백서에서 Paraquat가 장기 Glutathione 농도에 미치는 영향

  • Published : 19940100

Abstract

The effects of paraquat administration on glutathione was studied in rats. The contents of glutathione in the liver, kidney and lung were significantly decreased but the alteration was not significant in blood by paraquat administration. The decrease occured without concomitant increases in oxidized glutathione (GSSG) or in the GSH/GSSG ratio. The activities of γ-glutamylcysteine synthetase in liver and kidney were decreased by paraquat administration. And γ-glutamyl transpeptidase activities were significantly decreased in kidney and lung of paraquat treated-rats. These results suggest that the decreased synthesis of glutathione by paraquat were an important mechanism of the decreased level of glutathione in liver and kidney, and decreased glutathione transport was a factor on the changes of glutathione contents in lung.

백서에 paraquat(PQ)투여로 간, 신장 및 폐 glutathione량이 감소되는데, 간과 신장은 유사한 감소양상을 나타냈고, 폐에서 감소율이 가장 높았으며, 혈액에서는 유의한 변화를 나타내지 않았다. PQ투여로 γ-glutamylcysteine synthetase와 γ-glutamyl transpeptidase 활성이 감소되었다. 따라서 간과 신장의 glutathione 감소는 γ-glutamylcysteine synthetase 활성이 감소되어 glutathione 합성저하에 의해 나타난 결과로 생각되고, 폐에서는 간과 신장의 γ-glutamylcysteine synthetase 활성감소로 glutathione합성이 감소되고, 폐 γ-glutamyl transpeptidase활성감소로 인해 혈액으로부터 폐세포로 glutathione 이동이 감소될 것으로 추정되므로 폐 γ-glutamyl transpeptidase 활성감소는 glutathione량 감소의 한 원인이 될 것으로 생각되며, 혈액에서는 γ-glutamylcysteine synthetase와 γ-glutamyl transpeptidase활성감소로 glutathione의 혈액내로 유입과 타장기로 유출이 모두 저하되어 glutathione량의 변화가 없는 것으로 생각된다. PQ에 의한 장기내 glutathione량 감소는 유리기 소거기능이 저하되어 PQ에 의해서 생성된 유리기 제거가 미흡할 것으로 생각되므로 PQ독성의 한 요인이 될 것으로 추측된다.

Keywords

References

  1. J. Biol. Chem. v.263 Krall, J.;Bagley, A. C.;Mullenbach, G. T.;Hallewell, R. A.;Lynch, R. E.
  2. Methods in Enzymol v.113 Tate, S. S.;Meister, A.
  3. J. Biol. Chem. v.193 Lowry, C. H.;Rsenbrough, N. J.;Farr, A. L.;Randall, R. J.
  4. Br. J. Radiol. v.54 Deschavanne, P. J.;Malaise, E. P.;Revesz, L.
  5. Methods in Enzymolgy v.186 Halliwell, B.;Gutte, J. M. C.;Fleischer, S.(ed.);Packer, L.(ed.)
  6. Arch. Biochem. Biophy. v.196 Hassan, H. M.;Fridovich, I.
  7. Toxical Appl Pharmacol. v.153 Kornbrust, D. J.;Mavis, R. D.
  8. Arch Biochem Biophy. v.235 Sutton, H. C.;Winterbourn, C. C.
  9. Biochim. Biophys. Acta v.716 Keeling, P. L.;Smith, L. L.;Aldridge, W. N.
  10. Mol. Cell. Biochem. v.39 Tate, S. S.;Meister, A.
  11. Methods Enzymol. v.77 Meister, A.;Tate, S. S.;Griffith, O. W.
  12. J. Biol. Chem. v.254 Griffith, O. W.;Meister, A.
  13. FEBS Lett. v.27 Sies, H.;Gerstenecker, C.;Summer, K. H.;Menzel, H.;Floh, L.
  14. Int. J. Radiat. Biol. v.37 Edgren, M.;Lasson, A.;Nilsson, K.;Revesz, L.;Scott, O. C.
  15. Anal. Biochem. v.27 Tietze, F.
  16. Biochem. Biophys. Acta v.883 Naoko, W.;Yasuko, S.;Nobuhiro, M.;Yasushi, S.;Sho, Y.
  17. Ann. Revi. Biochem. v.52 Meister, A.;Anderson, M. E.
  18. J. Biol. Chem. v.264 Fridovich, I.
  19. Methods Enzymol v.113 Meister, A.