^4$ ($6^3$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannotetraose), $Gal^{2,3}Man_5$ ($6^{2,3}$-di-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannopentaose), $Gal_2Man_3$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannotriose), $Gal^2Man_6$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannohexaose) and $Gal^2Man_5$ ($6^2$-mono-O-${\alpha}$-D-galactopyranosyl-4-O-${\beta}$-D-mannopentaose), prepared from 3 types of microbial ${\beta}$-mannnanase, were used as substrates. $Gal^3Man_4$ and $Gal^2Man_3$ had a stubbed ${\alpha}$-galactosyl residue on the $2^{nd}$ and $3^{rd}$ mannose from the reducing end of mannotetraose and mannotriose, thus ${\alpha}$-galactosidase showed a preference for stubbed ${\alpha}$-galactosyl residue. ${\alpha}$-Galactosidase hydrolyzed $Gal^3Man_4$ more rapidly than $Gal^2Man_3$. However, ${\alpha}$-galactosidase hardly acted on $Gal^{2,3}Man_5$, $Gal^2Man_6$ or $Gal^2Man_5$. The enzyme hydrolyzed melibiose to galactose and glucose, raffinose to galactose and sucrose, and also stachyose to galactose and raffinose.
This experiment was carried out to investigate the changes of casein of cheese base treated with substitute enzyme during ripening. The cheese base without enzyme treatment(control, D)and cheese base treated with only calf rennet(A), cheese base treated with mixed enzyme(calf rennet :porcine pepsin 1:1, B), cheese base treated with only porcine pepsin(C) were manufactured. The changes of casein were analyzed by means of HPLC and electrophoresis as experimental parameters during ripening. Gel filtration(HPLC) of casein by Superose 12 column in Cheddar cheese showed 5 fractions immediately after manufacturing and 8 fractions after six months ripening. Though D showed no difference in number of fraction(4 fraction) during 8 weeks ripening, A, B, C have represented the change of fraction number 4 to 5, 4 to 7, 4 to 8, respectively. As the mixing ratio of porcine pepsin increased, higher degradability of casein appeared. After 8 weeks ripening, electrophoresis of casein in cheese base showed three bands as an ${\alpha}$$_{s1}$casein from A and five bands from B, C. In case of D one major band and two minor bands were appeared as an ${\alpha}$$_{s1}$-casein. As the additional level of porcine pepsin increased the concentration of ${\beta}$-casein band decreased. however, that of ${\gamma}_1$${\gamma}_2$-casein band increased and para-${\kappa}$-casein band appeared from A, B, C, except D.
Kim, Yeong-Shik;Hahn, Bum-Soo;Cho, So-Yean;Chang, Il-Moo
Toxicological Research
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v.17
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pp.97-104
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2001
Three types of proteases (MEF-1, MEF-2 and MEF-3) were purified from the egg cases of Ten-odera sinensis using ammonium sulfate fractionation, gel filtration on Bio-Gel P-60 and affinity chromatography on DEAE Affi-Gel blue gel. The proteases were assessed homogeneous by SDS-polyacrylamide gel electrophoresis and have molecular weight of 31,500, 32,900 and 35,600 Da, respectively. The N-terminal regions of the primary structure were compared and they were found to be different each other. MEFs readily digested the $A\alpha$ - and B$\beta$-chains of fibrinogen and more slowly the ${\gamma}$-chain. The action of the enzymes resulted in extensive hydrolysis of fibrinogen and fibrin, releasing a variety of fibrinopeptides. MEF-1 was inactivated by Cu$^{2+}$ and Zn$^{2+}$ and inhibited by PMSF and chymostatin. MEF-2 was inhibited by PMSF, TLCK. soybean trypsin inhibitor. MEF-3 was only inhibited by PMSF and chymostatin. Antiplasmin was not sensitive to MEF-1 but antithrombin III inhibited the enzymatic activity qf MEF-1. MEF-2 specifically bound to anti plasmin Among the chromogenic protease substrates, the most sensitive one to the hydrolysis of MEFs was benzoyl-Phe-Val-Arg-p-nitroanilide with maximal activity at pH 7.0 and 3$0^{\circ}C$. MEF-1 preferentially cleaved the oxidized B-chain of insulin between Leu15 and Tyr16. In contrast, MEF-2 specifically cleaved the peptide bond between Arg23 and Gly24. D-dimer concentrations increased on incubation of cross-linked fibrin with MEF-1, indicating the enzyme has a strong fibrinolytic activity.ity.
The German cockroach(Blattelia germanica) population~ were successIVely selected with ch\orpyrifos and permethrin during the six generations. The resulting resistant $R_{chtorpenfos}$(Rc) and $R_{permethnn}$(Rp) stra.ins were studied to investigate the esterase activity by spectrophotometer, filter parper test, and electrophoresis. Esterase-$\alpha$ activities by filter paper test showed 2.65 and LBZ times higher in the Rc and Rp strains than the susceptible strain, respectively. ln the spectrophoLometer method, the esterase activit18s to $\alpha$-and $\beta$-naphthyl acetate were increased 2.34 and 5.28 times in the Rc than susceptible strain, and 1.48 and 2.92 times in the Rp Limn susceptible stram, respectlvely. Zymogram patterns of eslerase isozyme by agarose gel electrophoresis showed totally five bands. The Rc and Rp strains showed two additive bands as, Est-2 and Est-3, which were not shown in the susceptible strain. but the Rp strain dId not show Est-5 bands which was COlumon in the Rc and susceptible strams.
Biochemical polymorphisms of sow's milk proteins, $\beta$-casein ($\beta$-CN), $\beta$-lactoglobulin ($\beta$-LG), post-lactoglobulin (post-LG), $\alpha$-lactalbumin ($\alpha$-LA) and X-protein, as genetic markers for major pig breeds (Landrace, Yorkshire, Duroc, Hampshire and cross bred) in Korea were determined by starch gel electrophoresis. Phenotype and gene frequencies at all marker loci were estimated and genetic differences among breed populations were analyzed. Three $\beta$-CN phenotypes (AA, AB and BB) controlled by two codominant alleles (${\beta}-CN^A$ and ${\beta}-CN^B$), four $\beta$-LG phenotypes (AA, AC, $AC^{\pm}$ and CC) controlled by two codominant alleles (${\beta}-LG^A$ and ${\beta}-LG^C$) and ten X-protein phenotypes (AA, BB, CC, DD, AB, AC, AD, BC, BD and CD) controlled by four codominant alleles ($X^A,\;X^B,\;X^C\;and\;X^D$) were identified. In addition, a genetically controlled polymorphism of post-LG was found for the first time in sow's milk protein. Three different phenotypes (AA, AB and BB) were designated $post-LG^A$ and $post-LG^B$. Of the five marker loci examined, $\alpha$-LA locus was observed to lack any individual variation in all breeds studied. All populations were in Hardy-Weinberg equilibrium for all loci. There were marked breed differences for phenotype and gene frequencies in the post-LG and X-protein marker loci. However, there were little differences between breeds in the gene frequencies at the $\beta$-CN and $\beta$-LG marker loci.
Jun, Nu-Lee;Kim, Mi-Na;Jeong, Jae-Sim;Kim, Yang-Soo;Kim, Ellen Ai-Rhan;Kim, Ki-Soo;Pi, Soo-Young
Clinical and Experimental Pediatrics
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v.49
no.2
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pp.150-156
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2006
Purpose : The aims of this study included assessment of molecular-epidemiologic features during an outbreak of colonization of extended spectrum ${\beta}$-lactamase producing Klebsiella pneumoniae(ESBL-KPN) and re-evaluation of their colonized status one year later. Methods : Rectal swab cultures for ESBL-KPN from all hospitalized infants and newly admitted infants were obtained during the outbreak of colonization from July to December, 2000. The pattern of XbaI-digested chromosomal DNA of isolates were analyzed by pulsed-field gel electrophoresis. Weekly rectal swab cultures were obtained during the outbreak until patients were either discharged or decolonized. Patients discharged after being colonized had follow up stool cultures a year later. Results : A total of 80 patients(28.5 percent) were colonized. Of those, 53 whose pulsed-field gel electrophoresis(PFGE) was possible only once, were ESBL-KPN grouped into six cluster clones and 10 single clones : 28 patients(52.8 percent) were colonized with type A, the most common clone, followed by type B in 11 patients(20.8 percent). Of those 12 patients in whom serial PFGE was done more than twice, type A was predominant. Narrowed-down in strains occurred from types A, B, C, D and three single clones at initiation of the study into types A and type B after three months of strict infection control. Among 75 patients(93.7 percent) who were sent home after being colonized, 30 patients were re-called for stool cultures a year later : All of them were decolonized. Conclusion : This study demonstrates the importance of infection control as the diversity of ESBL-KPN strains could be narrowed into fewer strains. Colonization of ESBL-KPN could be reversed upon return to the community.
A thermostable $\beta$-glycosidase gene, tfi $\beta$-gly, was cloned from the genomic library of Thermus filiformis Wai33 A1. ifi $\beta$-gly consists of 1,296 bp nucleotide sequence and encodes a polypeptide of 431 amino acids. It shares a strong amino acid sequence similarity with the $\beta$-glycosidases from other Thermus spp. belonging to the glycosyl hydrolase family 1. In the present study, the enzyme was overexpressed in Escherichia coli BL21 (DE3) using the pET21b(+) vector system. The recombinant enzyme was purified to homogeneity by heat treatment and a $Ni^{2+}$-affinity chromatography. Polyacrylamide gel electrophoresis (PAGE) showed that the recombinant Tfi $\beta$-glycosidase was a monomeric form with molecular mass of 49 kDa. The temperature and pH range for optimal activity of the purified enzyme were 80- $90^{\circ}C$ and 5.0-6.0, respectively. Ninety-three percent of the enzyme activity was remained at $70^{\circ}C$ after 12 h, and its half-life at $80^{\circ}C$ was 6 h, indicating that Tfi $\beta$-glycosidase is highly thermostable. Based on its K_m$, or $K_{cat}K_m$, ratio, Tfi $\beta$-glycosidase appeared to have higher affinity for $\beta$-D-glucoside than for $\beta$-D-galactoside, however, $K_{cat} for \beta$-D-galactoside was much higher than that for $\beta$-D-glucoside. The activity for lactose hydrolysis was proportionally increased at $70^{\circ}C$ and pH 7.0 without substrate inhibition until reaching 250 mM lactose concentration. The specific activity of Tfi TEX>$\beta$-glycosidase on 138 mM lactose at $70{^\circ}C$ and pH 7.0 was 134.9 U/mg. Consequently, this newly cloned enzyme appears to have a valuable advantage of conducting biotechnological processes at elevated temperature during milk pasteurization in the production of low-lactose milk.
Background: Minor ginsenosides, those having low content in ginseng, have higher pharmacological activities. To obtain minor ginsenosides, the biotransformation of American ginseng protopanaxadiol (PPD)-ginsenoside was studied using special ginsenosidase type-I from Aspergillus niger g.848. Methods: DEAE (diethylaminoethyl)-cellulose and polyacrylamide gel electrophoresis were used in enzyme purification, thin-layer chromatography and high performance liquid chromatography (HPLC) were used in enzyme hydrolysis and kinetics; crude enzyme was used in minor ginsenoside preparation from PPD-ginsenoside; the products were separated with silica-gel-column, and recognized by HPLC and NMR (Nuclear Magnetic Resonance). Results: The enzyme molecular weight was 75 kDa; the enzyme firstly hydrolyzed the C-20 position 20-O-${\beta}$-D-Glc of ginsenoside Rb1, then the C-3 position 3-O-${\beta}$-D-Glc with the pathway $Rb1{\rightarrow}Rd{\rightarrow}F2{\rightarrow}C-K$. However, the enzyme firstly hydrolyzed C-3 position 3-O-${\beta}$-D-Glc of ginsenoside Rb2 and Rc, finally hydrolyzed 20-O-L-Ara with the pathway $Rb2{\rightarrow}C-O{\rightarrow}C-Y{\rightarrow}C-K$, and $Rc{\rightarrow}C-Mc1{\rightarrow}C-Mc{\rightarrow}C-K$. According to enzyme kinetics, $K_m$ and $V_{max}$ of Michaelis-Menten equation, the enzyme reaction velocities on ginsenosides were Rb1 > Rb2 > Rc > Rd. However, the pure enzyme yield was only 3.1%, so crude enzyme was used for minor ginsenoside preparation. When the crude enzyme was reacted in 3% American ginseng PPD-ginsenoside (containing Rb1, Rb2, Rc, and Rd) at $45^{\circ}C$ and pH 5.0 for 18 h, the main products were minor ginsenosides C-Mc, C-Y, F2, and C-K; average molar yields were 43.7% for C-Mc from Rc, 42.4% for C-Y from Rb2, and 69.5% for F2 and C-K from Rb1 and Rd. Conclusion: Four monomer minor ginsenosides were successfully produced (at low-cost) from the PPD-ginsenosides using crude enzyme.
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[게시일 2004년 10월 1일]
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