폐쇄성과 비폐쇄성 무 정자증 환자의 고환 내 세포 자연사 관련 인자들의 발현 변화와 SELDI-TOF Mass Spectrometry를 이용한 단백질 발현 분석

Differential Expressions of Apoptosis Regulators and Protein Profiling by SELDI-TOF Mass Spectrometry in Human Testis with Obstructive and Non-obstructive Azoospermia

  • 김슬기 (한양대학교 자연과학대학 생명과학과 생식내분비학연구실) ;
  • 김호승 (한양대학교 자연과학대학 생명과학과 생식내분비학연구실) ;
  • 이호준 (을지의과대학교 생리학교실) ;
  • 박용석 (성균관대학교 의과대학 삼성제일병원 생식생물학 및 불임연구실) ;
  • 서주태 (성균관대학교 의과대학 삼성제일병원 비뇨기과) ;
  • 윤용달 (한양대학교 자연과학대학 생명과학과 생식내분비학연구실)
  • Kim, Suel-Kee (Laboratory of Reproductive Endocrinology, Department of Life Science, College of Natural Sciences, Hanyang University) ;
  • Kim, Ho-Seung (Laboratory of Reproductive Endocrinology, Department of Life Science, College of Natural Sciences, Hanyang University) ;
  • Lee, Ho-Joon (Laboratory of Physiology, Eulji University School of Medicine) ;
  • Park, Yong-Seog (Laboratory of Reproductive Biology and Infertility, Samsung Cheil Hospital, Sungkyunkwan University School of Medicine) ;
  • Seo, Ju-Tae (Department of Urology, Samsung Cheil Hospital, Sungkyunkwan University School of Medicine) ;
  • Yoon, Yong-Dal (Laboratory of Reproductive Endocrinology, Department of Life Science, College of Natural Sciences, Hanyang University)
  • 발행 : 2005.06.30

초록

연구목적: 본 연구에서는 비폐쇄성 무정자증 환자에서 나타나는 정자형성과정의 이상과 고환세포의 세포자연사와의 연관관계 여부를 확인하였다. 또한 SELDI-TOF MS 분석을 통하여 고환 내 단백질 발현 양상을 확인하고, 질환에 따른 효과적인 biomarker 개발 가능성 여부를 확인하였다. 재료 및 방법: RT-PCR 및 면역조직화학법을 사용하여 고환에서의 Fas, FasL, Bcl-2, Bax와 Caspase-3의 발현 양상을 확인하고, in situ DNA 3'-end-labelling 방법으로 고환세포의 세포자연사 양상을 확인하였다. SELDI-TOF MS 분석법에 의한 고환의 병리학적 소견에 따른 단백질 발현 변화는 소수성 칩 ($H_4$)을 사용하여 분자량 10~100 kDa 범위 내에서 분석하였다. 결 과: 정상적인 정자형성과정을 보이는 폐쇄성 무정자증 환자의 고환에 비해 지주세포 증후군 (Sertoli cell only syndrome)과 성숙정지 (maturation arrest)를 보이는 고환 내 생식세포와 지주세포에서 세포자연사가 현저하게 증가한 것을 확인할 수 있었다. 세포자연사 관련인자들의 발현 양상을 확인한 결과, 지주세포 증후군과 성숙정지 환자군에서 Fas와 FasL mRNA의 발현이 증가하였으나, bcl-2, bax와 caspase-3 mRNA 발현의 경우에는 두 질환 모두에서 유의한 차이를 확인할 수 없었다. FasL 단백질 발현의 경우, 세포자연사의 증가가 관찰되었던 지주세포 증후군과 성숙정지를 보이는 환자의 간질세포와 지주세포에서 증가하는 양상을 나타내었다. SELDI-TOF MS 분석 결과에서 폐쇄성 무정자증 환자군에 비해 전체적인 단백질 발현양이 지주세포 증후군과 성숙정지 환자의 고환에서 감소하는 양상을 보였으며, 특히, 16.730 kDa 단백질의 현저한 감소를 확인할 수 있었다. 결 론: 본 연구결과를 통해 비폐쇄성 무정자증 환자에서 나타나는 정자형성과정의 장애는 생식세포의 비정상적인 세포자연사와 연관되어 있으며, 고환 내 Fas와 FasL의 비정상적인 발현이 주된 원인인 것을 확인할 수 있었다. 또한, SELDI-TOF MS 분석법을 통한 단백질 발현 양상의 연구는 무정자증 환자에서의 다양한 병리학적 소견을 쉽게 파악할 수 있는 biomarker 발굴뿐만 아니라 질환의 원인규명을 위한 연구에도 유용하게 이용될 수 있을 것으로 사료된다.

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과제정보

연구 과제 주관 기관 : Ministry of Health and Welfare

참고문헌

  1. Seo JT. Diagnosis and treatment of surgically uncorrectable azoospermia. Kor J Androl 2004; 22: 1-10
  2. Sousa M, Cremades N, Alves C, Silva J, Barros A. Developmental potential of human spermatogenic cells co-cultured with SertoJi cells. Hum Reprod 2002; 17: 161-72 https://doi.org/10.1093/humrep/17.1.161
  3. Tesarik J, Mendoza C, Testart J. Viable embryos from injection of round spermatid into oocytes. N Eng J Med 1995; 333: 525 https://doi.org/10.1056/NEJM199508243330819
  4. Zech H, Vanderzwalmen P, Prapas Y, Lejeune B, Duba E, Schoysman R. Congenital malformations after intracytoplasmic injection of spermatids. Hum Reprod 2000; 15: 969-71 https://doi.org/10.1093/humrep/15.4.969
  5. Blanco-Rodriguez 1. A matter of death and life: the significant of germ cell death during spermatogenesis. lnt J Androl 1998; 21: 236-48 https://doi.org/10.1046/j.1365-2605.1998.00133.x
  6. Rodriguez I, Ody CK, Araki C, Garcia I, Vassalli P. An early and massive wave of germinal cell apoptosis is required for the development of functional spermatogenesis. EMBO J 1997; 16: 2262-270 https://doi.org/10.1093/emboj/16.9.2262
  7. Lin WW, Lamb DJ, Wheeler TM, Abrams J, Lipshultz Ll, Kim ED. Apoptotic frequency is increased in spermatogenic maturation arrest and hypospermatogenic states. J Urol 1997; 158: 1791-3 https://doi.org/10.1016/S0022-5347(01)64130-2
  8. Lin WW, Lamb DJ, Wheeler TM, Lipshultz Ll, Kim ED. In situ end-labeling of human testicular tissue demonstrates increased apoptosis in conditions of abnormal spermatogenesis. Fertil Steril 1997; 68: 1065-9 https://doi.org/10.1016/S0015-0282(97)00372-5
  9. akagi S, Itoh N, Kimura M, Sasao T, Tsukamoto T. Spermatogonial proliferation and apoptosis in hypospermatogenesis associated with nonobstructive azoospermia. Fertil Steril 2001; 76: 901-7 https://doi.org/10.1016/S0015-0282(01)02732-7
  10. Sinha Hikim AP, Lue Y, Diaz-Romero M, Yen PH, Wang C, Swerdloff RS. Deciphering the pathways of germ cell apoptosis in the testis. J Steroid Biochem Mol BioI 2003; 85-175-82 https://doi.org/10.1016/S0960-0760(03)00193-6
  11. Tanaka M, Itai T, Adachi M, Nagata S. Downregulation of Fas ligand by shedding. Nature Med 1998; 4: 31-6 https://doi.org/10.1038/nm0198-031
  12. Lee J, Richburg JH, Shipp EB, Meistrich ML, Boekelheide K. The Fas system, a regulator of testicular germ cell apoptosis, is differentially up-regulated in Sertoli cell vs. germ cell injury of the testis. Endocrinology 1999; 140: 852-8 https://doi.org/10.1210/en.140.2.852
  13. Lee J, Richburg JH, Younkin SC, Boekelheide K. The Fas system is a key regulator of germ cell apoptosis in the testis. Endocrinology 1997; 138: 2081-8 https://doi.org/10.1210/en.138.5.2081
  14. Francavilia S, D'abrizio P, Rucci N, Silvano G, Properzi G, Straface E, Cordeschi G, Necozione S, Gnessi L, Arizzi M, illisse S. Fas and Fas ligand expression in fetal and adult human testis with normal or deranged spermatogenesis. J Clin Endocrinol Metab 2000; 85: 2692-700 https://doi.org/10.1210/jc.85.8.2692
  15. Pentikainen V, Erkkila K, Dunkel L. Fas regulates germ cell apoptosis in the human testis in vitro. Am J Physiol 1999; 276: E310-6
  16. Oldereid NB, Angelis PD, Wiger R, Clausen OPE. Expression of bcl-2 family proteins and spontaneous apoptosis in normal human testis. Mol Human Reprod 2001; 7: 403-8 https://doi.org/10.1093/molehr/7.5.403
  17. Issaq H, Veenstra TD, Conrads TP, Felschow D. The SELDI-TOF MS approach to proteomics: protein profiling and biomarker identification. Biochem Biophys Res Commun 2002; 292: 587-92 https://doi.org/10.1006/bbrc.2002.6678
  18. Richberg JH, Boekelheide K. Mono-(2-ethylhexyl) phthalate rapidly alters both Sertoli cell vimentin filaments and germ cell apoptosis in young rat testes. Toxicol Appl Pharmacol 1996; 137: 42-50 https://doi.org/10.1006/taap.1996.0055
  19. Yin Y, Hawkins KL, Dewolf WC, Worgentaler A. Heat stress causes testicular germ cell apoptosis in adult mice. J Androl 1997; 18: 159-65
  20. Sinha Hikim AP, Wang C, Lue Y, Johnson L, Wang XH, Swerdloff RS. Spontaneous germ cell apoptosis in humans: evidence for ethnic differences in the susceptibility of germ cells to programmed cell death. J Clin Endocrinol Metab 1998; 83: 152-56 https://doi.org/10.1210/jc.83.1.152
  21. Woolveridge I, Bryden AAG, Taylor MF, George NJR, Wu FCW, Morris ill. Apoptosis and expression of apoptotic regulators in the human testis following short- and long-term anti-androgen treatment. Mol Hum Reprod 1998; 4: 701-7 https://doi.org/10.1093/molehr/4.7.701
  22. Eguchi J, Koji T, Nomata K, Yoshii A, Shin M, Kanetake H. Fas-Fas ligand system as a possible mediator of spermatogenic cell apoptosis in human maturation-arrested testes. Hum Cell 2002; 15: 61-8 https://doi.org/10.1111/j.1749-0774.2002.tb00100.x
  23. Francavilla S, D'Abrizio P, Cordeschi G, Pelliccione F, Necozione S, Ulisse S, Properzi G, Francavilla F. Fas expression correlates with human germ cell degeneration in meiotic and post-meiotic arrest of spermatogenesis. Mol Hum Reprod 2002; 8: 213-20 https://doi.org/10.1093/molehr/8.3.213
  24. Yamashita H, Otsuki Y, Ito Y, Matsumoto K, Deki K, Ueki M. Fas ligand, Fas antigen and Bcl-2 expression in human endometrium during the menstrual cycle. Mol Hum Reprod 1999; 5: 358-64 https://doi.org/10.1093/molehr/5.4.358