사람 난포액과 소의 수란관 조직추출액이 생쥐 난구세포에 미치는 영향

Effect of Human Follicular Fluid and Bovine Oviductal Tissue Extract on the Mouse Oocyte-Cumulus Complex

  • 홍민정 (차병원 여성의학연구소) ;
  • 김지수 (서울여자대학교 생명공학과) ;
  • 심명선 (서울여자대학교 생명공학과) ;
  • 김해권 (서울여자대학교 생명공학과)
  • 발행 : 2002.12.01

초록

대부분의 포유동물에서 수란관내로 배란된 난자는 정자에 의해 수정이 된 후 개체발생을 시작한다. 그러나 수정이 되지 못한 난자들은 난구세포와 함께 수란관내에서 퇴화하여 제거되는데, 그 기작에 대해서는 구체적으로 알려져 있지 않다. 따라서 본 연구는 포유동물의 수란관내 물질이 난자-난구 복합체에 미치는 영향을 알아보고자 사람의 난포액과 소의 수란관 조직 추출액을 생쥐의 난자-난구 복합체에 처리하고 난자의 생존율 및 난구세포의 세포자연사(apoptosis)를 조사하였다. 수란관 조직 추출액을 처리한 미성숙난자는 난포액만을 처리한 난자와 비교하여 난자의 성숙률에 차이를 보이지 않았다. 그러나 난구세포에서 난포액만을 처리한 경우 확장을 일으키면서 배양접시 바닥에 붙어서 배양 후 72시간까지 분열 증식을 계속하는 것이 관찰된 반면, 수란관 조직 추출액을 처리한 난구세포는 확장이 억제되며 72시간 배양 후 모두 죽었다. 한편 난포액과 수란관 조직 추출액을 함께 처리한 난구세포는 배양 후 24시간에 화장을 일으켰으나 72시간 후에는 수란관 조직 추출액 만을 처리했을 때 와 마찬가지로 모든 난구세포가 죽었다. 이러한 난구세포의 죽음이 세포자연사에 의한 것인지를 알아보기 위하여 DAPI로 핵을 염색한 후 관찰한 결과 세포자연사의 특징인 응축되고 분절화된 핵을 관찰 할 수 있었고, 특히 수란관 조직 추출액을 처리한 난구세포에서 많이 관찰되었다. 또한 TUNEL 방법으로 세포자연사를 확인한 결과 응축되고 분절화된 핵을 가진 난구세포에서 염색되는 것을 확인하였다. 본 연구의 결과들을 종합해 볼 때 소의 수란관 조직 추출액에 의한 생쥐 난구세포의 죽음은 세포자연사에 의한 것으로 판단되며, 이로 미루어 수란관 조직세포에는 난구세포의 세포자연사를 유도할 수 있는 물질을 포함하고 있는 것으로 사료된다.or teacher educators to re-conceptualize teacher education in Korea. 것이 필요하다.량은 264,000$m^2$, 79,200$m^3$이였으며, 우려기준의 40% 농도 이상의 경우 복원 면적과 물량은 779,000$m^2$, 233,700㎥, 배경치 농도 이상의 복원 목표 설정의 경우에는 각각 969,200$m^2$, 290,760$m^3$ 이였다. 토양오염 우려기준 농도의 40%를 복원 목표로 하는 경우와 배경치 농도를 복원 목표로 하는 경우, 복원 물량은 우려기준 농도를 복원 목표로 하는 경우의 3.0배와 3.7배정도 증가하는 것으로 나타나 복원 목표치 설정시 우려기준 농도의 40%와 배경농도의 차이에 다른 복원 물량의 차이는 적어서, 복원 목표 설정시 배경치 농도로 복원계획을 세우는 것이 가장 바람직한 것으로 판단되었다.amma}$D)안정동위원소값이 광화I시기에는 각각 11∼9.${\textperthansand}$, -92∼-86${\textperthansand}$, 광화 II시기에는 각각 0.3${\textperthansand}$(${\gamma}^{18}O_{H2O}$),-93${\textperthansand}$({\gamma}$D)이며, 리본-호상구조를 보이는 것으로 보아 대봉광상의 광화유체에 대한 기원과 진화과정을 두 가지로 생각할 수 있다. 1) 마그마유체로부터 광화작용이 진행됨에 따라 계속적인 순환수의 혼입이 있었으며 2) 조기 마그마${\pm}$변성유체에서 유체압력의 차에

In most mammals, mature oocyte-cumulus complexer(OCCs) ovulate into the oviduct where fertilization by sperm takes place. However, the complex that fail to fertilize eventually undergoes degeneration while they reside in the oviduct. Yet there is no blown mechanism how both oocyte and cumulus cells degenerate. Using human follicular fluid (hFF), bovine oviductal tissue extract (BOX) and mouse OCC, the present study aimed to find how the oviduct influence the viability of the oocyte and cumulus cells in vitro. There was no difference of oocyte maturation rate between the control and BOX-treated groups. However, there was a significant difference in the survival of cumulus cells between two groups. Cumulus cells cultured in the presence of hFF alone underwent initially expansion and then they formed monolayer in the culture dish. Even after 72 hr, they proliferated well and showed fibroblast-like morphology. Cumulus cells cultured in the presence of both hFF and BOX also expanded after 24 hr, however, after 72 hr culture, they eventually detached and degenerated. Cumulus cells cultured in the BOX alone gave a similar drastic result. When the cumulus cells cultured in the presence of BOX were stained with DAPI, their nuclei showed partial condensation and fragmentation. After detailed analysis of these cells by TUNEL assay, many nuclei of them exhibited well stained spots indicating the signs of apoptosis. Based upon these observations, it is suggested that BOX might possess a factor that leads mouse cumulus cells to undergo apoptosis in vitro.

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