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Phylogenetic Analysis of Nuclear Ribosomal DNA Intergenic Spacer (IGS) I Region of Phellinus linteus

Nuclear Ribosomal DNA Intergenic Spacer(IGS) I 영역의 분석에 의한 목질진흙버섯의 계통분류학적 위치

  • Rew, Young-Hyun (Dept. of Agricultural Environment, Kyungbuk Agricultural Technology Administration) ;
  • Lee, Jin-Hyung (Dept. of microbiology, KyungPook National University) ;
  • Kim, Jong-Guk (Dept. of microbiology, KyungPook National University)
  • 류영현 (경상북도농업기술원 농업환경연구과) ;
  • 이진형 (경북대학교 미생물학과) ;
  • 김종국 (경북대학교 미생물학과)
  • Published : 2004.12.30

Abstract

This study was carried out to elucidate phylogenetic relationship of a yellow lump, Phellinus linteus by comparing the nuclear ribosomal intergenic spacer (IGS) I region with that of other genera of basidiomycetes retrieved from Genbank. IGS I region of Phellinus linteus was 730 bp long and sequence homology was conserved in the 5' region, in particular $1{\sim}280\;bp$, and decreased in the direction toward the 3' end. ITS region was widely studied in phylogenies related to basidiomycetes, but IGS region was not well understood yet. Our study indicated that IGS region can be a good tool in phylogenetic study of basidiomycetes.

본 연구는 Phellinus linteus와 관련 담자균류 속간의 IGS I 영역의 분석에 기초한 분류체계를 정립하기 위해서 실시하였다. 실험에 사용된 Phellinus linteus 균주의 IGS I 영역은 730 bp였고 다른 담자균류의 IGS I 영역과 비교시 5' 말단부위의 $1{\sim}280\;base$까지는 각 균주들간의 보존성이 높게 나타났으며 3' 말단부위로 갈수록 보존성이 감소하다가 다시 증가하는 경향을 보였다. 담자균류의 IGS 영역에 대한 연구가 앞으로 진행된다면 ITS 영역의 비교와 더불어 새로운 계통분류지표로 이용될 수 있을 것이다.

Keywords

References

  1. 김상희,김수호,성재모,Harrington, Thomas, C. Harrington. 1999. 형태적.분자생물학적 방법에 의한 Phellinus linteus의 동정에 관한 연구. Kor. J. Mycol. 27(5): 337-340.
  2. 송경식,조수묵,고경수,한만우,유익동 1994. 상황(Phellinus linteus) 배양 균사체의 2차 대사산물에 대한 화학적 연구. 한국농화학회지 37(2): 100-014.
  3. 송치현,문혜연,류충현. 1997. Phellinus linteus의 인공재배. Kor. J. Mycol. 25(2): 130-132.
  4. 이영경,한명주,박순영,김동현. 2000. 상황버섯 자실체의 in vitro 및 in vivo 항암활성. Kor. Food Sci. Technol. 32(2): 477-480.
  5. 이준우,백성진,방광웅,강신욱,강상모,김병용,하익수. 2000. 목질진흙버섯 자실체와 배양 균사체 유래 $beta$<\TEX>-glucan성 다당류의 생리활성. Kor. Food Sci. Technol. 32(3): 726-735.
  6. 이준우,백성진,방광웅,김용석,한만덕,하익수. 1999. Phellinus linteus IY011의 자실체와 균사체 배양물로부터 분리한 다당류의 물리화학적 특성 비교. Kor. J. Mycol. 27(6): 424-429.
  7. 정인창,김선희,권용일,김소연,이종숙,박신,박경숙,이재성. 1997. 화학합성배지 및 곡물을 이용한 Phellinus igniarius의 균사체 배양조건. Kor. J. Mycol 25(2): 133-142.
  8. 정지원,김기영,하명규,이태호,이재동. 1999. Ribosomal DNA의 Internal Transcribed Spacer(ITS)부위의 염기서열 분석에 의한 Phellinus속의 계통분석에 관한 연구. Kor. J. Mycol. 27(2): 124-131.
  9. Thompson, J. D., Gibson, T. J., Plewniak, F., Jeanmougin, F. and Higgins, D. G. 1997. The ClustalX windows interface: flexible strategies for multiple sequence alignment aided by quality analysis tools. Nucleic Acids Research 24: 4876-4882.
  10. Ganley, A. R. D. and Scott, B. 1998. Extraodinary ribosomal spacer length heterogeneity in a neotyphodium endophyte hybrid: implication for concerted evolution. Genetics. 150: 1625-1637.
  11. Park, H. S., Kim, G. Y., Nam, B. H., Lee, S. J. and Lee, J. D. 2002. The Determination of the partial 28S ribosomal DNA sequence and rapid detection of Phellinus linteus and related species. Mycobiology 30(2): 82-87. https://doi.org/10.4489/MYCO.2002.30.2.082
  12. Hong, I. P., Sung, G. B., Chung, I. M. and Lee, W. C. 2002. Artificial cultivation of Mushroom, Phellinus linteus using Mulberry logs. Kor. J. Seric. Sci. 44(2): 74-81.
  13. Cho, J. H., Cho, S. D., Hu, H. B., Kim, S. H., Lee, S. K., Lee, Y. S. and Kang, K. S. 2002. The roles of ERK1/2 and p38 MAP kinases in the preventive mechanism of mushroom Phellinus linteus against the inhibition of gap junctional intercellular by hydrogen peroxide. Carcinogenesis. 23(7): 1163-1169. https://doi.org/10.1093/carcin/23.7.1163
  14. Kim, W. K., Mauthe, W., Hausner, G. and Klassen G. R. 1990. Isolation of high molecular weight DNA and double stranded RNAs from fungi. Can. J. Bot. 68: 1898-1902.
  15. Shin, K. S. 2001. Identification of Some Phellinus spp., Mycobiology 29(4): 190-193.
  16. Lim, Y. W., Lee, J. S. and Jung, H. S. 2003. Type studies of Phellinus baumii and Phellinus linteus. Mycotaxon. 85: 201- 210.
  17. Saitou, N. and Nei, M. 1987. The Neighbor-Joining method : A new method for reconstructing phylogenetic Trees. Mol. Biol. Evol. 4(4): 406-425.
  18. Shon, Y. H., Lee, J. S., Lee, H. W. and Nam, K. S. 1999. Antimutagenic potential of Phellinus igniarius. J. Microbiol. Biotechnol. 9(4): 525-528.
  19. Wagner, T. and Fischer, M. 2002. Proceedings toward a natural classification of the worldwide taxa Phellinus s.l. and Inonotus s.l., and phylogenetic relationships of allied genera. Mycologia 94(6): 998-1016. https://doi.org/10.2307/3761866
  20. Ko, K. S. and Jung, H. S. 2002. Three nonorthologous ITS1 types are present in a polypore fungus Trichaptum abietinum. Mol. Phylogenet. Evol. 23(2): 112-22. https://doi.org/10.1016/S1055-7903(02)00009-X
  21. Swann, E. C. and Taylor, J. W. 1993. Higher taxa of basidiomycetes : an 18S rRNA gene perspective. Mycologia. 85: 923- 936. https://doi.org/10.2307/3760675
  22. Wilmotte, A., van de Peer Y., Goris, A., Chapelle S., de Baere, R., Nelissen, B., Neefs, J. M., Hennebert, G. L. and de Wachter, R. 1993. Evolutionary relationships among higher fungi inferred from small ribosomal subunit RNA sequence analysis. System. Appl. Microbiol. 16: 436-444. https://doi.org/10.1016/S0723-2020(11)80277-8
  23. Moncalvo, J. M., Wang, H. F. and Hseu, R. S. 1995. Phylogenetic relationships in Ganoderma inferred from the internal transcribed spacers and 25S ribosomal DNA sequences. Mycologia. 87: 223-238. https://doi.org/10.2307/3760908