Abstract
A modified amidolytic assay and a fibrin plate method were used to accurately measure the concentration of single chain urokinase type plasminogen activator (scu-PA) and two-chain urokinase type plasminogen activator (tc-PA) in the spent media. $1.65{\times}10^6$(viable cells/ml) of maximum cell density and 1670(IU/ml) of scu-PA concentration were obtained in 1% serum containing medium. The overall conversion ratio from scu-PA to tc-PA was less than 10%. In the results of batch cultivation in a spinner vessel, $4.43{\times}10^6(total cells/ml)$ of maximum cell density and 1560(IU/ml) of scu-PA concentration was observed. The maximum scu-PA concentration and specific scu-PA Productivity were obtained in 1760(IU/ml) and $3.13{\times}10^{-4}(IU/cell)$, respectively, from perfusion cultivation. The conveysion ratios from batch, fed-batch and perfusion cultivations were less than 12%, which means that about 90% of scu-PA secreted from the cells can be maintained during the cultivations.
HEK 세포 배양액 중에 존재하는 scu-PA와 tc-PA의 보다 정확한 측정을 위해 fibrin plate법과 기존의 amidolytic 방법을 변형시킨 측정법을 이용했다. 1%의 저혈청 배지를 이용한 T-flask 배양에서 $1.65{\times}10^6$(viable cells/ml)의 최대 세포수에 도달하여 1670(IU/ml)의 scu-PA 생산량을 보였으며 평균 10% 미만이 변환율을 보였다. 또한 Spinner vessel에서의 회분배양시 최대 세포수가 $4.43{\times}10^6(total cells/ml)$ 와 1560(IU/ml)의 scu-PA 생산량을 나타냈으며 평균 11.4%의 변환율을 보였다. 연속배양에서는 0.449(1/day)의 비생육속도와 $3.13{\times}10^{-4}(IU/cell)$의 비생산속도를 보였으며 평균 10.18% 정도의 전환율을 보였다. 이는 회분식 및 유가식 배양 결과와 큰 차이가 없으며 배양공정에 관계없이 약 90% 이상의 회수율이 가능하다는 것을 의미한다.