DOI QR코드

DOI QR Code

가열처리가 칡 이소플라본의 열 안정성에 미치는 영향

Effect of Heat Processing on Thermal Stability of Kudzu (Pueraria thumbergiana Bentham) Root Isoflavones

  • 최성원 (오산대학 호텔조리계열) ;
  • 김경선 (경희대학교 생명자원과학연구원 식품공학과) ;
  • 허남윤 (오산대학 호텔조리계열) ;
  • 김동섭 (부산대학교 생명자원과학대학) ;
  • 안순철 (부산대학교 의과대학 미생물학교실) ;
  • 박천석 (경희대학교 생명자원과학연구원 식품공학과) ;
  • 김병용 (경희대학교 생명자원과학연구원 식품공학과) ;
  • 백무열 (경희대학교 생명자원과학연구원 식품공학과) ;
  • 김대옥 (경희대학교 생명자원과학연구원 식품공학과)
  • Choi, Sung-Won (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Kim, Kyung-Seon (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Hur, Nam-Yun (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Kim, Kyung-Seon (College of Natural Resources and Life Sciences, Pusan National University) ;
  • Ahn, Soon-Cheol (Department of Microbiology and Immunology, and Medical Research Institute, College of Medicine, Pusan National University) ;
  • Park, Cheon-Seok (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Kim, Byung-Yong (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Baik, Moo-Yeol (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University) ;
  • Kim, Dae-Ok (Dept. of Food Science and Biotechnology, Institute of Life Science and Resources, Kyung Hee University)
  • 발행 : 2008.10.30

초록

열처리 조건 및 농도의 차이에 따른 칡 이소플라본인 daidzin과 genistin의 열 안정성에 대하여 조사하였다. Daidzin과 genistin 두 종류의 이소플라본은 처리방법에 상관없이 $140^{\circ}C$이상의 열처리 조건에서 초기 30분 동안 급격히 열 안정성이 떨어지고 그 이후 변화가 적게 나타나 처리 온도가 높을수록 열 안정성의 변화가 큰 것으로 나타났으며, genistin은 daidzin에 비해 농도차이 에 따른 변화의 차이가 크지 않은 것을 알 수 있었다. 또한 열처리 조건에 따른 반응속도는 모두 두 단계로 나타났는데, daidzin과 genistin 모두 2단계보다 1단계에서 빠른 반응속도를 보여 주었고, daidzin은 고농도 일 수록 더 빠른 반응속도를 나타내는 것을 알 수 있었으나, genistin은 농도에 따른 유의차가 적은 것을 알 수 있었다. Daidzin은 1단계의 고농도에서 온도 의존성이 높게 나타났으며 2단계는 농도에 따른 온도 의존성에 유의차가 없었다. Genistin의 경우 1단계에서는 농도에 의한 온도 의존성이 작게 나타났지만 2단계의 저농도에서 온도 의존성이 높은 것을 알 수 있었다. 농도에 따른 변화를 보면 genistin은 고농도와 저농도 모두 1단계에서 온도 의존성이 큰 것으로 나타났으며 반면 daidzin은 고농도, 저농도 모두 2단계에서 온도 의존성이 높은 것을 알 수 있었다. 또한 daidzin과 genistin 모두 $140^{\circ}C$ 이상의 열처리에 의해 이소플라본 glucosidic group이 열에 의해 가수분해되어 daidzein, genistein, glycitein, malonyl-glycitin, acetyl-genistin 등의 중간 유도체 및 aglycone이 생성되며 $140^{\circ}C$, 15 min의 처리 조건에서 대부분 가장 많은 양이 생성되는 것을 알 수 있었고, 농도 변화에 따른 함량의 증가는 유의차가 적은 것을 알 수 있었으나 그 중 malonyl daidzin의 경우 열처리 조건에 의해 따른 생성량의 차이가 큰 것을 알 수 있었다. 열처리 후 농축조건이 농축 후 열처리보다 더 많은 daidzin, genistin 유도체들을 생성시킨 것으로 보아 칡 이소플라본의 각 열처리 조건에 따른 열 안정성은 농축 후 열처리보다 열처리 후 농축이 훨씬 더 열에 안정하다는 것을 알 수 있었다. 따라서 칡 이소플라본의 열안정성은 콩 이소플라본과 유사하게 $140^{\circ}C$ 이상 열처리에 의해 가수분해반응을 보였고, 이소플라본의 중간 유도체들과 aglycone이 $140^{\circ}C$ 이상의 열처리 시 생성되었다. 따라서 칡 이소플라본의 열 안정성은 가열온도와 농도에 의해 큰 영향을 받으며, 콩 이소플라본의 열 안정성과 매우 유사한 특성을 나타내었다.

Effect of heat processing on thermal stability of kudzu root isoflavone was investigated for future use such as various processed foods and functional foods. Kudzu root extracts were heated at 80, 100, 121, 140, 165, and $180^{\circ}C$ for up to 90 minutes before and after concentration, respectively. Changes in the amount of isoflavones were monitored using HPLC and thermal stability was investigated using Arrhenius equation. The amount of both daidzin and genistin decreased slightly during heating at 80, 100 and $121^{\circ}C$ but decreased significantly above $140^{\circ}C$. This indicated that daidzin and genistin are stable at temperatures near the boiling point of water. The degradation of both daidzin and genistin occurred in two steps and each step showed typical first order kinetic. The degradation rates were faster in the first step than the second step in both daidzin and genistin. Additionally, the degradation was accelerated when they heated after concentration compared to the sample heated before concentration. These results suggested that degradation of kudzu root isoflavone was highly dependent on both their concentration and heating temperature. This study provides the basic information on thermal stability of kudzu root isoflavones, which can be used for future processing of functional foods.

키워드

참고문헌

  1. Choi, Y. B. and H. S. Shon. 1998. Isoflavone content in Korean fermented and unfermented soybean foods. Korean J. Food Sci Technol. 30, 745-750.
  2. Coward, L., M. Smith, M. Kirk and S. Barnes. 1998. Chemical modification of isoflavones in soyfoods during and processing. Am. J. Clin. Nutr. 68, 1486S-1491S. https://doi.org/10.1093/ajcn/68.6.1486S
  3. Doosan World Encyclopedia. 1999. 25, pp. 116, Doosandonga. Seoul. Korea.
  4. Eisen, B. N., Y. E. Ungar and E. Shimoni. 2003. Stability of isoflavones in soy milk stored at elevated and ambient temperatures. J. Agric. Food Chem. 51, 2212-2215. https://doi.org/10.1021/jf025783h
  5. Grun, I. U., K. Adhikari, C. Li, Y. Li, B. Lin, J. Jhang and L. N. Fernando. 2001. Changes in the profile of genistein, daidzein, and their conjugates during thermal processing tofu. J. Agric. Food Chem. 49, 2839-2843. https://doi.org/10.1021/jf010028+
  6. Han, S. H., J. B. Kim, S. G. Min and C. H. Lee. 1995. The effect of Puerariae radix catechins administration on liver function in carbon tetrachloride-treated rats. J. Korean Soc. Food Sci. Nutr. 25, 713-719.
  7. Hayakawa, J., N. Noda, S. Yamada and K. Uno. 1984. Studies on physical and chemical quality evaluation of crude drug preparation I. Analysis of Pueraria Radix and Species Puerariae. Yakugaru Zasshi. 50, 104-108.
  8. Ingham, J. L., S. Tahara and S. Z. Dziedzic. 1986. A chemical investigation of Pueraria mirifica root. Z Naturforsch. 41, 403-409.
  9. Inoue, T. and M. Fujita. 1974. Biosynthesis of isoflavone C-glycoside in Pueraria root. Chem. Pharm. Bull. 22, 1422-1429.
  10. Jackson, C. J. C., J. P. Dini, C. Lavandier, H. P. Y. Rupasinghe, H. Faulkner, V. Poysa, D. Buzzell and S. Degrandis. 2002. Effect of processing on the content and composition of isoflavones during manufacturing of soy beverage and tofu. Process Biochem. 37, 1117-1123. https://doi.org/10.1016/S0032-9592(01)00323-5
  11. Kaufman, P. B., J. A. Duke, H. Brielmann, J. Boik and J. E. Hoyt. 1997. A comparative survey of leguminous plants as sources of the isoflavones, genistein and daidzein: Implications for human nutrition and health. J. Altern. Complement. Med. 3, 7-12. https://doi.org/10.1089/acm.1997.3.7
  12. Kim, C. S., Y. S. Lee, J. S. Kim and Y. H. Hahn. 2000. High performance liquid chromatographic analysis of isoflavones in soybean foods. Korean J. Food SciI. Technol. 32, 22-30.
  13. Kim, H. Y., J. H. Hong, D. S. Kim, K. J. Kang, S. B. Han, E. J. Lee, H. W. Chung, K. H. Song, K. A. Sho, S. J. Kwack, S. S. Kim, K. L. Park, S. K. Lee, M. C. Kim, C. M. Kim and I. S. Song. 2003. Isoflavone content and estrogen activity in arrowroot Puerariae Radix. Food Sci. Biotechnol. 12, 29-35.
  14. Kim, S. R., H. D. Hong and S. S. Kim. 1999. Some properties and contents of isoflavone in soybean and soybean foods. Korea Soybean Digest. 16, 35-46.
  15. Lee, J. J. and J. W. Rhim. 2001. Determination of kinetic parameters for texture changes of sweet potatoes during heating. Korean J. Food Sci. Technol. 33, 66-71.
  16. Lee, M. H., Y. H. Park, H. S. Oh and T. S. Kwak. 2002. Isoflavone content in soybean and its processed products. Korean J. Food Sci. Techinol. 34, 365-369.
  17. Mahungu, S. M., S. Diaz-Mercado, J. Li, M. Mschwenk, K. Singletary and J. Faller. 1999. Stability of isoflavones during extrusion processing of corn/soy mixture. J. Agric. Food Chem. 47, 279-284. https://doi.org/10.1021/jf980441q
  18. Moon, B. K., K. S. Jeon and I. K. Hwang. 1996. Isoflavone contents in some varieties of soybean and on processing conditions. Korean J. Soc Food Sci. 12, 527-534.
  19. Murphy, P. A., T. Song, G. Buseman, K. Barua, G. R. Beecher, D. Trainer and J. Holden. 1999. Isoflavones in retail and institutional soy foods. J. Agric. Food Chem. 47, 2697-2704. https://doi.org/10.1021/jf981144o
  20. Oh, J., K. S. Lee, H. Y. Son and S. Y. Kim. 1990. Antioxidative components of Pueraria root. Korean J. Food Sci. Technol. 22, 793-800.
  21. Wang, H. and P. A. Murphy. 1994. Isoflavone composition of American and Japanese soybeans in Iowa: Effects of variety, crop year, and location. J. Agric. Food Chem. 42, 1674-1677. https://doi.org/10.1021/jf00044a017
  22. Wang, H. J. and P. A. Murphy. 1996. Mass balance study of isoflavones during soybean processing. J. Agric. Food Chem. 44, 2377-2383. https://doi.org/10.1021/jf950535p
  23. Wang, C., Q. Ma, S. Pagadala, M. S. Sherrard and P. G. Krishnan. 1998. Changes of isoflavone during processing of soy protein isolates. J. Am. Oil Chem. Soc. 75, 337-341. https://doi.org/10.1007/s11746-998-0050-7
  24. Keung, W.-M. and B. L. Vallee. 1993. Daidzein a potent selective inhibitor of human mitochondrial aldehyde dehydrogenase. Proc. Natl. Acad. Sci. USA. 90, 1247-1251. https://doi.org/10.1073/pnas.90.4.1247
  25. Xu, Z. M., Q. J. Wu and J. S. Godber. 2002. Stability of daidzin, glycitin and generation of derivatives during heating. J. Agric. Food Chem. 50, 7402-7406. https://doi.org/10.1021/jf025626i
  26. Zeng, C. Y., L. Y. Zhang, Y. P. Zhou and L. L. Fan. 1982. Pharmacological studies on Pueraria radix. Clin. Med. J. 95, 145-150.