The enzymes lytic to red yeast cell wall, which were produced by Penicillium lilacinum ATCC 36010 and Bacillus pumilus No 41, hydrolyzed an extracellular mannan from Rhodotonla glutinis IFO 0695. mannan was arranged with $\beta$-1,3 and $\beta$-1,4 linkages alternatively. Using this mannan, substrate specificities of these enzymes were investigated. The one from Penicillium lilacinum was an unique mannanase which hydrolyzed $\beta$-1,3 mannoside bond and the other from B. pumilus was a new type of mannanase which cleaved $\beta$-1,4 mannoside bond with requirement of the existence of $\beta$-1,3 linkage on the reducing side. Both enzymes released two kinds of oligosaccharide from mannan, respectively. However, the enzyme from Pen lilacinum produced tetrasaccharide and disaccharide and one of them, tetrasaccharide, was hydrolyzed to disaccharide further. The one from B. pumilus released tetrasaccharide and hexasaccharide from mannan finally.
A bacteria strain producing extracellular $\beta$-mannanase was isolated from soil and was identified as Aeromonas sp. A genomic DNA library constructed from Aeromonas, sp that secrets a $\beta$-mannanase was screened for mannan hydrolytic acticity. Recombinant $\beta$-mannanase activity was detercted on the basis of the clear zones around Escherichia coli colonies grown on a LB medium supplemented locust bean gum, EcoRI restriction analysis of plasmid prepared from recombinant E. coli which showed a $\beta$-mannanase activity revealed 10 kb DNA insert, The optimum pH and temperature for the activity of reconmbinant $\beta$-mannanase were 6.0 and $50^{\circ}C$ respectively and were identical to those of the native enzyme.
Park, Byung Tae;Kim, Byung Sun;Park, Heajin;Jeong, Jaehoon;Hyun, Hanbit;Hwang, Hye Seong;Kim, Ha Hyung
The Korean Journal of Physiology and Pharmacology
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v.17
no.6
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pp.547-551
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2013
We recently reported a Philyra pisum lectin (PPL) that exerts mitogenic effects on human lymphocytes, and its molecular characterization. The present study provides a more detailed characterization of PPL based on the results from a monosaccharide analysis indicating that PPL is a glycoprotein, and circular dichroism spectra revealing its estimated ${\alpha}$-helix, ${\beta}$-sheet, ${\beta}$-turn, and random coil contents to be 14.0%, 39.6%, 15.8%, and 30.6%, respectively. These contents are quite similar to those of deglycosylated PPL, indicating that glycans do not affect its intact structure. The binding properties to different pathogen-associated molecular patterns were investigated with hemagglutination inhibition assays using lipoteichoic acid from Gram-positive bacteria, lipopolysaccharide from Gram-negative bacteria, and both mannan and ${\beta}$-1,3-glucan from fungi. PPL binds to lipoteichoic acids and mannan, but not to lipopolysaccharides or ${\beta}$-1,3-glucan. PPL exerted no significant antiproliferative effects against human breast or bladder cancer cells. These results indicate that PPL is a glycoprotein with a lipoteichoic acid or mannan-binding specificity and which contains low and high proportions of ${\alpha}$-helix and ${\beta}$-structures, respectively. These properties are inherent to the innate immune system of P. pisum and indicate that PPL could be involved in signal transmission into Gram-positive bacteria or fungi.
1) Three ${\beta}-1$, 4-mannanases were isolated from germinated guar bean through extraction, ammonium sulfate fractionation, column chromatography on cellulose derivatives and gel filltration on Sephadex G-100. They were designated as ${\beta}-1$, 4-mannanase A,B and C, respectively, in the order of isolation. 2) These enzymes were different in several aspects such as pH optimum, effect of metal ions, adsorbability on cellulose derivatives, molecular weight, Michaelis constant toward reduced ivory nut mannan A, mode of action and extent of hydrolysis of the mannan. 3) ${\beta}-1$, 4-Mannanases A and C were proposed to be two different endo-enzymes of random-splitting type producing a series of oligosaccharides from ${\beta}-1$, 4-mannans. ${\beta}-1$, 4-Mannanase B was suggested to be possibly an exe-type enzyme catalyzing a stepwise splitting from the non-reducing end of ${\beta}-1$, 4-mannans to produce mannose. 4) Guaran was subjected to hydrolysis by the purified enzymes and the consequence was discussed in connection with structural requirements of the enzymes toward substituted ${\beta}-1$, 4-mannans and their role in germinating guar seeds.
Galacto-oligosaccharides (GOS) are prebiotics that have a beneficial effect on human health by promoting the growth of probiotic bacteria in the gut, in addition to having various applications in the food industry. GOS are generally produced from lactose in a reaction catalyzed by β-galactosidase. Synthesis of GOS from whey permeate (WP) (ultrafiltration of whey, concentrated then spray dried) using surface engineered β-galactosidase in Pichia pastoris (P. pastoris) is a novel method to convert waste into a valuable product. Cell-surface display is the expression of peptides and proteins on the surface of living cells by fusing them to functional components of cells. Surface engineered cells have many potential uses. The Flo1p flocculation functional domain, thought to be located near the N terminus, recognizes and adheres non-covalently to cell-wall components such as α-mannan carbohydrates, causing reversible aggregation of cells into flocs.
A bacterial strain producing high levels of an extracellular ${eta}$-mannanase and intracellular ${eta}$-mannosidase and ${alpha}$-galactosidase was isolated from soil. The strain isolated was identified as a strain of Sporolactobacillus sp. and designated as Sporolactobacillus sp. M20l. Synthesis of ${eta}$-mannanase by Sporolactobacillus sp. M20l was induced by sucrose, maltose, or locust bean gum. The highest induction rate was obtained with 2% locust bean gum added to the culture medium as a sole carbon source. On the other hand, induction of ${eta}$-mannosidase was observed only with locust bean gum. The optimal media for the enzyme production were established as follows: for ${eta}$-mannanase; 2% locust bean gum, 0.5% peptone, 0.2% KH$_2$PO$_4$, 80 mg/l MgSO$_4$, and 8 mg/l ZnSO$_4$ (pH 6.0), and for ${eta}$-mannosidase; 2% locust bean gum, 0.5% yeast extract, 0.2% KH$_2$PO$_4$, 80 mg/l MgSO$_4$, and 8 mg/l ZnSO$_4$ (pH 5.0). The optimal culture temperatures for production of ${eta}$-mannanase and ${eta}$-mannosidase were found to be 37$^{\circ}C$ and 3$0^{\circ}C$, respectively. Under the optimal culture conditions, the production of ${eta}$-mannanase and ${eta}$-mannosidase reached the highest levels of 10.6 units/ml and 1.35 units/ml after 30 h and 24 h cultivation, respectively.
Immunomodulatory feed additives might offer alternatives to antimicrobial growth promoters in pig production. This experiment was designed to determine the effects of dietary galacto-mannan-oligosaccharide (GMOS) and chitosan oligosaccharide (COS) supplementation on the immune response in early-weaned piglets. Forty 15-day-old piglets (Duroc$\times$Landrace$\times$Yorkshire) with an average live body weight of $5.6{\pm}0.51kg$ were weaned and randomly assigned to 4 treatment groups that were fed maize-soybean meal diets containing either basal, 110 mg/kg of lincomycin, 250 mg/kg of COS or 0.2% GMOS, respectively, over a 2-week period. Another six piglets of the same age were sacrificed on the same day at the beginning of the study for sampling, in order to obtain baseline values. Interleukin (IL)-1${\beta}$gene expression in peripheral blood monocytes, jejunal mucosa and lymph nodes, as well as serum levels of IL-1${\beta}$ IL-2 and IL-6, IgA, IgG, and IgM, were evaluated for 5 pigs from each group at 15 and 28 days of age. The results indicate that weaning stress resulted in decreases in serum antibody and cytokine levels. Dietary supplementation with GMOS or COS enhanced (p<0.05) IL-1${\beta}$gene expression in jejunal mucosa and lymph nodes, as well as serum levels of IL-1${\beta}$ IL-2, IL-6, IgA, IgG and IgM compared to supplementation with lincomycin. These findings suggest that GMOS or COS may enhance the cell-mediated immune response in early-weaned piglets by modulating the production of cytokines and antibodies, which shows that GMOS or COS have different effects than the antibiotic on animal growth and health.
The objective of this study was to evaluate effects of supplementation of ${\beta}$-mannanase (CTCZYME$^{(R)}$, CTCBIO, Inc.) on feed intake, growth performance and fecal health of calves fed two levels (3% vs. 8%) of palm kernel meal (PKM). A total of nine Holstein calves were divided into three groups, and fed a conventional starter containing 3% PKM (CON), CON+0.1% CTCZYME$^{(R)}$ (TRT1), or a starter containing 8% PKM+0.1% CTCZYME$^{(R)}$ (TRT2). No clinical symptom of calves was observed through the trial. We did not find significant differences among the treatments on mean feed intake, growth performance, or fecal health during the four-week experimental period. Feed efficiency tended to be improved by adding CTCZYME$^{(R)}$ (0.46, 0.87 and 0.52 for CON, TRT1 and TRT2, respectively). Compared with CON (921 g/d and 786 g/d), TRT2 had lower feed intake (727 g/d) and average daily gain (ADG, 631 g/d) before weaning. However, feed intake (2300 g/d) and ADG (1012 g/d) were similar or even higher in TRT2 than CON (2269 g/d and 560 g/d) after weaning. This was probably due to the effect of a large amount of mannan-oligosaccharide released from PKM by ${\beta}$-mannanase. Salmonella was not detected any fecal samples. No significant difference was observed in the number of fecal E. coli or fecal properties including color, smell, and watery indexes among the treatments. We conclude that a calf starter containing 8% PKM with 0.1% CTCZYME$^{(R)}$ is comparable with a conventional starter in feed intake and growth performance of calf, which is beneficial in terms of reduction in feed cost.
A thermostable extracellular $\beta$-mannanase from the culture supernatant of a fungus Aspergillus niger gr was purified to homogeneity. SDS-PAGE of the purified enzyme showed a single protein band of molecular mass 66 kDa. The $\beta$-mannanase exhibited optimum catalytic activity at pH 5.5 and $55^{\circ}C$. It was thermostable at $55^{\circ}C$, and retained 50% activity after 6 h at $55^{\circ}C$. The enzyme was stable at a pH range of 3.0 to 7.0. The metal ions $Hg^{2+}$, $Cu^{2+}$, and $Ag^{2+}$ inhibited complete enzyme activity. The inhibitors tested, EDTA, PMSF, and 1,10-phenanthroline, did not inhibit the enzyme activity. N-Bromosuccinimide completely inhibited enzyme activity. The relative substrate specificity of enzyme towards the various mannans is in the order of locust bean gum>guar gum>copra mannan, with $K_m$ of 0.11, 0.28, and 0.33 mg/ml, respectively. Since the enzyme is active over a wide range of pH and temperature, it could find potential use in the food-processing industry.
Journal of the Korean Society of Food Science and Nutrition
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v.14
no.4
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pp.401-408
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1985
The yeast cell wall lytic action of the alkaline AL-protease, which was found out of the crude Zymolyase that a kind of yeast cell wall lytic $endo-{\beta}-1$, 3-glucanase produced from Arthrobacter luteus, was investigated with the viable cells of S. sake and it's cell wall preparation. AL-protease on the lysis of the viable yeast cells showed very low activities with the alone, but the lytic activities were highly increased with the combination of AL-protease and Zymolyase. On the stepwise treatment of the viable yeast cells with AL-protease and Zymolyase, the cells were lysed highly only by the course having a treatment with Zymolyase after pretreatment with AL-protease. Thus synergistic action of AL-protease was not observed with any some commercial enzymes, known as a type of alkaline and serine protease such as AL-protease, and was also found to be affected greatly by the culture conditions and species of the yeast tested. AL-protease caused the release of some peptide and a lot of sugar from the cell wall preparation, but could not lysed the cell wall more than 66%. Whereas Zymolyase could lysed the cell walls almost completely with alone. On the basis of these results, the synergistic action of AL-protease on the lysis of S. sake cells is hypothesized that at first AL-protease bind to the yeast cell surface layer consisting of mannan and protein, and then changes their conformation to facilitate the penetration of Zymolyase from the outside to the inside framework layer constituted of alkali insoluble ${\beta}-1,\;3-glucan$.
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