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Antitumor and Immuno-modulatory Effect of Crude Polysaccharides from Fruiting Body of Tremella aurantialba Against Mouse Sarcoma 180

생쥐의 Sarcoma 180에 대한 금목이(Tremella aurantialba) 자실체 추출 조다당류의 항암 및 면역조절 효과

  • Published : 2008.06.30
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Abstract

Tremella aurantialba, one of edible and medicinal mushrooms belonging to Tremellaceae of Basidiomycota, has been known to have outstanding curing effects on coughing, tracheitis and hypertension of humans and antitumor activity on the sarcoma 180 and Erhrlich carcinoma of mice. Neutral saline soluble (0.9% NaCl), hot water soluble and methanol soluble substances (hereinafter referred to Fr. NaCl, Fr. HW and Fr. MeOH, respectively) were extracted from fruiting body of the mushroom. In vitro cytotoxicity tests showed that all crude polysaccharides extracted from the fruiting body were not cytotoxic against cancer cell lines such as RAW 309 CR.1 and Sarcoma 180 at the concentration of $2000\;{\mu}g/ml$. Intraperitoneal injection with crude polysaccharides exhibited life prolongation effect of $11.1{\sim}66.7%$ in mice inoculated with Sarcoma 180. Fr. MeOH improved the immunopotentiation activity of B lymphocyte by increasing the alkaline phosphatase activity by 1.16 folds at the concentration of $200\;{\mu}g/ml$. In case of Fr. HW, the numbers of peritoneal exudate cells and circulating leukocytes were increased by 1.42 and 2.87 folds, respectively.

금목이의 자실체로부터 중성염용액, 열수 및 메탄올을 이용하여 조다당류를 추출하였다. 세포독성 실험결과, 각각의 조다당류는 $2000\;{\mu}g/ml$의 농도에서 마우스 대식세포 RAW 309 Cr.1와 육종암세포 Sarcoma 180에 대하여 세포독성은 나타나지 않았다. Sarcoma 180가 접종된 ICR mice에 각각의 조다당류를 주사하여 평균 수명 연장 효과를 조사한 결과 실험군은 수명이 대조군에 비해 각각 $11.1{\sim}66.7%$ 연장되었다. 메탄올으로 추출한 조다당류를 $200\;{\mu}g/ml$ 투여한 생쥐의 B 임파구 alkaline phosphatase의 활성은 대조군에 비해 약 1.16배 증가하는 것으로 나타났다. 열수 추출 조다당류를 투여한 생쥐의 복강의 총 세포 수는 대조군에 비하여 최고 1.42배 증가하였으며, 혈액 중 백혈구의 수도 대조군에 비하여 약 2.87배 증가하였다. 또한 면역과 관련된 장기인 간 비장 및 흉선의 무게는 대조군에 비하여 소폭 증가하였다.

Keywords

References

  1. 구현옥, 김인천, 박신자, 정상희, 박종명, 이재진, 유한상, 이영순. 1999. 신령버섯(Agaricus blazei Murill)에서 분리한 다당체의 Staphylococcus aureus 감염 및 마우스 Sarcoma 180 종양세포 에 대한 방어효과. 한국실험동물학회지 15:155-158
  2. 김상범, 이건우, 김혜영, 심미자, 노현수, 이현숙, 이민웅, 이우윤, 이태수. 2006. 뽕나무버섯(Armillaria mellea)의 자실체에서 추 출한 조다당류가 생쥐의 Sarcoma 180에 미치는 억제효과. 한국균학회지 34:98-104 https://doi.org/10.4489/KJM.2006.34.2.098
  3. 박상신, 이갑득, 민태진. 1995. 버섯 중 항균물질의 검색 및 개발 에 관한 연구. 그람음성균 및 곰팡이에 대한 항균물질의 검색 (2보). 한국균학회지 23:176-189
  4. 박완희, 이호득. 1991. 한국의 버섯. 교학사
  5. 박완희, 이호득. 1999. 한국약용버섯도감. 교학사
  6. 심성미, 임경환, 이우윤, 김정완, 심미자, 이민웅, 이태수 2003a. 매미눈꽃동충하초(Paecilomyces sinclairii)에서 추출한 조다당 류의 면역활성 및 항암효과에 관한 연구. 한국균학회지 31: 155-160
  7. 심성미, 임경환, 김정완, 이우윤, 김하원, 이민웅, 이태수 2003b. 삼색도장버섯(Daedaleopsis tricolor)에서 추출한 조다당류의 면역활성 및 항암효과. 한국균학회지 31:161-167
  8. 오윤희, 이우윤, 이민웅, 심미자, 이태수. 2004. 저령(Grifola umbellata)의 균핵에서 추출한 조다당류의 면역활성 및 항암 효과. 한국균학회지 32:23-30
  9. 오윤희, 김상범, 이건우, 김혜영, 심미자, 노현수, 이현숙, 이민웅, 이우윤, 이태수. 2006. 흰목이(Tremella fuciformis)에서 추출 한 조다당류의 면역 활성 및 항암 효과. 한국균학회지 34:105-111 https://doi.org/10.4489/KJM.2006.34.2.105
  10. 이병우, 이명섭, 박기문, 김창한, 안평욱, 최춘언. 1992. 운지버섯 균사체 추출물의 항암효과에 관한 연구. 한국산업미생물학회지 20:311-320
  11. 조수묵, 이재훈, 한상배, 김환묵, 유승헌, 유익동. 1995a. Fomitella fraxinea로부터 분리한 면역활성 다당류(I)-중성염 용액 추출 다당류의 특성. 한국균학회지 23:332-339
  12. 조수묵, 이재훈, 한상배, 김환묵, 유승헌, 유익동. 1995b. Fomitella fraxinea로부터 분리한 면역활성 다당류(II)-열수추출 다당류의 분리 및 특성. 한국균학회지 23:340-347
  13. 진미림. 1996. 잣버섯 성분의 면역세포 및 전사인자의 활성화 작 용에 관한 연구. 서울대학교 대학원 논문집. pp. 1-121
  14. 水野 卓, 川合正允. 1992. キノコの化學.生物學. 學會出版センタ
  15. 卯曉嵐. 2000. 中國大型眞菌. 河南科學技術出版社
  16. Arthur, C. and Guyton, M. D. 1986. Textbook of medical physiology. 7th Ed. W. B. Saunder company. pp. 51-59
  17. Chihara, G., Hamuro, G., Meada, Y., Arai, Y. and Fukoka, F. 1970. Antitumor polysaccharide derived chemically from natural glucan (Pachman). Nature 225:973-948
  18. Chihara, G., Maeda, Y., Hamuro, J., Sasaki, T. and Fukuoka, F. 1969. Inhibition of mouse sarcoma 180 by polysaccharides from Lentinus edodes (Berk.) Sing. Nature 222:687-688 https://doi.org/10.1038/222687a0
  19. Choi, S. H., Jun, C. D., Lee, B., S., Park, S. D., Oh, J. S. and Chung, H. T. 1993. Effect of various extrinsic and intrinsic factors on the nitric oxide production of murine macrophage. Kor. J. BRM. 3:15-22
  20. Denizot, F. and Lang, R. 1986. Rapid colorimetric assay for cell growth and survival modifications to the tetrazolium dye procedure giving improved sensitivity and reliability. J. Immunol. Methods 89:271-277 https://doi.org/10.1016/0022-1759(86)90368-6
  21. Fisher, M. and Yang, L. X. 2002. Anticancer effects and mechanism of polysaccharide-K(PSK): implications of cancer immunotherapy. Anticancer Res. 22:1737-1754
  22. Gregory, F. J., Healy, E. M., Agerborg, H. P. and Warren, G. H. 1996. Studies on antitumor sustances produced by basidiomycetes. Mycologia 58:80-88
  23. Gross, R. L. and Newberne, P. M. 1980. Role of nutrition in immunologic function. Physiol. Rev. 60:188-302 https://doi.org/10.1152/physrev.1980.60.1.188
  24. Hamuro, J. and Chihara, G. 1984. Lentinan, T-cell oriented immunopotentiator; its experimental and clinical application and possible mechanism of immune modulation, In immune modulation agent and their mechanisms. Marcel Dekker. pp. 409-437
  25. Kim, B. K., Chung, H. S., Chung, K. S. and Yang, M. S. 1980. Studies on the antineoplastic components Korean Basidiomycetes. Kor. J. Mycol. 8:107-113
  26. Kim, B. K., Park, E. K. and Shim, M. J. 1979. Studies on constituents of higher fugni of Korea (XXIV), antineoplastic activities of Coriolus vesicolor (Fr.) Quél, Pleurotus ostreatus (Fr.) Kummer and Lentinus edodes (Berk.) Sing. Arch. Pharm. Res. 2:145-149 https://doi.org/10.1007/BF02959042
  27. Komatsu, N., Okubo, S., Kikumoto, S., Kimura, K. and Saito, G. 1969. Host-mediated antitumor action of schizophyllan, a glucan produced by Schizophyllum commune. Gann. 60:137-44
  28. Lee, H. W., Lee, D. W., Ha, H. C. and Lee, J. S. 2002. Antioxidant activities of the mycelium and culture broth of Phellinus igniarius and Agrocybe cylindracea. Kor. J. Mycol. 30:37-43 https://doi.org/10.4489/KJM.2002.30.1.037
  29. Mossman, B. T. 1983. In vitro approaches for determining mechanisms of toxicity and carcinogenicity by asbestos in the gastrointestinal and respiratory tracts. Environ. Health Perspect. 53:155-161 https://doi.org/10.2307/3429628
  30. Ohno, N., Arai, Y., Suzuki, I. and Yadomae, T. 1986. Induction of alkaline phosphatase activity in murine spleen cells treated with various mitogens. J. Phamacobio-Dyn. 9:593-599 https://doi.org/10.1248/bpb1978.9.593
  31. Roland, J. F., Chmielewicz, Z. F., Weiner, B. A., Gross, A. M., Boenong, O. P., Luck, J. V., Bardos, T. J., Rerlly, H. C., Sugiura, K., Stock, C. C., Lucas, E. H., Byerrum, R. U. and Stevens, J. A. 1960. Calvacine, a new antitumor agent. Science 132:1987
  32. Stevens, J. A. 1960. Calvacine, a new antitumor agent. Science 132:1987
  33. Sugihara, T., Yoshioka, Y. and Nishioka, K. 1972. Anticomplementary activity of antitumor polysacchrides. Nature New Biology 235:59-60
  34. Suzuki, M., Arika, T., Amemiya, T. and Fujiwara, M. 1982. Cooperative role of T lymphocytes and macrophages in antitumor activity of mice pretreated with schizophyllan. Jpn. J. Exp. Med. 50:59-65
  35. Tsugagoshi, S. and Ohashi, F. 1974. Protein-bound polysaccaride preparation, PS-K, effective against mouse sarcoma 180 and rat ascites hepatoma AH-13 by oral use. Gann. 65:557
  36. Wasser, S. P. 2002. Medicinal mushrooms as a source of antitumor and immunmodulationg polysaccharides. Appl. Microbiol. Biotechnol. 60:258-274 https://doi.org/10.1007/s00253-002-1076-7
  37. Weir, D. W., Herzenberg, L. A. and Blackwell, C. 1986. Handbook of experimental immunology. 4th ed. Blackwell Scientific Publications, Boston. p. 601
  38. Ying, J. Z., Mao, X. L., Ma, Q. M., Zong, Y. C. and Wen, H. A. 1987. Icons of medicinal fungi from China. Science Press, Beijing, China
  39. Yoshioka, Y., Emori, M., Ikekawa, T. and Fukuoka, F. 1975. Isolation, purification, and structure of components from acidic polysaccharides of Pleurotus ostreatus Fr.. Quel. Carbohydr. Res. 43:305-320 https://doi.org/10.1016/S0008-6215(00)83495-3

Cited by

  1. Antitumor and Immuno-potentiating Activity against Mouse Sarcoma 180 by Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Tricholoma matsutake vol.18, pp.9, 2008, https://doi.org/10.5352/JLS.2008.18.9.1290
  2. Immuno-stimulating and Antitumor Effects of Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Grifola frondosa vol.39, pp.1, 2011, https://doi.org/10.4489/KJM.2011.39.1.068
  3. Antitumor and Immuno-potentiating Activities of Crude Polysaccharides from Fruiting Body of Agaricus brasiliensis vol.39, pp.1, 2011, https://doi.org/10.4489/KJM.2011.39.1.057
  4. Immuno-stimulating and Antitumor Effects on Mouse Sarcoma 180 by Crude Polysaccharides Extracted from Fruiting Body of Hericium erinaceus vol.20, pp.4, 2010, https://doi.org/10.5352/JLS.2010.20.4.623
  5. Antitumor and Immunostimulating Activities ofElfvingia applanataHot Water Extract on Sarcoma 180 Tumor-bearing ICR Mice vol.40, pp.1, 2012, https://doi.org/10.5941/MYCO.2012.40.1.047
  6. Antioxidant and immunostimulatory activities of polysaccharides extracted from Tremella aurantialba mycelia vol.14, pp.5, 2016, https://doi.org/10.3892/mmr.2016.5794
  7. Effect of Flammulina velutipes Extracts Cultivated with Oriental Herbal Plants on the Activation of Immune Cells vol.22, pp.6, 2012, https://doi.org/10.5352/JLS.2012.22.6.828