기존 송이 균환(菌環)을 이용한 송이균 감염 소나무의 생산 및 이식

Production and Transplanting of Ectomycorrhizal Pine Seedlings Using the Old Fairy Ring of Tricholoma matsutake

  • 가강현 (국립산림과학윈 화학미생물과) ;
  • 허태철 (경북대학교 임학과) ;
  • 박현 (국립산림과학윈 화학미생물과) ;
  • 김희수 (국립산림과학윈 화학미생물과) ;
  • 박원철 (국립산림과학윈 화학미생물과) ;
  • 윤갑희 (국립산림과학윈 화학미생물과)
  • Ka, Kang-Hyeon (Division of Wood Chemistry and Microbiology, Korea Forest Research Institute) ;
  • Hur, Tae-Chul (Department of Forestry, Kyungpook University) ;
  • Park, Hyun (Division of Wood Chemistry and Microbiology, Korea Forest Research Institute) ;
  • Kim, Hee-Su (Division of Wood Chemistry and Microbiology, Korea Forest Research Institute) ;
  • Bak, Won-Chull (Division of Wood Chemistry and Microbiology, Korea Forest Research Institute) ;
  • Yoon, Kap-Hee (Division of Wood Chemistry and Microbiology, Korea Forest Research Institute)
  • 투고 : 2006.04.10
  • 심사 : 2006.11.30
  • 발행 : 2006.12.30

초록

야외에서 새로운 송이균환을 만들기 위하여 2000년부터 2005년까지 소나무를 이용한 송이 감염묘 생산과 이식 및 이식 후 송이 균의 활착을 높일 수 있는 방법을 연구하였다. 송이 간염묘 생산을 위해서는 11월에 균환 선단에 심을 경우 활착률 97%를 나타낸 반면 4월에 심을 경우에는 활착률이 80%를 나타냈다. 송이균의 감염은 식재 후 2년 이상 경과하여야 완전히 이루어지는 것으로 나타났으며, 천연치수를 이용한 경우는 17.6%의 송이균 생존률을 나타낸 반면, 양묘를 이용한 경우는 송이균의 생존율이 극히 낮았다. 한편, 생산된 감염묘의 이식 시 송이균의 생존율은 4월에 이식할 경우 22%, 10월과 11월에 이식할 경우에는 5%를 나타냈다. 이식한 송이 감염묘에서 송이균의 생존은 이식전 50% 내외의 송이균 감염율을 가진 감염묘가 가장 높은 생존율을 니타냈다. 이식한 송이 감염묘에서 송이균의 생존 여부 확인을 위하여 송이 감염묘를 완전히 파내어 확인하는 방법은 살아있던 송이균도 이후에 사멸하게 되는 원인이 되었다. 이에 따라 이식한 감염묘의 송이균 확인은 색대를 이용하는 방법을 도입하였으며, 이식 후 2년 이상 경과한 후에 검정하는 것이 송이균의 생존에 유리할 것으로 판단되었다.

To make a new fairy ring of Tricholoma matsutake in situ, the way of production and transplanting of ectomycorrhizal seedlings of T. matsutake using Pinus densiflora was investigated after transplanting from 2000 to 2005 as well as the method to improve their survival rate for the fungus. For the production of ectomycorrhizal pine seedlings, the seedlings planted at the edge of fairy ring of T. matsutake in November showed 97% of the survival rate, while those planted in April showed 80% of the rate. For the complete infection of the T. matsutake, it required more than two years after planting. The infection rate of mycelia for the ectomycorrhizal seedlings was 17.6% when the natural seedlings were used, whereas it was relatively low when the seedlings prepared from the nursery were used. The survival of T. matsutake mycelium reached up to 22% by the transplanting in April, while the mycelium transplanted in October and November showed less than 5% of the survival. The survival of T. matsutake on the transplanted seedlings was the highest in the seedlings having 50% of infection rate before transplanting. Excavation of the ectomycorrhizal seedling to examine the vitality of ectomycorrhizal roots of T. matsutake resulted in the perishing of them. Therefore, the method using a 'rice bag triers' to check living mycelium of T. matsutake without digging of transplanted seedlings was introduced in this study. In addition, it is recommended that the examination has to be conducted at least two years after transplanting.

키워드

과제정보

연구 과제번호 : 송이 생산성 향상을 위한 재배기술 개발

연구 과제 주관 기관 : 농림부

참고문헌

  1. 가강현,구창덕. 2002. 송이 인공재배 연구를 향한 질문들. Trends in Agriculture & Life Scienee 2(1): 1-6
  2. 가강현,박 현,허태철,여운홍,박원철. 2002. 소나무를 이용한 송이 균근 합성. 2002년도 한국임학회 학술 연구 발표논문집 pp. 235-236
  3. 가강현. 2001. 송이의 생장 특성과 기생균에 관한 연구. 동국대학교 박사학위논문 pp.105
  4. 박 현,김교수,구창덕. 1995. 한국에서 9월의 기상인자가 송이 발생에 미치는 영향과 그 극복방안 한국임학회지 84(4): 479-488
  5. 이태수,김교수, 심우섭,김세현,주영환,오세원,조재명,이지열. 1984. 송이 인공증식에 관한 연구(I) 임시연보 31: 109-123
  6. 임업연구원. 1999. 소냐무 소나무림. 서울. 삼우인쇄사. 205pp
  7. 허태철,박 현,정진현,주성현. 1998. 송이 균환의 발달에 따른 토양의 이화학적 특성과 탈수소효소의 활상변화 한국임학회지 87(2): 270-275
  8. 枯木熊人. 1980. ポ.., トを利用したマツタケ 菌感染苗の育成 (I). 廣島縣立林業試驗場昭究報告 第15: 49-64
  9. 富永保人. 1978. マツタケ栽培の實際. 養賢當. pp. 171
  10. 浜田 稔,小原 弘之. 1984. マツタケ -人工增殖の試み-. 農山漁村文化協會. pp. 142
  11. 小川 眞,梅原武夫,紺谷修治,山路木曾男. 1978. マツタケ菌の增殖法 (I) マツタケ 感染苗の育成法. 日林誌 60: 119-128
  12. 小川 眞,伊藤 武. 1989. マツタケは栽培できるか. 林業改良普及書 102. 全國林業改良普及協會 pp. 181
  13. 鳥越 茂. 1998. 菌根菌越培-林地から施設まで-: マツタケとその他菌根菌の林地越培の步み. 日菌報 39: 113-116
  14. マツタケ硏究懇話會. 1983. マツタケ山のつくら方. 柱式會社 創文. pp. 163
  15. Bergius, N. and Danell, E. 2000. The Swedish matsutake (Lricholoma nauseosum syn. T. matsutake): Distribution, abundance and ecology. Scand. J. For. Res. 15: 318-325 https://doi.org/10.1080/028275800447940
  16. Inaba, K., Yoshida, T., Takano, Y., Mayuzumi, Y., Mitsunaga, T. and Koshijima, T. 1995. An instance of the fruiting-body formation of Tricholoma matsutake. Environ. Control in Biol. 33(1): 59-64 https://doi.org/10.2525/ecb1963.33.59
  17. Kazuyuki, M. 1992. Growth of pine saplings to be infected by Tricholoma matsutake (Ito et Imai) Sing. Bulletin of the Hiroshima Prefectural Forestry Experiment Station No. 26: 45-61
  18. Ogawa, M., Umehara, T., Kontani, S. and Yamaji, K. 1978. Cultivating method of the mycorrhizal fungus, Tricholoma matsutake (Ito et Imai) Sing. (I) Growing method of the pine saplings infected with T. matsutake in the field. J. Jap. For. Soc. 60: 119-128
  19. Shinya, E. 1990. Cultivation of the pine seedlings infected with Tricholoma matsutake by use of in vitro mycorrhizal synthesis. Bulletin of the Hiroshima Prefectural Forestry Experiment Station No. 24: 1-6
  20. Vaario, L.M., Guerin-Laguette, A., Gill, W.M., Lapeyrie, F. and Suzuki, K. 2000. Only two weeks are required for Tricholoma matsutake to differentiate ectomycorrhizal Hartig net structures in roots of Pinus densiflora seedlings cultivated on artificial substrate. J. For. Res. 5: 293-297 https://doi.org/10.1007/BF02767125
  21. Wang, Y., Hall, I.R. and Evans, L.A. 1997. Ectomycorrhizal fungi with edible fruiting bodies 1. Tricholoma matsutake and related fungi. Economic Botany 51(3):311-327 https://doi.org/10.1007/BF02862101
  22. Yamada, A., Maeda, K. and Ohmasa, M. 1999. Ectomycorrhiza formation of Tricholoma matsutake isolates on seedlings of Pinus densijlora in vitro. Mycoscience 40: 455-463 https://doi.org/10.1007/BF02461022